Articolo metodologico

Un modello di effusione pleurica in ratti mediante instillazione intratracheale di poliacrilato/nanosilice

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DOI:

10.3791/58560

12 aprile 2019

In questo articolo

Sommario

Qui, presentiamo un protocollo per costruire un modello di effusione pleurica in ratti mediante instillazione intratracheale di poliacrilato/nanosilice.

Abstract

L'effusione pleurica è un'individuazione clinica prevalente di molte malattie polmonari. Avere un modello utile animale effusione pleurica è molto importante per lo studio di queste malattie polmonari. Modelli precedenti di effusione pleurica pagato più attenzione a fattori biologici, piuttosto che le nanoparticelle nell'ambiente. Qui, presentiamo un modello per rendere l'effusione pleurica in ratti mediante instillazione intratracheale di poliacrilato/nanosilice e un metodo di isolamento di nanoparticelle nell'effusione pleurica. Mediante instillazione intratracheale di poliacrilato/nanosilice con concentrazioni di 3.125, 6.25 e 12,5 mg/kg∙mL, l'effusione pleurica in ratti ha presentato il giorno 3, ha raggiunto la posizione di giorni 7-10 a 6.25 e 12,5 mg/kg∙mL gruppi, poi lentamente diminuito e scomparso il giorno 14. Quando la concentrazione di poliacrilato/nanosilice aumentata, l'effusione pleurica è più prodotto e più veloce. Questo liquido pleurico è stato rilevato dall'ecografia o cassa CT scansione e confermato tramite la dissezione dei ratti. Nanoparticelle di silice sono state osservate nell'effusione pleurica dei ratti da microscopio elettronico a trasmissione. Questi risultati hanno mostrato che l'esposizione a poliacrilato/nanosilice conduce all'induzione di effusione pleurica, che era costante con la nostra precedente relazione in esseri umani. Inoltre, questo modello è utile per l'ulteriore studio di nanotossicologia e le malattie di effusione pleurica.

Introduzione

L'effusione pleurica è una manifestazione clinica molto comune delle malattie polmonari con una varietà di cause. Avere un modello utile animale effusione pleurica è molto importante per studiare queste malattie polmonari, i ruoli di due strati di membrana pleurica, i meccanismi di effusione pleurica ed il relativo trattamento. Tuttavia, alcuni segnalati modelli di effusione pleurica si concentrano principalmente sull'effusione pleurica maligna o fattori biologici piuttosto che le nanoparticelle in ambiente1,2. Qui, presentiamo un nuovo modello di versamento pleurico che è semplice, sicuro ed efficace.

Con lo sviluppo delle nanotecnologie e l'uso estensivo di nanoprodotti, c'è una preoccupazione circa i rischi potenziali dei nanomateriali per l'ambiente e la salute umana3,4. Nanomateriali introducono fattori di rischio e potenzialmente portano a nuovi pericoli sul posto di lavoro o tramite contaminazione ambientale. Gli studi in vitro e in vivo indicano che i nanomateriali possono causare danni multiorgano a polmoni, cuore, fegato, rene e il sistema nervoso, nonché del sistema riproduttivo e sistema immunitarios5,6. Inoltre, alcuni studi ha riferito che la tossicità specifica dei nanomateriali è stato a causa di loro proprietà fisico-chimiche uniche3,4,7.

Abbiamo riferito che un gruppo di lavoratori con esposizione professionale ai nanomateriali ha presentato clinicamente con effusione pleurica e pericardica, fibrosi polmonare e granuloma8,9. Nanoparticelle di silice sono state isolate in questi patients' effusione pleurica9. Al fine di riprodurre e verificare l'effusione pleurica indotta da nanoparticelle inalate in essere umano, abbiamo condotto l'esperimento infondendo il poliacrilato/nanosilice (PA/NPSi) tramite le vie respiratorie nei ratti, che ha imitato la respirazione umana in un vero e proprio ambiente e abbiamo trovato quel intratracheale instillazione di PA/NPSi potrebbe comportare l'effusione pleurica in ratti. Qui, vi presentiamo come fare versamento pleurico in ratti mediante instillazione intratracheale di PA/NPSi e come isolare le nanoparticelle nell'effusione pleurica. Questo modello può essere utile per l'ulteriore studio di nanotossicologia e malattie di effusione pleurica.

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Protocollo

Lo studio ha seguito le linee guida di Capital Medical University (Beijing, Cina P.R.) per la cura e l'uso di animali da esperimento. Tutte le procedure sono state approvate dalla animale etico Comitato di capitale Medical University in Cina.

1. sperimentale preparazioni

Nota: Acclimatare il femminili ratti Wistar da organismi patogeni specifici (peso: 200 ± 10 g) agli ambienti sperimentali per una settimana prima della somministrazione (condizioni ambientali: luce / buio: 12h / 12h, temperatura 22 ± 2 ° C, umidità 50 ± 10%).

  1. Utilizzare un fresco 10 mL di PA/NPSi sospensioni (nanosilice Ø:20 ± 5 nm di polimerizzazione in emulsione in situ) diluito in soluzione salina normale alle concentrazioni di 3.125, 6.25 e 12,5 mg/mL, rispettivamente10. Prima della somministrazione, Sonicare le sospensioni per 20-30 min e vortexare per 10 min al fine di impedire l'aggregazione nanoparticelle.
  2. Ugualmente dividere un totale di 20 ratti in quattro gruppi: un gruppo per ogni concentrazione di PA/NPSi (0, 3.125, 6.25 e 12,5 mg/mL).
  3. Per anestetizzare li, posizionare i ratti in un contenitore chiuso con 1,5 mL di etere (99,5%) o altri protocolli IACUC approvato. Dopo 60-90 s di anestesia, controllare la mancanza di risposta al riflesso del pedale. Garantire che i ratti sono la respirazione.
  4. Mettere il ratto anestetizzato sul bordo e difficoltà i suoi denti anteriori con una linea sterilizzata di nylon sulla scheda troppo.
  5. Aprire la sua bocca ed esporre la sua fenditura della glottide con l'aiuto di un forcipe chirurgico e la lente frontale.
  6. Infondere i ratti con 0,5 mL di sospensione di PA/NPSi al polmone di ogni ratto per un totale di 1 mL utilizzando un sottile tubo con un ago sterilizzato nel Bronco bilaterale.
  7. Posizionare i ratti su un bordo di plastica in una posizione supina e lasciare che i ratti di recuperare lentamente in 5-10 min.

2. ecografia per effusione pleurica

  1. Utilizzare un sistema a ultrasuoni con un array lineare trasduttore (frequenza: 8MHz) per esaminare i ratti su giorni 1, 3, 7 e 1410.
  2. Dare l'anestesia (10% cloralio idrato, 0,35 mL/100 g, i.p.) ai ratti e verifica per la mancanza di riflessi pedale.
  3. Rimuovere i peli dall'addome torace e del tronco di ratti utilizzando un rasoio elettrico. Quindi posizionare il ratto su una piastra di montaggio in posizione supina.
  4. Coprire la pelle con il gel rivestito e quindi posizionare il trasduttore sulla zona sottocostale per rilevare il liquido pleurico e spazio intercostale.
    Nota: Al fine di rilevare con precisione l'effusione, la posizioni laterale di destra e sinistra sono state selezionate per eseguire un esame di ultrasuono.
  5. Mettere il topo su un bordo di plastica in una posizione supina dopo l'esame di ultrasuono e lasciare che i ratti di recuperare lentamente in 10 min.

3. cassa CT scansione per effusione pleurica

  1. Amministrazione post-giorni 7 e 14, anestetizzare i ratti con 10% cloralio idrato (i. p). Considerarlo sufficiente profondità dell'anestesia quando il topo non reagisce ai riflessi del pedale.
    Nota: Dopo la somministrazione giorno 7 è il momento più opportuno per osservare l'effusione pleurica di esame di CT.
  2. Posizionare il ratto su un foglio di plastica in posizione prona e poi la scansione del suo petto per indagare l'effusione pleurica utilizzando un Use di CT. 64 canali le seguenti impostazioni: configurazione del rivelatore di 64 x 0,625 mm, 120 kV (picco) e 350 mAs.

4. raccolta di effusione pleurica e l'isolamento delle nanoparticelle nell'effusione pleurica

  1. Dopo petto CT scansione dei ratti e sotto anestesia di cloralio idrato, controllare il pedale riflesso dei ratti, radersi i capelli dall'addome al petto e poi disinfettare la pelle da iodio.
  2. Portare i ratti per l'area chirurgica.
  3. Nell'ambito dell'anestesia, tagliare rapidamente 1-1,5 cm di pelle e muscoli addominali al xifoideo lungo la linea mediana con il diaframma intatto.
  4. Aprite la cassa e ispezionare le cavità pleuriche bilaterali con l'aiuto di pinzette, soprattutto gli angoli frenici costale bilaterale con cura. Raccogliere 1-2 mL di effusione pleurica giallo-chiaro con una siringa sterile da 2 mL.
  5. Una volta fatto, sacrificare i ratti con protocollo IACUC approvato.
  6. Centrifugare il versamento pleurico in una provetta da 2 mL per 15 min a 300 x g per isolare le nanoparticelle.
  7. Utilizzare una goccia di livello superiore che è il liquido brillante e osservare sotto un microscope(TEM,) elettronico di trasmissione a una tensione di accelerazione di 60-80 kV.

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Risultati

Non usando un'ecografia toracica, abbiamo trovato nessun effusioni pleuriche il giorno 1 in tutti i gruppi. Tuttavia, il giorno 3, l'effusione pleurica è comparso nei gruppi 6.25 e 12,5 mg/kg∙mL. L'effusione era principalmente nell'angolo di destra costa frenico, mentre l'effusione pericardica presentato solo in 12,5 mg/kg∙mL gruppo. Inoltre, il giorno 7, effusione pleurica (Video 1) sia l'effusione pericardica (Video 2) sono stati rilevati nel gruppo di ...

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Discussione

L'ecografia è lo strumento più conveniente per la determinazione di malattie polmonari, dovuto la relativa sensibilità eccellente per il liquido libero nella cavità pleurica11. Ecco perché l'ecografia è in grado di rilevare immediatamente il contrasto di impedenza acustica dell'aria e fluidi nei polmoni12. Inoltre, l'ecografia è più flessibile nel modello di un piccolo animale CT. Tuttavia, l'aria nel polmone riflette l'onda sonora e impedito di osservare le modifiche intra...

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla a rivelare.

Ringraziamenti

Lo studio presente e la produzione di questo articolo sono stati finanziati dalla National Natural Science Foundation of China (Grant 81773373, 81172614 e 81441089 di Grant). Ringraziamo Dr. Jin Yan e Dr. Pan Yujie, del dipartimento di emergenza, Beijing Chaoyang Hospital e Dr. Qu Peng del dipartimento di medicina di ultrasuono, Beijing Chaoyang Hospital per aiutare con la produzione video.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Ecografo Color Doppler Acuson S2000Siemens Medical Solutions, Mountain View, CA&
nbsp; Poliacrilato / nanosiliceFudan University, Shanghai, Cinarealizzato su ordinazione con nanosilice (20± 5) nm
10% cloralio idratoChemical Works302-17-0
Tomografia computerizzata a spirale 16 velocità della luceGE Healthcare, Stati Uniti
Wistar privo di agenti patogeni specificidi Lianhelihua (Pechino, Cina)ratti Wistar
Beijing Centro per animali

Riferimenti

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