Questo protocollo descrive il manuale procedura per isolare singoli neuroni fluorescente contrassegnati seguiti in vitro basati su trascrizione di mRNA amplificazione per la sequenza di RNA di alta profondità unicellulare di ordinamento.
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Articolo metodologico
Questo protocollo descrive il manuale procedura per isolare singoli neuroni fluorescente contrassegnati seguiti in vitro basati su trascrizione di mRNA amplificazione per la sequenza di RNA di alta profondità unicellulare di ordinamento.
Sequenziamento di singola cellula RNA (RNA-seq) è ormai uno strumento ampiamente implementato per diluire l'espressione genica. Piattaforme di RNA-sequenziamento unicellulare commercialmente disponibili elaborano tutti gli input cellule indiscriminatamente. A volte, fluorescenza-attivato delle cellule ordinano (FACS) sono usata a Monte per isolare una popolazione specificamente con etichetta di interesse. Una limitazione di FACS è la necessità di un numero elevato di celle di input con frazioni significativamente con etichetta, che è pratico per la raccolta e profilatura popolazioni rare o scarsamente etichettati neurone dal cervello del topo. Qui, descriviamo un metodo per raccogliere manualmente sparse fluorescente etichettati singoli neuroni da appena dissociato del tessuto di cervello di topo. Questo processo consente per l'acquisizione di neuroni con etichetta singola con elevata purezza e successiva integrazione con protocollo in vitro basati su trascrizione amplificazione che mantiene rapporti di trascrizione endogena. Descriviamo un metodo di amplificazione lineare doppia che utilizza identificatori univoci molecola (UNMIS) per generare singoli mRNA conteggi. Due turni di risultati di amplificazione in un elevato grado di rilevazione del gene al singola cella.
Sequenziamento di singola cellula RNA (RNA-seq) ha trasformato la trascrittomica studi. Mentre su larga scala singola cellula RNAseq può essere eseguita utilizzando una varietà di tecniche, come le goccioline1,2, microfluidica3, nanogrids4e micropozzetti5, maggior parte dei metodi non possono ordinare tipi di cella definita che esprimono codificato geneticamente fluorofori. Per isolare una popolazione di selezionare la cella, fluorescenza-attivato delle cellule ordinano (FACS) sono spesso usata con etichettate celle in una cella singola mo....
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Tutte le procedure compreso gli oggetti degli animali sono state approvate da IACUC al Cold Spring Harbor Laboratory, NY (IACUC #16-13-09-8).
1. manuale l'ordinamento dei neuroni di topo fluorescente contrassegnati
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Utilizzando il protocollo descritto in precedenza, GABAergici neuroni erano manualmente ordinati (Figura 1) e RNA è stato amplificato, poi trasformato in una libreria di cDNA (Figura 2) ed ordinato a elevata profondità8. I prodotti amplificati di RNA (aRNA) ha variato fra 200 – 4.000 bp in dimensioni, con una distribuzione di picco leggermente di sopra di 500 bp (Figura 3A). L.......
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Il manuale di protocollo di ordinamento è adatto per un supervisione sequenziamento di RNA del neurone popolazioni che sono sia scarsamente etichettati nel cervello di topi o rappresentano una popolazione di cellule rari che altrimenti non è fattibile per studiare mediante cella di alto-rendimento corrente metodi di ordinamento e di amplificazione. Cellule sottoposte a FACS solitamente subiscono pressioni di linea guaina e campione nella gamma di psi ~ 9 – 14, a seconda delle dimensioni dell'ugello e desiderato tassi di .......
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Autori dichiarano che non esistono Nessun concorrenti interessi finanziari.
Questo lavoro è stato sostenuto da sovvenzioni dal NIH (5R01MH094705-04 e R01MH109665-01 al Z.J.H.), dal fondo di neuroscienze CSHL Robertson (a Z.J.H.) e da un NARSAD induttrici nell'Unione fraterna (A.P.).
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| Nome | Azienda | Numero di catalogo | Commenti |
|---|---|---|---|
| ERCC RNA Spike-In Control Mixes | Thermo Fisher | Cat# 4456740 | |
| SuperScript III | Thermo Fisher | Cat# 18080093 | |
| RNaseOUT Inibitore ribonucleasi ricombinante | Thermo Fisher | Cat# 10777019 | |
| tampone di frammentazione dell'RNA | New England Biolabs | Cat# E6105S | |
| RNA MinElute kit | Qiagen | Cat# 74204 | |
| Fosfatasi antartica | New England Biolabs | Cat# M0289 | |
| Poly nucleotide chinasi | New England Biolabs | Cat# M0201 | |
| T4 RNA ligasi2, troncato | New England Biolabs | Cat# M0242 | |
| Ampure Xp perline magnetiche | Beckman Coulter | Cat# A63880 | |
| SPRIselect selezione dimensione perline magnetiche | Thermo Fisher | Cat # B23317 | |
| DL-AP5 | Tocris | Cat # 0105 | |
| CNQX | Tocris | Cat # 1045 | |
| TTX | Tocris | Cat # 1078 | |
| Proteasi da Streptomyces griseus | Sigma-Aldrich | Cat # P5147 | |
| Messaggio Amp II kit | Thermo Fisher | Cat # AM1751 | |
| Carbogen | Airgas | Cat# UN3156 | |
| Sylgard 184 | Sigma-Aldrich | Cat# 761036 | |
| Illumina TrueSeq smallRNA kit | Illumina | Cat# RS-200-0012 | |
| Bioanalizzatore RNA Pico chip | Agilent | Cat# 5067-1513 | |
| Bioanalizzatore Chip DNA ad alta sensibilità | Agilent | Cat# 5067-4626 | |
| Bioanalizzatore 2100 | Agilent | ||
| Microscopio di dissezione con fluorescenza e illuminazione a campo chiaro con ottica DIC. (Modello Leica MZ-16F). | Leica | Modello MZ-16F | |
| Microcapillare in vetro: tubi capillari in borosilicato 500/conf. OD= 1 mm, ID=0,58 mm, parete= 0,21 mm, lunghezza= 150 mm. | Warner instruments | Modello GC100-15, Ordine# 30-0017 | |
| Estrattore per pipette capillari | Sutter Instruments Co | P-97 | |
| Vibratome | Thermo Microm | HM 650V | |
| Unità di raffreddamento tissutale Vibratome | Thermo Microm | CU 65 |
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