Articolo metodologico

Quantificazione di esaltazione anticorpo-dipendente del Virus in cellule umane primarie Zika

DOI:

10.3791/58691

⸱

18 gennaio 2019

 ,  ,  ,  , 
1Department of Microbiology, Boston University School of Medicine, 2National Emerging Infectious Diseases Laborator, Boston University School of Medicine, 3Department of Entomology, Kansas State University

In questo articolo

Sommario

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Descriviamo un metodo per valutare l'effetto di pre-esistenti immunità contro il virus della dengue sull'infezione del virus di Zika utilizzando siero umano, cellule umane primarie e quantificazione di infezione da reazione a catena della polimerasi quantitativa in tempo reale.

Abstract

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Il recente emergere del flavivirus Zika e complicazioni neurologiche, quali sindrome di Guillain-Barré e microcefalia in infanti, ha portato sicurezza pubblica gravi preoccupazioni. Tra i fattori di rischio, esaltazione anticorpo-dipendente (ADE) rappresenta la minaccia più significativa, come la recente ricomparsa del virus Zika (ZIKV) è principalmente nelle zone dove la popolazione è stata esposta ed è in uno stato di pre-immunità agli altri strettamente connessi flavivirus, specialmente virus dengue (DENV). Qui, descriviamo un protocollo per quantificare l'effetto degli anticorpi del siero umano DENV sull'infezione di ZIKV in cellule umane primarie o linee cellulari.

Introduzione

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Tra le malattie virali trasmesse da zanzare, Zika infezione è uno del più clinicamente importante1. L'infezione è causata da flavivirus ZIKV che, nella maggior parte dei casi, utilizza Aedes aegypti come suo principale vettore1,2. Tuttavia, ci sono studi che hanno segnalato Aedes albopictus come un vettore primario in alcuni focolai ZIKV3. Anche se l'infezione è asintomatica in molti casi, i sintomi più comuni sono febbre, mal di testa e muscolo dolore2. Non c'è nessuna cura o vaccino disponibile per infezione ZIKV e il trattamento disponibile per la maggior parte è favorevole. Recente insorgenza di ZIKV in Sud America ha portato a gravi casi di malattia e un aumento di circa 20 volte nel disordine dello sviluppo neurologico nei feti che si chiamano microcefalia2. Come il Sud America è una zona endemica per diversi arbovirus come DENV e West Nile virus, è fondamentale indagare se preventiva immunità alle altre flavivirus(es) gioca un ruolo nella severità delle infezioni ZIKV e malattia.

Nel corso dei secoli, i virus hanno evoluto strategie differenti per aumentare le proprie chance di infettività al fine di prendere in consegna la macchina di cellula ospite e sopprimere la risposta antivirale. Uno dei più affascinanti di tutti è l'uso degli host anticorpi pre-immune dai virus per migliorare la loro replica con il fenomeno ADE4. ADE in tutti i quattro sierotipi di DENV è stata ben studiata e ha dimostrato di aumentare i titoli virali e malattia risultato5,6,7. In un precedente studio in vitro, abbiamo dimostrato un miglioramento significativo della replica di ZIKV a causa di preesistenti immunità DENV in cellule immuni umane primarie8. Inoltre, abbiamo dimostrato un metodo in vitro pertinente per quantificare la capacità degli anticorpi preesistenti DENV per migliorare la replica di ZIKV in cellule primarie.

Il protocollo che abbiamo sviluppato utilizza campioni di siero umano che vengono testati per la neutralizzazione di DENV in TCID 50 o prova di neutralizzazione di riduzione della placca (PRNT) assays, insieme con ZIKV in cellule biologicamente rilevanti o cellule derivate dai tessuti che possono infettare ZIKV.

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Protocollo

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Campioni di siero utilizzati in questo studio sono stati ottenuti dai partecipanti umani di una coorte da Columbia. Raccolta dei campioni è stata approvata dal comitato di revisione interna (IRB) presso Universidad de Pamplona (Colombia, Sud America) e Los Potios ospedale8. I campioni sono stati forniti in forma anonima e gli investigatori non avevano accesso alle informazioni sui pazienti. I campioni di siero sono stati controllati per il sierotipo DENV. I campioni sono stati ulteriormente confermati per neutralizzare l'infezione DENV in vitro. Per il controllo, sono stati utilizzati campioni di siero da individui sani (HC) dagli Stati Uniti.

Nota: Questo protocollo può essere usato per esaminare la replica di ADE di ZIKV in qualsiasi tipo di cellula umana che esprimono il recettore fcy. Il protocollo è costituito da tre parti (Figura 1).

1. cellula semina e infezione di installazione

Nota: Per questo studio particolare, macrofagi umani primari o varietà di cellula myelomonocytic U937 (ATCC-CRL-1593.2) sono stati usati. Le cellule sono state mantenute nel medium di crescita RPMI supplementato con 10% siero bovino fetale (FBS) a un incubatore a 37 ° C con 5% di anidride carbonica (CO2). Tutti i passaggi sono stati effettuati in una biosicurezza livello 2 mobile di biosafety (BSL-2) in condizioni sterili.

  1. Cellule di4 seme 3 x 10 per bene in una piastra a 96 pozzetti a fondo piatto sterile con 100 µ l di terreno e metterli nell'incubatore 37 ° C con 5% CO2.
  2. Dopo la semina delle cellule, scongelare i campioni di siero a temperatura ambiente ed effettuare diluizioni seriali 10 volte (cioè, 1/10, 1/100, 1/1.000, 1/10.000) mescolando i campioni in medium senza siero. Aliquotare le diluizioni in una piastra a 96 pozzetti sterile. Utilizzare il virus senza siero come un ulteriore controllo.
  3. Scongelare il brodo ZIKV a 37 ° C in un bagno di acqua per 1-2 min e trasferirli rapidamente in ghiaccio per un utilizzo futuro.
  4. Aggiungere una molteplicità 0.1 di quantità equivalente di infezione (MOI) del ceppo ZIKV MR766 per le aliquote di siero.
    Nota: Assicurarsi che il fattore di diluizione rimane costante e il volume totale è di ~ 200 µ l; Questo è sufficiente per triplici copie di ogni trattamento. Tenere tre pozzi non infetti da utilizzare come controllo negativo per analisi a valle.
  5. Incubare le diluizioni del siero con il virus aggiunto nell'incubatore 37 ° C con 5% CO2 per 1 h al fine di consentire gli anticorpi DENV per formare complessi con i virions Zika (per comodità, in appresso denominata "complessi immuni").
  6. Aspirare i media dalle cellule che sono state seminate nella piastra a 96 pozzetti a fondo piatto. Lavare le cellule con sterile 1x tampone fosfato salino (1x PBS).
  7. Aggiungere 50 µ l di complessi immuni ad ogni pozzetto e incubare a loro nell'incubatore 37 ° C con 5% CO2 per 2 h.
  8. Dopo 2 h di incubazione, aspirare il supporto contenente i complessi immuni dalle celle, tramite un multicanale Pipettare e lavare le cellule 2 x con PBS 1X per rimuovere completamente i complessi immuni e qualsiasi virioni non collegati.
  9. Aggiungere 100 µ l di fresco multimediale completo supplementato con 10% FBS a ciascun pozzetto ed incubare le cellule nell'incubatore 37 ° C con 5% CO2 per 48 h.

2. estrazione del RNA

  1. Rimuovere la piastra a 96 pozzetti dall'incubatrice e trasferirlo alla cappa di biosicurezza.
  2. Aspirare i media, lavare le cellule 2 x con PBS 1X e procedere all'estrazione di RNA.
    Nota: RNA possa essere estratti con qualsiasi metodo di scelta (fare riferimento alla Tabella materiali).
  3. Aggiungere 250 µ l di tampone di lisi delle cellule con 10% β-mercaptoetanolo per pozzetto. Dispensare il buffer su e giù per almeno 5 x insieme a graffiare le cellule con la punta della pipetta per velocizzare la procedura di lisi.
  4. Trasferire i lisati di cellule nuove, con etichetta, sterili da 1,5 mL provette.
  5. Aggiungere una pari quantità di etanolo al 70% (250 µ l). Pipettare su e giù per 4x - 5x fino a quando la miscela è chiara.
  6. Trasferire la miscela (~ 500 µ l) indicata con colonne a base di silice nelle provette di raccolta da 2 mL e centrifugare a 15.000 x g per 30 s. scartare il flusso attraverso e mantenere le colonne nelle provette di raccolta stesso.
  7. Aggiungere 700 µ l di tampone di lavaggio 1 a ogni colonna e centrifugare a 15.000 x g per 30 s. scartare il flusso attraverso e mantenere le colonne nelle provette di raccolta stesso.
  8. Aggiungere 500 µ l di tampone di lavaggio 2 per ogni colonna e centrifugare a 15.000 x g per 30 s. scartare il surnatante. Ripetere questo passaggio x 2.
  9. Trasferimento le colonne in nuove provette di raccolta da 2 mL e centrifugare a 15.000 x g per 2 min. Accertarsi che le colonne basate su silice ottenere completamente asciutte e non c'è nessun etanolo lasciate dal tampone di lavaggio 2.
  10. Scartare i tubi da 2 mL e posizionare le colonne nel nuovo, sterile, etichettato, provette da 1,5 mL recupero.
  11. Aggiungere preriscaldata (42 ° C) 30 µ l di acqua RNAsi-libera al centro di ogni colonna e centrifugare a 15.000 x g per 1 min.
  12. Recuperare il RNA eluito e quantificare i campioni, utilizzando uno spettrofotometro alla lunghezza d'onda di 260 nm.
    Nota: Idealmente, determinare la purezza del RNA calcolando il rapporto tra i valori di assorbanza a 260 nm e 280 nm. Rapporto di 260/280 di RNA purificato è idealmente tra 1.8-2.0.

3. quantitativa Real-Time Polymerase Chain Reaction

Nota: Reazione a catena della polimerasi in tempo reale quantitativa (qRT-PCR) può essere effettuata utilizzando qualsiasi combinazione SYBR green che solitamente si compone di SYBR Green tingere, Taq DNA polimerasi, deossinucleotidi trifosfati (dNTPs) e una tintura passiva. Qualsiasi macchina qPCR capace di rilevazione di SYBR green può essere utilizzata per eseguire la reazione e acquisire i dati. Per questo esperimento, un kit di One-step RT-PCR è stato usato che aveva un cocktail di SYBR Green I, ROX tintura, Taq DNA polimerasi, dNTP e un'ulteriore miscela della trascrittasi inversa (vedere Tabella materiali). I primer progettato contro la regione di busta e utilizzato in questo studio per quantificare i livelli di genomica di ZIKV sono CCGCTGCCCAACACAAG per ZIKV-qF e CCACTAACGTTCTTTTGCAGACAT per ZIKV-qR. Come controllo, umano β-2-microglobulina (B2M) è stata misurata e utilizzato per normalizzare l'espressione di ZIKV (gene housekeeping). Le sequenze dell'iniettore per quantificare l'espressione genica di B2M utilizzato in questo studio sono CTCCGTGGCCTTAGCTGTG per B2M-qF e TTTGGAGTACGCTGGATAGCCT per B2M-qR. Assicurarsi di mettere tre tecnici replicati per ciascun campione per i geni di B2M e il ZIKV. L'installazione della RT-PCR è brevemente descritto di seguito.

  1. Installazione di RT-PCR
    1. Uso 100 ng di RNA per campione.
    2. Aggiungere 1 µ l da 10 azioni µM di primers inversa e diretta di un gene particolare per ogni reazione.
    3. Aggiungere 0,25 µ l di miscela della trascrittasi inversa per esempio.
    4. Per ogni reazione individuale, aggiungere 12,5 µ l della miscela SYBR Green.
    5. Aggiungere fino a 25 µ l di acqua. Fare un master di tutti i suddetti reagenti tranne RNA, aliquota mescolarlo nella piastra PCR a 96 pozzetti, e aggiungere RNA Ultima.
    6. Sigillare la piastra con nastro adesivo trasparente.
    7. Centrifugare la piastra a 1.000 x g per 1 min mescolare i reagenti.
    8. Mettere la piastra nella macchina qPCR.
  2. Profilo di RT-PCR
    Nota: Utilizzare il profilo di RT-PCR indicato nella tabella 1.
    1. Incubare i campioni a 50 ° C per 10 min al fine di garantire la sintesi di DNA complementare (cDNA).
    2. Dopo la sintesi di cDNA, attivare la Taq DNA polimerasi a 95 ° C per 5 min.
    3. Eseguire 40 cicli di denaturazione a 95 ° C per 10 s e ricottura di primer e l'estensione a 60 ° C per 30 s.
    4. Mettere il passo di curva di fusione aggiuntive (65° C) alla fine.
  3. Analisi dei dati
    1. Monitorare la curva di fusione facendo clic sulla scheda curva di fusione nel programma utilizzato per eseguire la macchina qPCR, che, idealmente, Mostra un singolo picco in tutti i campioni per un particolare gene confermare la presenza di solo un amplicone e un valore di amplificazione più di 1,6 se il algori THM considera 2 come il valore di amplificazione di 100% (il valore di amplificazione varia in base all'algoritmo utilizzato dalla macchina qPCR). Assicurarsi di utilizzare con incrementi di 0,5 ° C temperatura tra passaggi e un minimo di partecipazione di tempo di 10 s dal protocollo di curva di fusione, per ottenere risultati ottimali.
    2. Dopo essersi assicurati che non ci sono un valore singolo amplicone e buona amplificazione prima fare clic sulla scheda di dati di quantificazione per ottenere un ciclo quantitativo (valore di Ct/Cq) di ciascun campione ed esportare in Microsoft Excel.
    3. Utilizzando un foglio di calcolo, calcolare la media di ciascun campione utilizzando il valore di Ct. Successivamente, fare clic nelle formule e selezionare Media. I valori di CT medio di ogni campione (replica) vengono utilizzati per ulteriori analisi.
    4. Successivamente, calcolare il ΔCt utilizzando la formula ΔCt = media Ct del gene target - media Ct del gene di controllo (in questo caso, ΔCt = media Ct del gene ZIKV - media Ct del gene B2M).
    5. Calcolare ΔΔCt per normalizzare i dati (in questo caso, ΔΔCt = ΔCt ZIKV - esempi B2M).
    6. Calcolare che la piega aumenta l'espressione genica digitando la formula 2^-(ΔΔCt) per ogni valore di singola ΔΔCt normalizzato. I risultati dell'aumento di piega per eseguire test statistici possono essere ottenuti come descritto in precedenti studi9,10.

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Risultati

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Nella Figura 1, c'è un'illustrazione schematica passo passo tutti i passaggi eseguire il protocollo di ADE. È un diagramma schematico mostrando tutta la procedura di ADE di ZIKV dovuto immunità pre-esistente a DENV. La figura 2 Mostra come siero campioni sono stati classificati in tre gruppi differenti: campioni di infezione confermata DENV sono indicati come il gruppo DENV-infettati, DENV anticorpo-confermato campioni sono denom...

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Discussione

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Cross-reattività degli anticorpi DENV verso l'ADE di altri sierotipi DENV ha ostacolato lo sviluppo di un vaccino efficace11. ZIKV appartiene alla stessa famiglia, Flaviviridae e ha una notevole omologia con altri flavivirus, soprattutto DENV12. Il bersaglio principale degli anticorpi neutralizzanti per ZIKV e DENV è la proteina dell'involucro, che condivide un'omologia di sequenza strutturale e Quaternario molto elevato tra i due virus13,...

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Dichiarazioni

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Gli autori non hanno nulla da dichiarare.

Ringraziamenti

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Questo lavoro è stato generosamente supportato da 1R21AI129881-01 (al t.m.c.), fondi di Start-up dal National Laboratories malattie infettive emergenti e la Boston University School of Medicine.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Siero fetale bovino GEMINI100-106
iCycler BioRad785BR02188Modello n. CFX96 Modulo Ottico
Microfuge 18 CentrifugaBeckman Coulter 367160
Nanodrop-1000Thermoscientific 1072
Quantifast SYBR-Kit RT-PCR a un passo Qiagen 204154Utilizzato per il kit di isolamento dell'RNA RNeasy RNeasy RT-PCR a 1 fase
.Qiagen 74106Utilizzato per l'estrazione dell'RNA
RPMI-medium Gibco11875093

Riferimenti

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