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Articolo metodologico

Determinazione dei sottoinsiemi di regolamentazione delle cellule T nel timo murino, pancreatico drenante linfonodi e milza mediante citometria a flusso

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DOI:

10.3791/58848

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27 febbraio 2019

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In questo articolo

Sommario

Qui, presentiamo un protocollo per preparare singole cellule da timo murino, pancreatico drenante linfonodi e milza per studiare ulteriormente queste cellule mediante citometria a flusso. Inoltre, questo protocollo è stato utilizzato per determinare le sottopopolazioni di cellule T regolatorie mediante citometria a flusso.

Abstract

Il nostro sistema immunitario è costituito da un numero e una varietà di cellule immuni compreso le cellule T regolatorie (Treg) di cellule. Le cellule Treg possono essere diviso in due sottoinsiemi, cellule Treg (tTreg) derivate timiche e marginalmente indotto le cellule Treg (pTreg). Sono presenti in diversi organi del nostro corpo e possono essere distinti dagli indicatori specifici, quali Helios e Neuropiline 1. È stato segnalato che le cellule tTreg sono funzionalmente più soppressive rispetto alle cellule pTreg. Pertanto, è importante determinare la proporzione di cellule tTreg e pTreg durante l'analisi di popolazioni eterogenee delle cellule. Nel presente documento, abbiamo raccolto ghiandole del timo, linfonodi drenanti pancreatici e milze dai topi diabetici non obesi normoglicemici di distinguere le cellule di tTreg dalle cellule pTreg mediante citometria a flusso. Abbiamo preparato manualmente sospensioni di cellule singole da questi organi. Fluorocromo coniugato superficie CD4, CD8, CD25 e Neuropiline 1 anticorpi sono stati utilizzati per colorare le cellule. Erano tenute in frigorifero durante la notte. Il giorno successivo, le cellule sono state macchiate con fluorocromo coniugato anticorpi intracellulari di Foxp3 e Helios. Questi indicatori sono stati usati per caratterizzare i due sottoinsiemi di cellule Treg. Questo protocollo viene illustrato un modo semplice ma pratico per preparare singole cellule da timo murino, pancreatico drenante linfonodi e milza e utilizzarli per l'analisi citofluorimetrica.

Introduzione

Cellule regolarici di T (Treg) sono critiche per l'omeostasi del sistema immunitario. Le cellule Treg sono definite dall'espressione di antigeni di superficie CD4 e CD25 e la trascrizione fattore forkhead box P3 (Foxp3)1,2,3. Sakaguchi et al. in primo luogo ha mostrato che CD25 è costitutivamente espresso sulle cellule del soppressore di T in topi4, che ha fornito un'osservazione pionieristica per l'identificazione di cellule Treg umane. Le cellule Treg svolgono un ruolo centrale nella tolleranza immunitaria esercitando una soppressiva capacità attrave....

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Protocollo

Il Comitato di etica animale locale all'Università di Uppsala ha approvato esperimenti sugli animali.

1. gli organi da animali di raccolta

  1. Sacrificare i topi da dislocazione cervicale.
  2. Posizionare le ghiandole del timo e milze in 20 mL scintillazione fiale o provette coniche da 15 mL riempite con 5 mL di Hanks´ soluzione salina (HBSS) equilibrata. Posto PDLNs in microprovette da 1,5 mL riempite con 1 mL di RPMI 1640. Utilizzare intero timo e milza e tutti i PDLNs.
    Nota: Organi dovrebbero essere tenuti su ghiaccio durante tutta la procedura e l'investigatore dovrebbe cercare di essere veloci durante la....

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Risultati

Per studiare l'espressione di Nrp1 e Helios sulle cellule tTreg e pTreg, abbiamo preparato le celluli dalle ghiandole del timo, PDLNs e milze di topi NOD normoglicemici e li macchiato con gli indicatori delle cellule Treg CD4, CD25, Foxp3, Helios e Nrp1 per flusso cytometric analisi. I risultati sono stati analizzati come mostrato nel rappresentante gating strategie (Figura 1). Abbiamo trovato che la proporzione di cellule di Helios+ tra CD4+<.......

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Discussione

In questo studio, abbiamo isolato cellule singole ghiandole del timo, PDLNs e milze di topi NOD e studiato l'espressione di Helios e Nrp1 in CD4+CD8–CD25+Foxp3+ Treg cellule mediante citometria a flusso. Nel presente studio, sono stati utilizzati topi NOD, che è un modello murino di diabete di tipo 1. In uno studio precedente, abbiamo utilizzato il CD-1 diversi ceppi di topi wild-type e topi C57BL/6 di indagare se Helios o Nrp1 è un migliore indicatore per distinguere le cellul.......

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla a rivelare.

Ringraziamenti

Il presente studio è stato sostenuto finanziariamente dal Consiglio svedese della ricerca, EXODIAB, la Fondazione svedese per il diabete, fondo di diabete bambino svedese, SEB Diabetesfonden e O.E. och Edla Johanssons vetenskapliga stiftelse. Autori vorrebbero anche grazie Per-Ola Carlsson e Stellan Sandler per loro supporti e discussioni.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
TopiPanatura interna
HBSSStatens veterinä 991750
RPMI-1640Sigma-AldrichR0883-500ML
NH4ClEMD Millipore1011450500
eBioscience Foxp3 / Set di tamponi per colorazione del fattore di trascrizioneThermoFisher00-5523-00Contiene concentrato di fissazione/permeabilizzazione, diluente di fissazione/permeabilizzazione e tampone di permeabilizzazione (10x)
eBioscience Tampone di colorazione per citometria a flussoThermoFisher00-4222-26
CD4 Anticorpo monoclonale (RM4-5), FITC, eBioscienceThermoFisher11-0042-85
CD25 Anticorpo monoclonale (PC61.5), PE, eBioscienceThermoFisher12-0251-83
BD Pharmingen  APC-H7 Ratto anti-topo CD8aBD Biosciences560182
Topo Neuropilin-1 APC-coniugato AnticorpoR & D SystemsFAB5994A
Anticorpo monoclonale FOXP3 (FJK-16s), PE-Cianina7, eBioscienceThermoFisher25-5773-82
Anticorpo Helios umano anti-topo Pacific BlueBioLegend137220
Provetta in polistirene a fondo tondo Falcon 5 mL, con filtro cellulare Tappo a scattoCORNING352235A 35 &; m la rete di nylon è incorporata nel tappo a scatto a doppia posizione
Provetta 15 mL, 120 mm x17 mm, PPSarstedt62.554.002
Microprovetta 1,5 mLSarstedt72.690.001
Fiale a scintillazione monousoCitometria a flusso WHEATON
Software di analisi per
Inivai TechnologiesFlowlogic
NOD citometria a flusso BD

Riferimenti

  1. Fontenot, J. D., Gavin, M. A., Rudensky, A. Y. Foxp3 programs the development and function of CD4+CD25+ regulatory T cells. Nature Immunology. 4 (4), 330-336 (2003).
  2. Khattri, R., Cox, T., Yasayko, S. A., Ramsdell, F. An essential role for Scurfin in CD4+CD25+ T r....

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Ristampe e permessi

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