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Articolo metodologico

Visualizzazione della proteina Kinase un'attività nel mouse behaving fissato per la testa utilizzando la microscopia fluorescenza a due fotoinina in vivo

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DOI:

10.3791/59526

7 giugno 2019

* These authors contributed equally

In questo articolo

Sommario

Viene presentata una procedura per visualizzare le attività della chinasi proteica A nei topi con problemi alla testa e che si comportano. Un giornalista di attività A-kinase migliorato, tAKAR, è espresso in neuroni corticali e reso accessibile per l'imaging attraverso una finestra cranica. La microscopia di imaging a durata della fluorescenza a due fotoni viene utilizzata per visualizzare le attività PKA in vivo durante la locomozione applicata.

Abstract

Neuromodulazione esercita un potente controllo sulla funzione del cervello. La disfunzione dei sistemi neuromodulatori si traduce in disturbi neurologici e psichiatrici. Nonostante la loro importanza, le tecnologie per monitorare gli eventi neuromodulatori con risoluzione cellulare stanno appena cominciando ad emergere. I neuromodulatori, come dopamina, noradrenalina, acetilcolina e serotonina, innescano eventi di segnalazione intracellulare tramite i rispettivi recettori accoppiati alle proteine G per modulare l'eccitabilità neuronale, le comunicazioni sinaptiche e altri neuronali funzioni, regolando così l'elaborazione delle informazioni nella rete neuronale. I neuromodulatori di cui sopra convergono sul percorso cAMP/protein a chinasi A (PKA). Pertanto, l'imaging PKA in vivo con risoluzione a singola cellula è stato sviluppato come lettura per gli eventi neuromodulatori in modo analogo all'imaging del calcio per le attività elettriche neuronali. Qui, viene presentato un metodo per visualizzare l'attività PKA a livello di singoli neuroni nella corteccia di topi che si comportano alla testa.Here, a method is presented to visualize PKA activity at the level of individual neurons in the cortex of head-fixed behaving mic. A tale scopo, viene utilizzato un giornalista di attività A-kinasi (AKAR) migliorato, chiamato tAKAR, che si basa sul trasferimento di energia di risonanza del Fàrster (FRET). Questo sensore PKA geneticamente codificato viene introdotto nella corteccia motoria tramite elettroporazione in utero (IUE) di plasmidi di DNA, o iniezione stereotassica di virus adeno-associato (AAV). I cambiamenti freT sono immagini utilizzando la microscopia di imaging a vita a durata a due fotoni (2pFLIM), che offre vantaggi rispetto alle misurazioni geometriche FRET per quantificare il segnale FRET nel tessuto cerebrale che disperde la luce. Per studiare le attività della PKA durante la locomozione forzata, tAKAR è immagine attraverso una finestra cranica cronica sopra la corteccia di topi svegli, fissati per la testa, che corrono o poggiano su un tapis roulant motorizzato a velocità controllata. Questo approccio di imaging sarà applicabile a molte altre regioni del cervello per studiare le corrispondenti attività PKA indotte dal comportamento e ad altri sensori basati su FLIM per l'imaging in vivo.

Introduzione

La neuromodulazione, nota anche come trasmissione sinaptica lenta, impone un forte controllo sulla funzione cerebrale durante i diversi stati comportamentali, come lo stress, l'eccitazione, l'attenzione e la locomozione1,2,3, 4. Nonostante la sua importanza, lo studio di quando e dove si svolgono eventi di neuromodulatori è ancora agli inizi. Neuromodulatori, tra cui acetilcolina, dopamina, noradrenalina, serotonina, e molti neuropeptidi, attivare G recettori accoppiati a proteina (GPCR), che a sua volta innescano percorsi di messaggeri intr....

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Protocollo

Tutti i metodi qui descritti sono stati approvati dall'Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) dell'Oregon Health and Science University.

1. Configurazione del microscopio 2pFLIM

  1. Installare un modulo di conteggio dei tempi di fotoni (PTCM, tabella deimateriali) e connettersi al computer (Figura 1) in base al manuale del produttore.
    NOT: Il PTCM è in genere una scheda di computer che riceve un ingresso di "sincronizzazione" per la temporizzazione dell'impulso laser e un ingresso fotone dal tubo fotomoltiplicatore (PMT). Riceve anche la temporizzazione del....

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Risultati

I sensori FRET-FLIM consentono la visualizzazione di molti percorsi di segnalazione diversi, tra cui il percorso cAMP/PKA coinvolto nella neuromodulazione. L'attuale protocollo utilizza il sensore tAKAR, sviluppato di recente, in combinazione con 2pFLIM per visualizzare le attività PKA nei mouse che si comportano con la testa fissa. La maggior parte dei microscopi a due fotoni esistenti può essere aggiornata con capacità 2pFLIM aggiungendo da tre a quattro componenti, come illustrato nell.......

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Discussione

Questo protocollo dimostra l'uso del sensore FRET-FLIM tAKAR per visualizzare l'attività PKA innescata dalla neuromodulazione nei topi che si comportano con la testa fissa. Questa applicazione si basa su test approfonditi e caratterizzazioni di tAKAR , in vitro e in vivo per dimostrare che il segnale FLIM ottenuto è rilevante per gli eventi neuromodulatori fisiologici17. Qui, un'applicazione in vivo, l'attività PKA indotta dalla locomozione nella corteccia motoria, viene utilizzata per descrivere .......

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Ringraziamenti

Ringraziamo la signora Tess J. Lameyer, la signora Ruth Frank, e il dr. Michael A. Muniak per le modifiche e i commenti, e il dottor Ryohei Yasuda a Max Planck Florida per il software di acquisizione 2pFLIM. Questo lavoro è stato sostenuto da due premi BRAIN Initiative U01NS094247 (H.e T.M.) e R01NS104944 (H. e T.M.), una sovvenzione R01 R01 R01NS081071 (T.M.) e una concessione R21 R21 R21NS097856 (H. ) . Tutti i premi sono dal National Institute of Neurological Disorders and Stroke, Stati Uniti.

....

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
0,2 μ m filtro per siringa in acetato di cellulosaNalgene190-2520Passaggio 3.2.2.
Obiettivo ad immersione in acqua 16x 0,8 NANikonMRP07220Passaggio 5.5.
Cavo a 3 pinUS digitaleCA-MIC3-SH-NCPassaggio 2.5. Per collegare il sensore di rotazione all'ingresso DAQ del microscopio
Breadboard in alluminioThorlabsMB1012Passaggio 2.5.
Software AnimalTracker MATLABN/AN/APassaggio 2.5 e sezioni 5 - 6. Verrà fornito su richiesta all'autore principale
Filtro barriera passa-bandaChromaET500-40mPassaggio 1.4.
Piastra a gabbiaThorlabsCP01Passaggio 2.4. Utilizzato come supporto per sensore
di rotazione Frese in acciaio al carbonio per microtrapano, diametro della punta 0,5 mmFST19007-05Passaggi 3.2.3. e 4.4.
Vetrino coprioggetti circolare (diametro 5 mm)VWR101413-528Passaggio 4.5.
Porta ago per iniezione su misuraN/AN/APassaggio 3.2.4. Dettagli tecnici forniti su richiesta all'autore principale
Acrilico dentaleYates Motloid44114Passaggi 4.3. e 4.5.
Trapano dentale; Prodotti Microtorque iiRam66699Passaggi 3.2.3. e 4.4.
Polimero trasparente DowsilThe Dow Chemical Company3-4680Passaggio 4.5. Dura artificiale
Elettrodo per elettroporazioneBexLF650P5Passaggio 3.1.4.
ElettroporatoreBexCUY21Passaggio 3.1.4.
Verde veloce FCFSigma-aldrichF7258-25GPassaggio 3.1.1.
Software FLIMimage MATLABN/AN/ASezione 5. Gentilmente fornito dal Dr. Ryohei Yasuda, Max Planck Florida
FLIMview software MATLABN/AN/ASezioni 5. e 6. Verrà fornito su richiesta all'autore principale
Colla compatibile con schiuma (Gorilla White Glue)Gorilla5201204Passaggio 2.3.
Piastradi testa N/AN/APassaggio 4.3. Dettagli tecnici forniti su richiesta all'autore principale
PortatargaN/AN/APassaggio 2.6. Dettagli tecnici forniti su richiesta autore principale, utilizzato in combinazione con la staffa del palo di montaggio e la staffa ad angolo retto
Micromanipolatore idraulicoNarishigeMO-10Passaggio 3.2.4.
Colla KrazyColla KrazyKG82648RPassaggio 4.3. Colla a base di cianoacrilato
Tubo fotomoltiplicatore veloce a basso rumoreHamamatsuH7422PA-40 o H10769PA-40Passaggio 1.3.
MATLAB 2012bMathworksN/APassaggi 2.6 e sezioni 5 e 6. Utilizzato per eseguire il software di acquisizione e analisi dei dati
del microscopioMotor ZhengkeZGA37RGPassaggio 2.4.
Regolatore di velocità del motoreElenkerEK-G00015A1-1Passaggio 2.5.
Micromanipolatore motorizzatoSutterMP-285Passaggio 3.2.4.
Base di montaggioThorlabsBA1SPassaggio 2.5. Utilizzato per pali per motore e sensore in combinazione con PH4 e TR2
Palodi montaggio ThorlabsP14Passaggio 2.6. Utilizzato per il supporto della piastra di testa in combinazione con PB2
Base per montanteThorlabsPB2Passaggio 2.6. Utilizzato per il supporto della piastra di testa in combinazione con P14
Staffa di montaggioThorlabsC1515Passaggio 2.6. Utilizzato in combinazione con la staffa ad angolo retto e il supporto della piastra di testa
Palo otticoThorlabsTR2Step 2.5. Utilizzato per perni per motore e sensore in combinazione con BA1S e PH4
Soluzione salina tamponata con fosfatoΝ/ΑΝ/ΑPassaggio 3.2.2. Protocollo: Cold Spring Harbor Protocols 2006, doi: 10.1101/pbd.rec8247
FotodiodoThorlabsFDS010Passaggio 1.2.
Modulo di conteggio temporizzazionefotonica Becker e HicklSPC-150Passaggio 1.1.
Plasmide: tAKAR&alfa; (CAG-tAKARα-WPRE)Addgene119913Passaggio 3.1.3.
PortapaloThorlabsPH4Passaggio 2.5. Utilizzato per pali per motore e sensore in combinazione con BA1S e TR2 Staffa
ad angolo rettoThorlabsAB90Passaggio 2.6 Utilizzato in combinazione con la staffa di montaggio e il supporto della piastra di testa
Encoder di rotazioneUS digital MA3-A10-250-NPassaggio 2.4.
Tappetino in gommaRubber-CalB01DCR5LUGPassaggio 2.1.
Giunto albero (1/4 di pollice x 1/4 di pollice)McMaster6208K433Passi 2.3. e 2.4.
ScanImage 3.6Svoboda Lab/Vidrio TechnologyN/APassaggi 5.9 e 6.1.
Splitter di segnaleBecker e HicklHPM-CON-02Passaggio 1.3.1.
Asse in acciaio inox (diametro 1/4 di pollice, L = 12 pollice)McMaster1327K66Passo 2.3.
Sistema di allineamento stereotassicoDavid kopf1900passaggi 3.2. e 4.1. modificato; Micromanipolatore Sutter, portaaghi per iniezione su misura, micromanipolatore idraulico
Microscopio a due fotoniN/AN/ASezione 5. Costruito sulla base del sistema modulare di microscopia multifotone in vivo (MIMMS) di HHMI Janelia Research Campus (https://www.janelia.org/open-science/mimms)
Adesivo tissutale Vetbond3M14006Passaggio 3.2.6.
Virus: tAKARα (AAV2/1 hSyn-tAKARα-WPRE)Addgene119921Passaggio 3.2.2.
Rullo in schiuma PE bianco (8 pollici x 12 pollici)Imprese di fabbricazione INC.30-2261Passaggio 2.1.1.
Polistirene bianco per metà sferaGrahamSweet200 mm diametro 2 metà cavePassaggio 2.1.1.
ZipkickerPACERPT29Passaggio 4.3. Acceleratore di indurimento
: ,

Riferimenti

  1. Greengard, P. The Neurobiology of Slow Synaptic Transmission. Science. 294 (5544), 1024-1030 (2001).
  2. Petersen, S. E., Posner, M. I. The attention system of the human brain: 20 years after. Annual Review of Neuroscience. 35 (2), 73-89 (2012).
  3. Sun, Y., Hunt, S., Sa....

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Ristampe e permessi

Tag

Imaging in vivosensore tAKARsensore PKA basato su FRETelettroporazione in uteroiniezione stereotassica di AAVfinestra cranica cronicatapis roulant per locomozione forzata