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Articolo metodologico

Valutazione dello stato di fecondazione tracciando lo sperma Morfologia nucleare in Arabidopsis Doppia Fecondazione

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DOI:

10.3791/59916

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29 agosto 2019

 , 

In questo articolo

Sommario

Dimostriamo un metodo per determinare la fecondazione riuscita o fallita sulla base della morfologia nucleare dello sperma nell'Arabidopsis doppia fecondazione utilizzando un microscopio a epifluorescenza.

Abstract

Le piante da fiore hanno un sistema di riproduzione sessuale unico chiamato "doppia fecondazione", in cui ciascuno spermatozoi si fonde con precisione con una cellula uovo o una cellula centrale. Così, due eventi di fecondazione indipendenti si svolgono quasi simultaneamente. La cellula uovo fecondata e la cellula centrale si sviluppano rispettivamente in zigote ed endosperma. Pertanto, un controllo preciso della doppia fecondazione è essenziale per lo sviluppo del seme che ne consegue. La doppia fecondazione si verifica nel gametophyte femminile (sacco embrionale), che è profondamente nascosto e coperto da spessi tessuti ovuli e ovarici. Questa costruzione del tessuto piisilo rende abbastanza difficile l'osservazione e l'analisi della doppia fecondazione e ha creato la situazione attuale in cui molte domande riguardanti il meccanismo della doppia fecondazione rimangono senza risposta. Per la valutazione funzionale di un potenziale candidato per l'regolatore di fecondazione, l'analisi fenotipica della fecondazione è importante. Per giudicare il completamento della fecondazione in Arabidopsis thaliana, le forme dei segnali di fluorescenza che etichettano i nuclei dello sperma vengono utilizzate come indicatori. Una cellula sperma che non riesce a fertilizzare è indicata da un segnale di fluorescenza condensata al di fuori dei gameti femminili, mentre una cellula sperma che concime con successo è indicata da un segnale dedensato a causa della karyogamia con il nucleo dei gameti femminili. Il metodo qui descritto fornisce uno strumento per determinare la fecondazione riuscita o non riuscita in condizioni di invivo.

Introduzione

Le piante da fiore producono semi attraverso la doppia fecondazione, un processo che è direttamente controllato da interazioni tra proteine localizzate sulla membrana plasmatica gameta1,2. Pianta da Fiore gameti maschili, un paio di spermatozoi, si sviluppano in polline. Un tubo di polline che cresce dopo l'impollinazione fornisce una coppia di spermatozoi ai gameti femminili, una cellula uovo e una cellula centrale, che si sviluppano in un sacco embrionale. Dopo che i gameti maschili e femminili si incontrano, le proteine sulla superficie dei gameti promuovono il riconoscimento, l'attaccamento e la fusione pe....

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Protocollo

1. Impollinazione artificiale

NOT: Prima di iniziare il processo, è necessaria una coppia di pinze n. 5.

  1. Coltivare A. thaliana (Col-0) a 22 gradi sotto un ciclo scuro di luce/8 chili di 16 ore in una camera di crescita.
    NOT: Tagliare e rimuovere il primo gambo di fiori sviluppato con forbici per promuovere lo sviluppo di gemme ascellari. Le piante in crescita vigorosa (2-3 settimane dopo il taglio del primo gambo; altezza della pianta circa 25 cm) sono adatte per l'analisi.
  2. Per evitare, rimuovere sepal (Figura 1B), petalo (

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Risultati

Gli ovuli di un pistilio impollinato con DMP9KD/HTR10-mRFP sono stati raccolti a 7-8 HAP e osservati.

La maggior parte degli ovuli conteneva due nuclei di spermatozoi con etichetta mRFP con etichetta mRFP con etichetta e mOFST con etichetta durante la prima pagina (lato micropila) e le posizioni del nucleo delle cellule centrali (lato finale di Charazal), rispettivamente (Figura 3A

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Discussione

Etichette HTR10-mRFP cromatina paterna (cioè, visualizza i nuclei delle cellule spermatiche), e la dinamica nella doppia fecondazione sono state segnalate7. Immediatamente dopo il rilascio da un tubo di polline, i nuclei di spermatozoi etichettati con etichetta HTR10-mRFP sono ancora condensati. Tuttavia, ciascuno dei nuclei di sperma viene decondenato dopo la fusione con un nucleo gameti femminile fecondato a karyogamy tre o quattro ore dopo la fusione della membrana gamete7

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Ringraziamenti

Questo lavoro è stato sostenuto dalla sovvenzione KAKENHI della Japan Society for the Promotion of Science (DA JP17H05832 a T. I.) e dal finanziamento del Programma di Promozione della Ricerca sulle Scienze Molecolari delle Piante Petrolchimiche dell'Università di Chiba (Giappone).

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Microscopio a epifluorescenzaBX51Olympus
Vetro di copertura VetroMatsunamiC018181
DMP9KD/HTR10-mRFPArabidopsis thaliana, HTR10-mRFP background
Takahashi et al. (2018)6
NastrobiadesivoNichibanNW-15S15 mm di larghezza
DP72OlympusDegital
fotocamera PinzeVigorSono disponibili tutte le 5 pinze disponibili
Camera di crescitaNihonikaLPH-411PFQDT-SP
HTR10-mRFPArabidopsis thaliana, ecotipo Columbia-0 (Col-0) background
Ingouff et al. ( 2007)7
Ago per iniezioneTerumoNN-2719S27 G
Vetro per vetriniVetro MatsunamiS9443
SZX9Microscopio da dissezioneOlympus
U-MRFPHQper filtro a fluorescenza Olympus (Eccitazione: BP535-555, Emissione: BA570-625, Specchio bicromatico: DM565)
Obiettivo (NA 1.3),
UPlanSApo 20xOlympusObiettivo (NA 0.75), asciutto
Cubo UPlanFL N 40x Olympus a immersione in olio

Riferimenti

  1. Mori, T., Kawai-Toyooka, H., Igawa, T., Nozaki, H. Gamete dialogs in green lineages. Molecular Plant. 8, 1442-1454 (2015).
  2. Dresselhaus, T., Sprunck, S., Wessel, G. M. Fertilization mechanisms in flowering plants. Current Biology. 26, R125-R139 (2016).
  3. Mori, T., Kuroiwa, H., Higashiyama, T., Kuro....

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Ristampe e permessi

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