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Articolo metodologico

Ottimizzazione per il sequenziamento e l'analisi di campioni FFPE-RNA degradati

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DOI:

10.3791/61060

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8 giugno 2020

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* These authors contributed equally

In questo articolo

Sommario

Questo metodo descrive i passaggi per migliorare la qualità e la quantità dei dati di sequenza che possono essere ottenuti da campioni di RNA incorporati in paraffina fissata alla formalina (FFPE). Descriviamo la metodologia per valutare in modo più accurato la qualità dei campioni di FFPE-RNA, preparare le librerie di sequenziamento e analizzare i dati provenienti da campioni DI FFPE-RNA.

Abstract

L'analisi dell'espressione genica mediante il sequenziamento dell'RNA (RNA-seq) consente informazioni uniche su campioni clinici che possono potenzialmente portare a una comprensione meccanicistica della base di varie malattie, nonché ai meccanismi di resistenza e/o suscettibilità. Tuttavia, i tessuti FFPE, che rappresentano il metodo più comune per preservare la morfologia dei tessuti nei campioni clinici, non sono le migliori fonti per l'analisi della profilazione dell'espressione genica. L'RNA ottenuto da tali campioni è spesso degradato, frammentato e modificato chimicamente, il che porta a librerie di sequenziamento non ottimali. A loro volta, questi generano dati di sequenza di scarsa qualità che potrebbero non essere affidabili per l'analisi dell'espressione genica e la scoperta della mutazione. Al fine di sfruttare al meglio i campioni FFPE e ottenere i migliori dati possibili da campioni di bassa qualità, è importante prendere alcune precauzioni durante la pianificazione della progettazione sperimentale, la preparazione delle librerie di sequenziamento e durante l'analisi dei dati. Ciò include l'uso di metriche appropriate per un controllo qualità di esempio preciso (QC), l'identificazione dei metodi migliori per i vari passaggi durante la generazione della libreria di sequenziamento e un'attenta libreria QC. Inoltre, l'applicazione di strumenti software e parametri corretti per l'analisi dei dati di sequenza è fondamentale per identificare gli artefatti nei dati RNA-seq, filtrare la contaminazione e leggere di bassa qualità, valutare l'uniformità della copertura genica e misurare la riproducibilità dei profili di espressione genica tra le repliche biologiche. Questi passaggi possono garantire un'elevata precisione e riproducibilità per la profilazione di campioni di RNA molto eterogenei. Qui descriviamo i vari passaggi per il QC di esempio, la preparazione della libreria e il QC, il sequenziamento e l'analisi dei dati che possono contribuire ad aumentare la quantità di dati utili ottenuti da RNA di bassa qualità, come quello ottenuto dai tessuti FFPE-RNA.

Introduzione

L'uso di approcci di sequenziamento di nuova generazione ci ha permesso di ottenere una grande quantità di informazioni da vari tipi di campioni. Tuttavia, i campioni vecchi e mal conservati rimangono inutilizzabili per i metodi comunemente utilizzati per generare dati di sequenza e spesso richiedono modifiche a protocolli consolidati. I tessuti FFPE rappresentano un tale tipo di campione che è stato ampiamente utilizzato per i campioni clinici1,2,3. Mentre la conservazione FFPE mantiene la morfologia dei tessuti, gli acidi nucleici nei tessuti FFPE di solito presentano una v....

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Protocollo

1. Quantità di RNA e valutazione della qualità

  1. Selezionare i campioni FFPE in base a criteri predefiniti ed estrarre l'RNA utilizzando un metodo appropriato (ad esempio, kit di estrazione acido FFPE-nuclei, tabella dei materiali).
    NOTA: Ci sono diversi metodi disponibili per l'estrazione FFPE-RNA, tra cui i metodi di microdissezione più recenti che possono funzionare con pochissimi tessuti ed estrarre RNA di buona qualità12,13,14.
  2. La massima attenzione deve essere presa per preservare l'integrità dell'RNA in tutte le fasi. Ciò include l....

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Risultati

La metodologia descritta in precedenza è stata applicata a 67 campioni di FFPE che erano stati conservati in una varietà di condizioni diverse per 7-32 anni (il tempo di conservazione dei campioni mediani era di 17,5 anni). I dati del set di dati e dell'analisi qui presentati sono stati descritti in precedenza e pubblicati in. Per controllare la qualità del campione come descritto in precedenza (ad esempio, le tracce di esempio nella figura 2),DV100 è risul.......

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Discussione

Il metodo descritto qui descrive i passaggi principali necessari per ottenere buoni dati di sequenza da campioni di FFPE-RNA. I punti principali da considerare con questo metodo sono: (1) Assicurarsi che l'RNA sia preservato al meglio dopo l'estrazione riducendo al minimo la manipolazione del campione e il congelamento e lo scongelamento dei cicli. Aliquote QC separate sono molto utili. (2) Utilizzare una metrica QC che è migliore per il set di campioni specificato. I valori RIN e DV200 spesso non sono utili p.......

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Dichiarazioni

Questo lavoro è stato finanziato dal National Cancer Institute (NCI), National Institutes of Health (NIH). è l'appaltatore delle operazioni e del supporto tecnico del Frederick National Laboratory for Cancer Research, interamente finanziato dalla NIH. Diversi autori (Yz, MM, KT, YL, JS, BT) sono affiliati a Leidos Biomedical Research, Inc., ma tutti gli autori sono completamente finanziati dall'Istituto Nazionale per il Cancro, compresi gli stipendi degli autori e i materiali di ricerca. non ha fornito stipendio agli autori (Yz, MM, KT, YL, JS, BT) o materiale per lo studio, né ha avuto alcun ruolo nella progettazione dello studio, nella raccolta di dati, nell'analisi, nella pubblicazione o nella preparazione del manoscritto.

Ringraziamenti

Siamo grati alla Dott.ssa Danielle Carrick (Division of Cancer Control and Population Sciences, National Cancer Institute) per l'aiuto continuo, in particolare per l'introduzione di questo studio, fornendoci i campioni e per suggerimenti utili durante l'analisi dei dati. Ringraziamo sinceramente tutti i membri del CCR Sequencing Facility presso il Frederick National Laboratory for Cancer Research per il loro aiuto durante la preparazione del campione e il sequenziamento, in particolare Brenda Ho per l'assistenza nel campione QC, Oksana German per la biblioteca QC, Tatyana Smirnova per l'esecuzione dei sequencer. Vorremmo anche ringraziare Tsai-wei Shen e Ashley Walton....

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
2100 BioanalizzatoreAgilentG2939BA
Kit Agilent DNA 7500Agilent5067-1506
Kit DNA ad alta sensibilità Agilent5067-4626
Agilent RNA 6000 Nano KitAgilent5067-1511
AllPrep DNA/RNA FFPE KitQiagen80234
CFX96 Touch SystemKitdi 1855195
v2-IlluminaKapaBiosystemsKK4824
NEBNext Ultra II Kit di preparazione della libreria di RNA direzionale per IlluminaNew England BiolabsE7765Shttps://www.neb.com/protocols/2017/02/07/protocol-for-use-with-ffpe-rna-nebnext-rrna-depletion-kit
NEBSuccessivo kit di deplezione dell'rRNA (umano/topo/ratto)New England BiolabsE6310L
NextSeq 500 Sistema di sequenziamentoIlluminaSY-415-1001NextSeq 500 Guida al sistema: https://support.illumina.com/content/dam/illumina-support/documents/documentation/system_documentation/nextseq/nextseq-500-system-guide-15046563-06.pdf
NextSeq Kit di controllo PhiXIlluminaFC-110-3002
NSQ 500/550 Hi Output KT v2.5 (150 CYS)Illumina
10X Genomics Separatore magnetico10X Genomics120250
Rotatore MultimixerVWR13916-822
C1000 Touch Thermal CyclerBio-Rad1851197
Kit di reagenti per il sequenziamentoIllumina20024907
Pacchetto di celle a flussoIllumina20024907
Cartuccia tampone e cartuccia reagenteIllumina20024907
Soluzione di idrossido di sodio (0,2 N)Millipore SigmaSX0607D-6
TRIS-HCL Tampone 1,0 M, pH 7,0Fisher Scientific50-151-871
di quantificazione della libreria Bio-Rad20024907

Riferimenti

  1. Carrick, D. M., et al. Robustness of Next Generation Sequencing on Older Formalin-Fixed Paraffin-Embedded Tissue. PLoS One. 10 (7), 0127353(2015).
  2. Hedegaard, J., et al.

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Ristampe e permessi

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