Articolo metodologico

Sondare l'attività elettrochimica superficiale dei nanomateriali utilizzando un microscopio elettrochimico a scansione microscopia a forza atomica ibrida (AFM-SECM)

DOI:

10.3791/61111

⸱

10 febbraio 2021

 ,  ,  , 
1Department of Civil and Environmental Engineering, New Jersey Institute of Technology

In questo articolo

Sommario

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La microscopia a forza atomica (AFM) combinata con la microscopia elettrochimica a scansione (SECM), vale a dire, AFM-SECM, può essere utilizzata per acquisire simultaneamente informazioni topografiche ed elettrochimiche ad alta risoluzione sulle superfici dei materiali su scala nanometrica. Tali informazioni sono fondamentali per comprendere proprietà eterogenee (ad esempio, reattività, difetti e siti di reazione) su superfici locali di nanomateriali, elettrodi e biomateriali.

Abstract

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La microscopia elettrochimica a scansione (SECM) viene utilizzata per misurare il comportamento elettrochimico locale delle interfacce liquido/solido, liquido/gas e liquido/liquido. La microscopia a forza atomica (AFM) è uno strumento versatile per caratterizzare micro e nanostruttura in termini di topografia e proprietà meccaniche. Tuttavia, il SECM convenzionale o AFM fornisce informazioni limitate risolte lateralmente sulle proprietà elettriche o elettrochimiche su scala nanometrica. Ad esempio, l'attività di una superficie nanomateriale a livelli di sfaccettature cristalline è difficile da risolvere con i metodi elettrochimica convenzionali. Questo documento riporta l'applicazione di una combinazione di AFM e SECM, vale a dire AFM-SECM, per sondare l'attività elettrochimica superficiale su scala nanometrica acquisendo al contempo dati topografici ad alta risoluzione. Tali misurazioni sono fondamentali per comprendere la relazione tra nanostruttura e attività di reazione, che è rilevante per una vasta gamma di applicazioni nella scienza dei materiali, nelle scienze della vita e nei processi chimici. La versatilità dell'AFM-SECM combinato è dimostrata mappando le proprietà topografiche ed elettrochimiche delle nanoparticelle sfaccettate (NP) e delle nanobolle (NB), rispettivamente. Rispetto all'imaging SECM delle nanostrutture precedentemente riportato, questo AFM-SECM consente una valutazione quantitativa dell'attività superficiale locale o della reattività con una risoluzione più elevata della mappatura della superficie.

Introduzione

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La caratterizzazione del comportamento elettrochimico (EC) può fornire approfondimenti critici sulla cinetica e sui meccanismi delle reazioni interfacciali in diversi campi, come la biologia1,2,l'energia 3,4,la sintesi deimateriali 5,6,7e il processochimico 8,9. Le misurazioni CE tradizionali, tra cui la spettroscopia di impedenza elettrochimica10,i metodi di rumore elettrochimico11,la titolazione intermittente galvanostatica12e la voltammetriaciclica 13 vengono solitamente eseguite su scala macroscopica e forniscono una risposta media superficiale. Pertanto, è difficile estrarre informazioni su come l'attività elettrochimica sia distribuita su una superficie, ma le proprietà superficiali su scala locale su scala nanometrica sono particolarmente importanti dove i nanomateriali sono ampiamente utilizzati. Pertanto, le nuove tecniche in grado di catturare simultaneamente sia l'informazione multidimensionale su scala nanometrica che l'elettrochimica sono altamente desiderabili.

La microscopia elettrochimica a scansione (SECM) è una tecnica ampiamente utilizzata per misurare l'attività elettrochimica localizzata dei materiali su micro e nanoscala14. Tipicamente, SECM utilizza un ultra-microelettrode come sonda per rilevare specie chimiche elettroattive mentre scansiona una superficie del campione per risolvere spazialmente le proprietà elettrochimichelocali 15. La corrente misurata alla sonda è prodotta dalla riduzione (o ossidazione) della specie mediatrice, e questa corrente è un indicatore della reattività elettrochimica sulla superficie del campione. Secm si è evoluto in modo significativo dopo la sua prima nascita nel1989 16,17, ma è ancora sfidato da due limitazioni principali. Poiché i segnali EC sono tipicamente sensibili alle caratteristiche di interazione punta-substrato, una limitazione del SECM è che mantenere la sonda ad un'altezza costante impedisce una correlazione diretta dell'attività elettrochimica con il paesaggio superficiale, a causa della convoluzione della topografia con le informazioni CEraccolte 18. In secondo luogo, è difficile per un sistema SECM commerciale ottenere una risoluzione dell'immagine sub-micrometrica (μm) poiché la risoluzione spaziale è parzialmente determinata dalle dimensioni della sonda, che si trova sulla scala micrometrica19. Pertanto, i nanoelettrodi, gli elettrodi con un diametro nell'intervallo nanometrico, sono sempre più utilizzati in SECM per ottenere una risoluzione inferiore alla scala sub-micrometrica20,21,22,23.

Per fornire un controllo costante della distanza punta-substrato e ottenere una risoluzione elettrochimica spaziale più elevata, sono state utilizzate diverse tecniche ibride di SECM, come il posizionamento della conduzioneionica 24,il posizionamento della forza ditaglio 25,la corrente alternata SECM26e il posizionamento della microscopia a forza atomica (AFM). Tra queste strumentazioni, SECM che integra il posizionamento AFM (AFM-SECM) è diventato un approccio altamente promettente. Poiché AFM è in grado di fornire distanze fisse del substrato di punta, la tecnica AFM-SECM integrata consente l'acquisizione simultanea di informazioni strutturali ed elettrochimiche superficiali su scala nanometrica attraverso la mappatura o lo spazzamento del campione con le punte AFM affilate. Dalla prima operazione di successo di AFM-SECM da parte di MacPherson e Unwin nel 199627,sono stati raggiunti miglioramenti significativi nella progettazione e fabbricazione di sonde, nonché le sue applicazioni in vari campi di ricerca come l'elettrochimica nei processi chimici e biologici. Ad esempio, AFM-SECM è stato implementato per l'imaging di superfici di materiale composito, come nanoparticelle metallichenobili 28, elettrodi funzionalizzati o dimensionalmentestabili 29,30e dispositivi elettronici31. AFM-SECM può mappare i siti elettrochimicamente attivi dall'immagine corrente della punta.

Misurazioni topografiche ed elettrochimiche simultanee potrebbero essere ottenute anche con altre tecniche come AFM conduttivo32,33, 34,35,AFM elettrochimico (EC-AFM)36,37,38,39,scansione microscopia elettrochimica a scansione di conduzioni ioniche (SICM-SECM)24,40e microscopia a celle elettrochimiche a scansione (SECCM)41,42 Il confronto tra queste tecniche è stato discusso in un documento di revisione1. L'obiettivo del presente lavoro era quello di impiegare SECM-AFM per dimostrare la mappatura elettrochimica e la misurazione su nanomateriali di ossido cupro cristallino sfaccettato e nanobolle in acqua. I nanomateriali sfaccettati sono ampiamente sintetizzati per catalizzatori di ossido metallico in applicazioni di energia pulita perché le sfaccettature con caratteristiche cristallografiche distintive hanno strutture atomiche superficiali distintive e dominano ulteriormente le loro proprietà catalitiche. Inoltre, abbiamo anche misurato e confrontato il comportamento elettrochimico presso le interfacce liquido/gas per nanobolle superficiali (NB) su substrati domicosi. Gli NB sono bolle con un diametro di <1 μm (note anche come bolle ultrafini)43,e suscitano molte proprietà intriganti44,45,compresi lunghi tempi di residenza nellesoluzioni 46,47 e alta efficienza del trasferimento di massa del gas46,48. Inoltre, il collasso degli NB crea onde d'urto e la formazione di radicali idrossilici (•OH)49,50,51,52. Abbiamo misurato la reattività elettrochimica degli NB di ossigeno nella soluzione per comprendere meglio le proprietà chimiche fondamentali degli NB.

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Protocollo

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1. Preparazione del campione

  1. Preparazione di nanoparticelle di Cu2O sfaccettate e deposizione su substrato di silicio
    1. Sciogliere 0,175 g di CuCl2-2H2O (99,9%) in 100 mL di acqua deionizzata (DI) per generare una soluzione acquosa di 10 mM CuCl2.
    2. Aggiungere 10,0 mL di NaOH da 2,0 M e 10 mL di acido ascorbico da 0,6 M dropwise nella soluzione CuCl2.
    3. Scaldare la soluzione in un pallone a fondo rotondo da 250 mL sotto agitazione costante in un bagno d'acqua a 55 °C per 3 ore.
    4. Raccogliere il precipitato risultante per centrifugazione (5.000 x g per 15 min), seguito dal lavaggio con acqua DI 3 volte e etanolo due volte per rimuovere gli ioni inorganici residui e i polimeri.
    5. Precipitato a secco nel vuoto a 60 °C per 5 h53.
    6. Utilizzare il wafer di silicio preparato come substrato per depositare le nanoparticelle cu2O come illustrato nella figura 1A utilizzando epossidico per garantire il test.
      Attenzione: Il wafer di silicio (wafer di silicio Ø3", tipo P/<111>) è stato tagliato in un unico pezzo di 38 mm x 38 mm, seguito da lavaggio con etanolo, metanolo e acqua DI per rimuovere contaminanti organici e inorganici.
    7. Depositare direttamente 10 μL di epossidico sul wafer di silicio pulito utilizzando una punta di pipetta e una piastrella con uno scivolo di vetro pulito. Dopo circa 5 minuti, far cadere separatamente 10 μL delle nanoparticelle/sospensione dell'acqua (10 mg L-1)su diversi substrati di wafer di silicio rivestiti di epossidici. Le quattro diverse macchie rosse mostrate nella figura 1B indicano la posizione potenziale delle nanoparticelle depositate.
    8. Asciugare sottovuoto il substrato a 40 °C per 6 ore.
    9. Posizionare il substrato del campione nella cella campione CE (Figura 4) da riempire con 1,8 mL di un KCl da 0,1 M contenente 10 mM Ru(NH3)6Cl3(98%).
  2. Preparazione degli NB
    1. Genera nanobolle di ossigeno per iniezione diretta di ossigeno compresso (purezza 99,999%) attraverso una membrana tubolare in ceramica (dimensione dei pori di 100 nm, WFA0.1) in acqua DI.
      NOTA: Il gas è stato iniettato continuamente sotto una pressione di 414 kPa e un flusso di 0,45 L·m-1 fino a raggiungere una distribuzione stabile delle dimensioni della bolla come riportato altrove54.
    2. Aggiungere 1,8 mL della sospensione dell'acqua degli ONN su un substrato doo nella cella campione CE e stabilizzarsi per 10 minuti.
      NOTA: Le piastre d'oro fresche da 40 mm x 40 mm (Au on Si) sono state utilizzate come substrato per immobilizzare gli NB.
    3. Decantare 0,9 mL di sospensione NB e sostituire con 0,9 mL di una soluzione Ru(NH3)da 10mM 6 Cl3 in KCl da 0,1 M.

2. Installazione di AFM-SECM

NOTA: AFM è stato utilizzato nelle misurazioni AFM-SECM presentate. Per eseguire le analisi CE, l'AFM è stato dotato di accessori bipotentiostat e SECM. Come mostrato nella figura S1, il bipotentiostat era collegato al controller AFM e sia il potenziostato che l'AFM erano collegati allo stesso computer. Gli accessori includono un mandrino SECM, un supporto sonda SECM con avvio protettivo e un modulo di rilascio della deformazione con un selettore di resistenza (è stata utilizzata una resistenza di 10 MΩ) per limitare il flusso di correntemassimo 55. Come illustrato nella figura 2, le sonde AFM-SECM hanno un raggio di punta di 25 nm e un'altezza della punta di 215 nm. Il campione fungeva da elettrodo di lavoro, che condivide lo stesso pseudo-riferimento utilizzando l'elettrodo a filo Ag (diametro 25 mm) e il controelettrodo di un filo Pt (25 mm di diametro). La sonda e il campione potrebbero essere distorti a diversi potenziali (rispetto all'elettrodo pseudo-riferimento del filo Ag) per consentire diverse reazioni redox. Nel lavoro presentato, la punta riduce [Ru(NH3)6]3+ a [Ru(NH3)6]2+ a -400 mV rispetto a un elettrodo pseudo-riferimento del filo Ag.

  1. Sostituire il mandrino campione esistente con mandrino SECM e avvitare il mandrino in posizione utilizzando due viti a cappuccio della testa della presa M3 x 6 mm e una chiave esagonale da 2,5 mm(Figura 3A).
  2. Collegare il cavo di controllo della temperatura al mandrino SECM e collegare i cavi SECM a basso rumore al blocco del connettore a molla (da colore a colore) e al blocco dello switch(Figura 3B).
    NOTA: L'interruttore deve essere mantenuto sul lato destro durante il test SECM.
  3. Installare il modulo di rilascio della deformazione sullo scanner AFM e collegarlo anche al connettore dell'elettrodo di lavoro sul blocco del connettore a molla con cavo di estensione (Figura 3C).
  4. Assemblate la cella campione CE.
    1. Inserire l'inserto sull'anello superiore (Figura 4A).
    2. Assemblate due O-ring rispettivamente sulla scanalatura inferiore e sulla scanalatura superiore dell'inserto (Figura 4B e Figura 4C).
    3. Mettere una copertura di vetro sul piano dell'anello superiore e quindi stringere di quattro viti in modo leggero e diagonale(Figura 4D).
    4. Utilizzare un filo duro affilato con un diametro di 24 mm (Figura 4E) per colpire due fori nell'O-ring attraverso due canali di parte di plastica sull'anello superiore (Figura 4F).
    5. Inserite il filo Ag e il filo Pt attraverso il foro sull'O-ring e curvete il filo Pt in un cerchio nella cella campione CE, come illustrato nella figura 4G.
    6. Per sigillare la parte superiore della cella campione CE, premere la cella campione CE assemblata verso il basso sul fondo della cella campione CE per fare in modo che l'O-ring contatti completamente la copertura di vetro(figura 4H).
    7. Posizionare la parte superiore della cella campione CE capovolta e affrontare il campione di prova (o substrato) verso il basso in modo che i perni caricati a molla (perni pogo) tocchino la superficie del campione, come illustrato nella figura 4I e nella figura 4J. Il campione di prova deve coprire l'O-ring per rendere la parte inferiore della cellula campione CE sigillata.
    8. Mettere la cella campione EC in basso e stringere diagonalmente con la vite di lunghezza destra (Figura 4K).

3. Funzionamento di AFM-SECM

  1. Inizializzazione degli strumenti AFM e bipotentiostat
    1. Fare doppio clic sulle due icone software per inizializzare il sistema AFM e l'interfaccia di controllo bipotentiostat.
  2. Caricamento della sonda SECM
    1. Preparare il pacchetto di assistenza sul campo ESD, tra cui pad antistatico, supporto per sonde protettive a scarica elettrostatica (ESD), guanti antistatici indossabili e cinturino da polso(Figura 5A). La figura 5B mostra la connessione del monitor ESD con il cinturino da polso.
      NOTA: Il monitor ESD esente da un'erezionale quando il cuscinetto rosso è collegato a terra. Il segnale acustico si fermerà quando l'utente indossa il cinturino da polso.
    2. Per evitare che lo scanner AFM si esi su liquidi, utilizzare uno stivale protettivo (Figura 6A) durante i test AFM-SECM. Mettere il supporto della sonda sul supporto della sonda protettiva ESD (Figura 6B). Utilizzare un paio di pinzette di plastica per fissare lo stivale protettivo al porta punta(Figura 6C). Quindi, allineare il piccolo taglio nello stivale protettivo alla tacca nel supporto della sonda come illustrato nella figura 6D.
    3. Aprire la scatola delle sonde AFM-SECM (Figura 7A) utilizzando una pinzetta a punta (colore verde) per afferrare la sonda da entrambi i lati delle scanalature (Figura 7B). Durante l'utilizzo della pinza del disco (colore argento) per tenere il supporto della sonda sul supporto, mettere il filo della sonda nel foro del supporto, quindi far scorrere la sonda nello slot del supporto della sonda (Figura 7C). Dopo che la sonda è all'interno dello slot, utilizzare l'estremità piatta del tweezer per spingerla dentro. Assicurarsi che la sonda sia completamente nel supporto della punta (Figura 7D).
    4. Come illustrato nella figura 8A, collegare l'intero supporto della sonda (incluso il supporto-avvio) allo scanner.
    5. Utilizzare la pinzetta a punta in teflon per afferrare il filo proprio sotto l'anello di rame e collegarlo al modulo (Figura 8B).
    6. Rimettete lo scanner al codino.
  3. Caricamento della cella campione
    1. Dopo aver assemblato il campione di prova (o substrato) nella cella campione CE, menzionata nella sezione 2.4, mettere la cella campione CE sul punto centrale del mandrino SECM e dell'elettrodo pseudo-riferimento (filo Ag) e collegare il controelettrodo (filo Pt) al blocco del connettore amolla (figura 3). La cella campione EC è attaccata magneticamente al mandrino.
  4. Preparazione del software SECM prima dell'imaging
    1. Nel software AFM-SECM selezionare SECM- PeakForce QNM per caricare l'area di lavoro (Figura S2).
    2. In Setupcaricare la sonda SECM, quindi allineare un laser sulla punta utilizzando una stazione di allineamento.
    3. Passare a Navigazione (Figura S3). Spostare lentamente lo scanner verso il basso per concentrarsi sulla superficie del campione. Regolare leggermente la posizione della cella campione CE per assicurarsi che lo scanner non tocchi la copertura in vetro della cella campione CE durante lo spostamento. Dopo aver puntato sull'esempio, fare clic su Aggiorna posizione di innesto cieco.
      Attenzione: diversi campioni hanno altezze diverse, quindi è necessario aggiornare la posizione di innestare la cieca dopo aver cambiato un campione.
    4. Fate clic su Sposta (Move) per aggiungere posizione fluido.
    5. Aggiungere ~1,8 mL della soluzione tampone nella cella campione CE, per assicurarsi che il livello della soluzione sia inferiore al coperchio del vetro. Se il livello dell'acqua è sopra la copertura di vetro, l'acqua può insinuarsi allo scanner e causare un cortocircuito elettrico e rompere lo scanner. Attendere altri 5 minuti e utilizzare una pipetta per agitare la soluzione per rimuovere le bolle.
      NOTA: La soluzione tampone (10 mM [Ru(NH3)6]3+ con elettrolita di supporto di 0,1 M KCl) deve essere costantemente conservata in frigorifero dopo la preparazione. Utilizzare una siringa con filtro (non più grande di 1 μm di dimensione dei pori) per filtrare la soluzione prima di utilizzarla.
    6. Fate clic su Sposta (Move to Blind Engage Position). La punta tornerà nella soluzione tampone. Regolare leggermente il laser per assicurarsi che il laser sia allineato sulla punta.
    7. Aprire il software CHI. Come illustrato nella figura S4, fare clic sul comando Tecnica sulla barra degli strumenti per aprire il selettore tecnico e selezionare Apri potenziale circuito - Tempo. Utilizzare l'impostazione predefinita (Tempo di esecuzione come 400 s) per la misurazione OCP ed eseguire la misurazione OCP.
      NOTA: Il potenziale mostrato nel test OCP deve essere vicino allo zero stabilmente.
    8. Fate di nuovo clic sul comando Tecnica (Technique) ed eseguite Voltammetry ciclico (CV),come illustrato nella figura S5 e nella figura S6.
      NOTA: impostare i parametri come di seguito. Se necessario, impostare "segmenti di sweep" su un numero maggiore. L'"init E/Final E" dovrebbe essere uguale al valore potenziale della misurazione OCP e "High E" e "Low E" potrebbe essere rispettivamente +0,3 V o −0,3 V di " init E/Final E". Qui usiamo 0 V come E iniziale e alto e -0,4 V come Basso e Finale E. La velocità di scansione era di 0,05 V/s e la sensibilità era di 1 e-009. Eseguire il test CV, la corrente più alta (i) misurata qui dovrebbe essere 0,3-1,2 nA per 10 mM [Ru(NH3)6]3 +.
  5. SECM Imaging
    1. Tornare al software AFM-SECM. Poiché la punta è già nel liquido, fare clic su Engage.
    2. Dopo la scansione, attivare la modalità di sollevamento (Lift by Sensor) con un'altezza di sollevamento di 100 nm e regolare l'altezza di sollevamento in base alla rugosità del campione.
    3. Nel software CHI, eseguire una cronoamperometria con parametri mostrati nella figura S7. Impostare la E iniziale come -0,4 V, la larghezza dell'impulso come 1000 secondi (che è il numero massimo accettato dal sistema) e la sensibilità lo stesso con la scansione CV.
      NOTA: La tecnica cronamperometrica è stata scelta a causa dell'assenza di tecnica i-t amperometrica nel bi-potentiostato presentato.
    4. Con il programma CHI in esecuzione, tornare al software AFM-SECM, controllare la lettura in tempo reale sullo strip chart e fare clic sul pulsante Start (Figura S8). La lettura verrà aggiornata in tempo reale. Quindi inizieranno sia l'imaging topografico che l'attuale processo di imaging. Salvare immagini nel software AFM-SECM.
  6. Controllare la curva di avvicinamento
    1. Innestare la punta sulla regione del campione o del substrato con una dimensione di scansione di 1 μm.
    2. Eseguire la Chronoamperometria come menzionato nella 3.5.3.
    3. Tornare a AFM-SECM Software e selezionare il comando Vai a rampa.
    4. Fare clic su Rampa. Una curva di avvicinamento sarebbe registrata nel software AFM-SECM.
  7. Pulizia dei consigli
    1. Utilizzo della cella campione CE come contenitore di acqua pulita. Spostare la punta all'interno e all'uscita dal liquido utilizzando funzioni di innestare alla cieca nel pannello di navigazione. Cambiare l'acqua pulita tre volte. Dopo questa pulizia per tre volte, utilizzare salviette pulite per rimuovere con cura l'acqua residua dal supporto della sonda e rimettere la sonda nella scatola della sonda.
      Attenzione: dopo l'imaging, la sonda AFM-SECM deve essere accuratamente pulita. Non utilizzare mai acqua che esce dal flacone di lavaggio per pulire la sonda in quanto la carica elettrostatica potrebbe danneggiare la sonda.

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Risultati

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Topografia e imaging attuale degli ONB da parte di AFM-SECM

Studi precedenti che hanno caratterizzato gli NB con AFM hanno riportato solo immagini topografiche per rivelare le dimensioni e la distribuzione degli NB immobilizzati su un substrato solido56,57. Gli esperimenti qui hanno rivelato informazioni morfologiche ed elettrochimiche. Le singole nanobolle di ossigeno (ONB) possono essere chiaramente identificate nell...

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Discussione

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In questo protocollo è stata descritta una tecnica AFM-SECM combinata che consente l'imaging multimodale ad alta risoluzione. Questa tecnica consente di mappare la topografia contemporaneamente alla corrente SECM raccolta o mappata su singole nanoparticelle o nanobolle. Gli esperimenti sono stati eseguiti utilizzando sonde commerciali. Queste sonde sono state progettate per fornire compatibilità chimica con una vasta gamma di ambienti elettrochimici, prestazioni elettrochimiche, stabilità meccanica e movimentazione a cic...

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Dichiarazioni

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Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Ringraziamenti

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Questo lavoro è finanziato dalla National Science Foundation (Award Number: 1756444) tramite Biological & Environmental Interfaces of Nano Materials, dall'USDA National Institute of Food and Agriculture, dal progetto AFRI [2018-07549] e dall'Accordo di Assistenza n. 83945101-0 assegnato dalla U.S. Environmental Protection Agency al New Jersey Institute of Technology. Non è stato formalmente riesaminato dall'APE. Le opinioni espresse nel presente documento sono esclusivamente quelle degli autori e non riflettono necessariamente quelle dell'Agenzia. L'EPA non approva alcun prodotto o servizio commerciale menzionato nella presente pubblicazione. Gli autori ringraziano anche il programma di ricerca e innovazione (URI) Phase-1 & Phase-2 del New Jersey Institute of Technology.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Equipment
Microsopy a forza atomicaBruker, CADimenison Icon
BipotentiostatCH Instruments, Inc.CHI 700E
Materiali
Wafer di silicioTED PELLA, Inc.16013
Piastre d'oro frescoBruker, CAmodello 119-017-307
Sonde PF-SECM-AFM Bruker, CA990-050138
Modulo di rilascio deformazione PF-SECMBruker, CA840-012-724
Supporto sonda PF-SECMBruker, CA900-050121
PF-SECM MandrinoBruker, CAPF-SECM Mandrino
PF-SECM O-ringBruker, CA598-000-106
PF-SECM vetro di copertura, SECM CellBruker, CA900-050137
EC Cell AssyBruker, CA932-017-300
ESD Field ServiceBruker, CA490-000-066
PF-SECM BootBruker, CA900-050136
Blocco connettore a mollaBruker, CA900-050524
Pinzette PFSECMBruker, cavo CA
, modulo punta SECMBruker, CA468-050171
Filo AgBruker, CA249-000-056
Filo PtBruker, CA248-000-004
Filo duro e affilatoBruker, CATT-ECM10
Membrana ceramica tubolareRefrattonWFA0.1
Chemicals
Cloruro di rame(II) diidratoACROS OrganicsAC315281000
Idrossido di sodioFisher ChemicalS318-100
Acido ascorbicoFisher ChemicalA61-25
Miscela
istantanea di loctite epossidicaCloruro di potassioFisher ChemicalP217-500
Cloruro di esaamminerutenio (III)ACROS OrganicsAC363342500

Riferimenti

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