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Articolo metodologico

Tracciamento di particelle 3D per l'analisi non invasiva in vivo della dinamica dei microtubuli sinaptici nei dendriti e nelle giunzioni neuromuscolari di Drosophila

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DOI:

10.3791/61159

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12 maggio 2020

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* These authors contributed equally

In questo articolo

Sommario

Questo studio presenta una strategia di imaging neuronale intravitale non invasiva combinata con una nuova strategia software per ottenere un tracciamento e un'analisi automatizzati e imparziali delle dinamiche plus-end dei microtubuli (MT) in vivo nei dendriti sensoriali e nelle giunzioni neuromuscolari di Drosophila.

Abstract

I microtubuli (MT) svolgono un ruolo fondamentale nello sviluppo neuronale, ma rimangono molte domande sui meccanismi molecolari della loro regolazione e funzione. Inoltre, nonostante i progressi nella comprensione delle MT postsinaptiche, si sa molto meno sui contributi delle MT presinaptiche alla morfogenesi neuronale. In particolare, gli studi sulle dinamiche MT in vivo nei dendriti sensoriali di Drosophila hanno prodotto informazioni significative sul comportamento a livello di polimero. Tuttavia, le sfide tecniche e analitiche associate all'imaging dal vivo della giunzione neuromuscolare del moscerino (NMJ) hanno limitato studi comparabili sulla dinamica della MT presinaptica. Inoltre, mentre esistono molte strategie software altamente efficaci per l'analisi automatizzata delle dinamiche MT in vitro ed ex vivo, i dati in vivo spesso richiedono un input significativo da parte dell'operatore o un'analisi completamente manuale a causa del rapporto segnale/rumore intrinsecamente inferiore nelle immagini e della complessa morfologia cellulare.  Per risolvere questo problema, questo studio ha ottimizzato una nuova piattaforma software per il rilevamento automatizzato e imparziale di particelle in vivo. L'analisi multiparametrica di immagini confocali time-lapse dal vivo di MT marcate con EB1-GFP è stata eseguita sia nei dendriti che nell'NMJ di larve di Drosophila e ha riscontrato notevoli differenze nei comportamenti MT. La dinamica della MT è stata inoltre analizzata in seguito al knockdown della proteina MT-associated (MAP) dTACC, un regolatore chiave dello sviluppo delle sinapsi di Drosophila, e ha identificato cambiamenti statisticamente significativi nella dinamica della MT rispetto al tipo selvatico. Questi risultati dimostrano che questa nuova strategia per l'analisi multiparametrica automatizzata delle dinamiche MT pre e postsinaptiche a livello di polimero riduce significativamente i criteri human-in-the-loop. Lo studio mostra inoltre l'utilità di questo metodo nel rilevare comportamenti distinti della MT dopo dTACC-knockdown, indicando una possibile applicazione futura per gli screening funzionali dei fattori che regolano la dinamica della MT in vivo. Le future applicazioni di questo metodo potrebbero anche concentrarsi sul chiarimento dei comportamenti MT specifici del tipo cellulare e/o del compartimento e sull'imaging correlativo multicolore di EB1-GFP con altri marcatori cellulari e subcellulari di interesse.

Introduzione

Le cellule si organizzano per formare strutture funzionali attraverso il coordinamento dei cambiamenti intra e intercellulari attraverso la morfogenesi. Un notevole esempio di morfogenesi è lo sviluppo della struttura neuronale altamente specializzata. I neuroni mostrano una notevole polarizzazione, in cui estendono due tipi di processi strutturalmente e funzionalmente distinti, i dendriti e gli assoni1, che possono raggiungere lunghezze immense. La complessità dello sviluppo neuronale deriva non solo dalle dimensioni dei dendriti e degli assoni, ma anche dalla difficoltà di formare le loro geometrie intricate<....

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Protocollo

1. Generazione di esemplari di Drosophila

  1. Selezionare un marcatore MT plus-end adatto. Questo studio ha utilizzato EB1 marcato con GFP, un marcatore di estremità positiva ben caratterizzato con un segnale forte e chiaro11,12. Le alternative includono altri +TIP come EB310,13, CLASP/Orbit53 e CLIP-17054.
  2. Ottenere o generare mosche con il marcatore MT sotto il controllo di un promotore UAS (ad esempio, UAS-EB1-GFP).
  3. Scegliere il driv....

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Risultati

I moscerini sono stati allevati da stock stabili che esprimono costitutivamente il transgene UAS-EB1-GFP sia a livello panneuronale (elaV-Gal4; UAS-EB1-GFP)58,59 o nei neuroni sensoriali (221-Gal4; UAS-EB1-GFP)60,61. EB1 è stato scelto per questo studio perché si localizza specificamente alle estremità in crescita e si dissocia immediatamente dopo la pausa e il re.......

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Discussione

Questo articolo discute un protocollo per eseguire l'imaging intravitale non invasivo della dinamica MT nei dendriti e all'NMJ durante lo sviluppo. L'input umano è richiesto durante le fasi sperimentali, ad esempio nella selezione degli animali da riprodurre, e può introdurre distorsioni nel processo di raccolta dei dati che non possono essere ragionevolmente rimosse. Pertanto, un obiettivo chiave del protocollo è quello di ridurre al minimo le distorsioni, ove possibile, eseguendo anali.......

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Dichiarazioni

Gli autori Hoyin Lai, Michael Jones, Hideki Sasaki, Luciano A.G. Lucas, Sam Alworth (precedentemente) e James Shih-Jong Lee sono dipendenti di DRVision Technologies LLC, che produce il software utilizzato in questo protocollo.

Ringraziamenti

Ringraziamo i nostri colleghi del laboratorio Van Vactor e di DRVision, oltre ai dottori Max Heiman, Pascal Kaeser, David Pellman e Thomas Schwarz per l'utile discussione. Ringraziamo la dottoressa Melissa Rolls per aver generosamente fornito l'elaV-Gal4; UAS-EB1-GFP; UAS-DCR2 e 221-Gal4; Azioni UAS-EB1-GFP utilizzate in questo studio. Ringraziamo le dottoresse Jennifer Waters e Anna Jost del Nikon Imaging Center di Harvard per l'esperienza nel microscopio ottico. Questo lavoro è finanziato dal National Institutes of Health (F31 NS101756-03 a V.T.C., SBIR 1R43MH100780-01D a J.S.L.).

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Provetta per microcentrifuga da 1,5 mLEppendorf21008-959Preparazione del campione
1000 & micro; L TipOne puntali per pipetteUSA Scientific1111-2721Preparazione del campione
200 &; L TipOne puntali per pipetteUSA Scientific1120-8710Preparazione del campione
221-Gal4 moscheBloomington Drosophila Stock Center (US)26259Drosophila genetica/incroci
60x Obiettivo LenteNikonPlan Apo 60x OlioAcquisizione di immagini
Piastra a 6 pozzettiBD Falcon353224Preparazione del campione
AgarMoorAgar41084Cibo per Drosophila
AiviaDRVision LLCOttimizzato nell'ambito di questo studio
Cloroformio (stabilizzato con amilene)Sigma-AldrichC2432Preparazione del campione
Pistola ad aria compressa CO2 (per la selezione di mosche per incroci)Genesee54-104Genetica di Drosophila/incroci
Bubbler CO2 (per la selezione di mosche per incroci)Genesee59-180Genetica/incroci di Drosophila
Telecamera CCD raffreddataHamamatsuORCA-R2Acquisizione immagini
Farina di maisGenesee62-101Cibo per Drosophila
AcquaCibo per Drosophila
Nastro biadesivoScotchPreparazione del campione
Fiale di DrosophilaGenesee32-109Cibo per Drosophila
Tappi per drosophila (tappi in schiuma per fiale)Genesee59-200Drosophila cibo
Dumont #5 Biologie Inox ForcepsFine Science Tools11252-20Preparazione del campione
elaV-Gal4; UAS-EB1-GFP; UAS-Dcr2 moscheDono di Melissa Rolls (Penn State University)N/ADrosophila genetica/incroci
Etanolo (95%)VWR75811-022Drosophila food
Illuminatore/sorgente luminosa in fibra ottica per stereomicroscopioNikonNI-150Preparazione del campione
Flypad (per la selezione di mosche per incroci)Genesee59-172Drosophila genetica/incroci
Forma Camera Ambientale/IncubatoreThermoFisher3940Drosophila genetica/croci
Olio di alocarburi 700Sigma-AldrichH8898Preparazione del campione
Olio da immersioneNikonMXA22168Acquisizione di immagini
Kimwipe Delicate WipesFisher Scientific34120Preparazione del campione
Modulo di fusione laser Spectral Ricerca applicataLMM-5Acquisizione di immagini
Sorgente luminosa per confocaleLumencorSOLA 54-10021Acquisizione di immagini
Microscopia MetaMorph Automazione e Software di analisi delle immaginiDispositivi molecolari Acquisizionedelle immagini
Occhiali Micro Cover, quadrati, n. 1 1/2 (#1.5)VWR48366-205Preparazione dei campioni
Microscopio invertito motorizzato con sistema di messa a fuoco perfettaNikonTI-ND6-PFS-SAcquisizione delle immagini
Tavolino e otturatori motorizzatiAcquisizione delleimmagini
precedente al Proscan IIIForbici multiusoScotchMMM1428Preparazione del campione
Smalto per unghieSally Hansen784179032016 074170382839Preparazione del campione
Filtro otticoChromaET480/40mAcquisizione immagini
P1000 PipetmanGilsonF123602Preparazione del campione
P200 PipetmanGilson F123601Preparazione del campione
PBS (10X) ph 7.4ThermoFisher70011044Preparazione del campione
Acido propionicoFisherA258-500Drosophila food
Unità scanner confocale a disco rotanteYokagawaCSU-X1Acquisizione immagini
StereomicroscopioNikonSMZ800NPreparazione del campione
Zucchero (Saccarosio)Genesee62-112Drosophila food
Superfrost SlideVWR48311-600Preparazione del campione
TegoseptGenesee20-258Drosophila
food UAS-dtacc-RNAi moscheVienna Drosophila Resource Center (Vienna, Austria)VDRC-101439Drosophila genetics/incroci
Vaselina vaselinaWB MasonDVOCB311003Preparazione
del campioneWinsor & Newton Brush Regency Gold 520, Misura 0Graffe5012000Drosophila genetica/incroci
LievitoVWRTorula Lievito IC90308580Drosophila food
Yokogawa dicroico beamsplitterSemrockDi01-T405/488/568/647-13x15x0.5Acquisizione immagini
distillata

Riferimenti

  1. Rolls, M. M. Neuronal polarity in Drosophila: Sorting out axons and dendrites. Developmental Neurobiology. 71 (6), 419-429 (2011).
  2. Jan, Y. N., Jan, L. Y. Branching out: Mechanisms of dendritic arborization. Nature Reviews Neuroscience. 11 ....

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Ristampe e permessi

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