Method Article

Screening CRISPR/Cas9 in vivo per valutare contemporaneamente la funzione genica nella pelle del topo e nella cavità orale

DOI:

10.3791/61693

November 2nd, 2020

In This Article

Summary

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Qui descriviamo una metodologia di screening CRISPR/Cas9 in vivo rapida e diretta utilizzando iniezioni lentivirali embrionali guidate da ultrasuoni in utero per valutare contemporaneamente le funzioni di diversi geni nella pelle e nella cavità orale dei topi immunocompetenti.

Abstract

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I modelli di topo geneticamente modificati (GEMM) sono stati fondamentali per valutare la funzione genica, modellare le malattie umane e servire come modello preclinico per valutare le vie terapeutiche. Tuttavia, la loro natura ad alta intensità di tempo, manodopera e costi limita la loro utilità per l'analisi sistematica della funzione genica. I recenti progressi nelle tecnologie di editing del genoma superano tali limitazioni e consentono la rapida generazione di specifiche perturbazioni geniche direttamente all'interno di specifici organi del topo in modo multiplexato e rapido. Qui, descriviamo un metodo basato su CRISPR / Cas9 (Clustered Regularly Interspaced Short Palindromic Repeats) per generare migliaia di cloni gene knock-out all'interno dell'epitelio della pelle e della cavità orale dei topi e fornire un protocollo che dettaglia i passaggi necessari per eseguire uno schermo CRISPR in vivo diretto per i geni   soppressori del tumore. Questo approccio può essere applicato ad altri organi o ad altre tecnologie CRISPR/Cas9 come l'attivazione CRISPR o l'inattivazione CRISPR per studiare la funzione biologica dei geni durante l'omeostasi tissutale o in vari contesti di malattia.

Introduction

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Una delle sfide per la ricerca sul cancro nell'era post-genomica è estrarre la grande quantità di dati genomici per le mutazioni geniche causali e identificare i nodi nella rete genica che possono essere mirati terapeuticamente. Mentre le analisi bioinformatiche hanno contribuito immensamente a raggiungere questi obiettivi, stabilire modelli efficienti in vitro e in vivo è un prerequisito per decifrare la complessità dei sistemi biologici e degli stati delle malattie e per consentire lo sviluppo di farmaci. Mentre i modelli convenzionali di topi transgenici sono stati ampiamente utilizzati per studi di genetica del cancro in vivo, la loro natura ad alta intensità di c....

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Protocol

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Questo protocollo è stato approvato ed eseguito in conformità con la IACUC dell'Università di Toronto.

1. Progettazione e clonazione di librerie CRISPR in pool

  1. Seleziona 4-5 sgRNA mirati ai geni del mouse di interesse da risorse come il progettista di sgRNA del Broad Institute (https://portals.broadinstitute.org/gpp/public/analysis-tools/sgrna-design) o il server CHOPCHOP (https://chopchop.cbu.uib.no). Selezionare un numero uguale di sgRNA non mirati, ad esempio Sanjana e altri9, per generare una libreria di gRNA di controlli non mirati di dimensioni uguali.
  2. Durante la costruzione delle librerie d....

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Results

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La figura 1A mostra la progettazione degli oligonucleotidi per il multiplexing di diverse librerie CRISPR personalizzate in modo conveniente in un singolo chip oligo da 12k o 92k. Una volta selezionati gli sgRNA (codificati a colori blu), gli oligonucleotidi sono progettati con siti di restrizione (BsmBI di colore arancione) e coppie di primer PCR specifiche della libreria (codificate a colori verdi). Diverse librerie possono essere progettate utilizzando una combinazione unica di coppie di .......

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Discussion

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L'editing del genoma CRISPR/Cas9 è stato ampiamente utilizzato in studi in vitro e in vivo per studiare le funzioni geniche e i processi cellulari. La maggior parte degli studi in vivo utilizza cellule modificate dal gene CRISPR/Cas9 innestate in un modello animale (allografto o xenograft). Sebbene questo sia un potente strumento per studiare la genetica del cancro e le funzioni cellulari, manca ancora del microambiente dei tessuti nativi e potrebbe provocare ferite e / o risposte immunitarie.

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Disclosures

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Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Acknowledgements

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Questo lavoro è stato sostenuto da una sovvenzione di progetto del Canadian Institute of Health Research (CIHR 365252), della Krembil Foundation e dell'Ontario Research Fund Research Excellence Round 8 (RE08-065). Sampath Kumar Loganathan è il destinatario di una borsa di studio della Canadian Cancer Society (BC-F-16#31919).

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Filtro da 0,45 micronSigmaS2HVU02RE
chip oligo da 12k o 92kCustomarray Inc. (Genscript)
Piastre per colture cellulari da 15 cmCorning
293FTInvitrogenR70007
293NTSystems BiosciencesLV900A-1
Fosfatasi alcalinaNEBM0290L
AmplicillinaFisher ScientificBP1760-25
ATPNEB9804S
BsmBINEBR0580L
Sutura intestinale cromicaCovidien
Sequenziamento profondo (Next-Seq o Hi-Seq)Kit
Zymo ResearchD4008
Kit per l'estrazione del DNA di sangue e tessuti DNAesyQiagen69506
Celle elettrocompetenti EnduraLucigen60242-1
Capillari in vetroDrummond3-000-203-G/X
HEK293T celleATCCCRL-3216
Centrifuga ad alta velocità BeckmanCoulterMLS-50
LB AgarWisent Technologies800-011-LG
Estrattore per micropipetteSutter InstrumentP97
Olio mineraleSigmaM5904
Kit plasmidi Mini-prepFrogga BioPDH300
Sistema di anestesia dell'ossigeno del topoVisual Sonics
Nanoject II micromanipolatoreDrummond
NEBuffer 3.1 ( Tampone per BsmBI)NEBR0580L
Affilatore per aghiSutter InstrumentBV-10
Kit di puliziaOligo Zymo researchD4060
PAGE primer per sequenziamento illumina purificatoIDT DNA
PEI (polietilenimmina)Sigma408727-100ML
Argillada modellare Permoplast
Petridish con apertura centraleVisual Sonics
pMD2.GAddgene12259
psPAX2Addgene12260
Q5 Polimerasi 2x Master mixNEBM0494L
Qubit Quantificazione fluorimetricaInvitrogenQ33327
Tappo semicircolare in siliconeCorning
Membrana in siliconeVisual Sonics
T4 DNA ligasiNEBM0202L
Provette per ultracentrifugaBeckman Coulter344058
Ecografo Vevo2000Visual Sonics
di pulizia del DNA Illumina

References

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  1. Beronja, S., Fuchs, E. RNAi-mediated gene function analysis in skin. Methods in Molecular Biology. 961, 351-361 (2013).
  2. Beronja, S., Livshits, G., Williams, S., Fuchs, E. Rapid functional dissection of genetic networks via tissue-specific transduct....

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