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Articolo metodologico

Preparazione di fette cerebrali acute dal polo dorsale dell'ippocampo da roditori adulti

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DOI:

10.3791/61699

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10 settembre 2020

In questo articolo

Sommario

Lo scopo di questo protocollo è quello di descrivere un metodo per produrre fette dell'ippocampo dorsale per l'esame elettrofisiologico. Questa procedura impiega la perfusione con ACSF raffreddato prima della preparazione della fetta con un angolo di taglio vicino alla coronale che consente la conservazione dei neuroni principali sani.

Abstract

Le registrazioni di patch-clamp su cellule intere da fette di cervello di roditori acuti sono un pilastro della moderna ricerca neurofisiologica, consentendo una misurazione precisa delle proprietà cellulari e sinaptiche. Ciononostante, oltre all'elettrofisiologia a fette, vi è una sempre maggiore necessità di eseguire analisi correlate tra diverse modalità sperimentali, ad esempio: immunoistochimica, biologia molecolare, imaging in vivo o registrazione elettrofisiologica; per rispondere a domande sempre più complesse sulla funzione cerebrale. Tuttavia, trarre conclusioni significative da questi vari approcci sperimentali non è semplice, poiché anche all'interno di strutture cerebrali relativamente ben descritte, esiste un alto grado di variazione sub-regionale della funzione cellulare. In nessun altro luogo questo è meglio esemplificato che nel CA1 dell'ippocampo, che ha proprietà dorso-ventrali ben definite, basate su proprietà cellulari e molecolari. Tuttavia, molti studi pubblicati esaminano i modelli di espressione proteica o l'attività in vivo correlata comportamentale nell'estensione dorsale dell'ippocampo; e spiegare i risultati meccanicisticamente con l'elettrofisiologia cellulare dalla regione ventro-mediale. Ciò è ulteriormente confuso dal fatto che molti esperimenti elettrofisiologici di taglio acuto vengono eseguiti in animali giovani, mentre altre modalità sperimentali vengono eseguite in animali più maturi. Per affrontare questi problemi, questo metodo incorpora la perfusione transcardica di roditori maturi (>60 giorni) con liquido cerebrospinale artificiale, seguita dalla preparazione di fette coronali modificate, compreso il polo settale dell'ippocampo dorsale, per registrare dalle cellule piramidali CA1. Questo processo porta alla generazione di fette acute sane dell'ippocampo dorsale, consentendo l'interrogazione elettrofisiologica cellulare basata su fette abbinata ad altre misure.

Introduzione

L'ippocampo è probabilmente la struttura più studiata nel cervello dei mammiferi, a causa delle sue dimensioni relativamente grandi e della struttura laminare prominente. L'ippocampo è stato implicato in una serie di processi comportamentali: navigazione spaziale, memoria contestuale e formazione di episodi. Ciò è, in parte, dovuto alla relativa facilità di accesso alle porzioni dorsali dell'ippocampo nei roditori per l'analisi in vivo . Infatti, le principali celle di uscita sono in genere a meno di 2 mm dalla superficie del pial.

Nei roditori, l'ippocampo è una struttura relativamente grande, for....

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Protocollo

Tutti gli animali sono stati generati e mantenuti secondo le linee guida del Ministero dell'Interno e delle Istituzioni (HO# P135148E). Tutti i ratti sono stati mantenuti su un ciclo luce/buio di 12 ore e hanno avuto accesso ad libitum a cibo e acqua.

1. Perfusione transcardica di ACSF refrigerato

  1. Prima di tutti gli esperimenti, mettere ~200 mL di saccarosio-ACSF (Tabella 1) nel congelatore a -20 °C (fino a semi-congelamento, per affettare) e altri ~100-200 mL di saccarosio-ACSF filtrato su ghiaccio (per perfusione), gorgogliando con carbogeno (95% O2/5% CO

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Risultati

Il protocollo sopra descritto consente la preparazione di fette vitali dal polo settale dell'ippocampo dorsale nei ratti maturi. Un fattore chiave in questo protocollo è la perfusione di saccarosio-ACSF refrigerato, prima della preparazione della fetta, che si traduce in PC CA1 sani prossimali alla superficie della fetta. La qualità della fetta prodotta viene valutata visivamente in ottica IR-DIC e le cellule sane identificate come dotate di grandi corpi cellulari di forma ovoidale si trovano in tutta l'estensione dello .......

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Discussione

Qui, viene descritto un protocollo per produrre fette di cervello di alta qualità dall'estensione dorsale del CA1 dell'ippocampo, consentendo registrazioni da più neuroni vitali all'interno di questa regione. L'approccio combinatorio della registrazione di intere cellule da fette quasi coronali seguita dalla visualizzazione neuronale è fondamentale per la conferma della vitalità e dell'identità cellulare.

Questo protocollo produce in modo affidabile sezioni va.......

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Dichiarazioni

L'autore dichiara di non avere interessi finanziari concorrenti.

Ringraziamenti

L'autore desidera ringraziare il Prof. David JA Wyllie, la Dr. Emma Perkins, Laura Simoes de Oliveira e il Prof. Peter C Kind per gli utili commenti sull'ottimizzazione del manoscritto e del protocollo, e The Simons Initiative for the Developing Brain per aver fornito i costi di pubblicazione.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Software di acquisizioneMolecular DevicespClamp 10
Ratti adultiVarin/aQualsiasi ceppo di ratto adulto (60 giorni e oltre)
AmplificatoreMolecular DevicesAxopatch 700B
Software di analisiFreewareStimfithttps://github.com/neurodroid/stimfit
Forbici osseeFST16152-12Stile Littauer
Apparecchio Harvard invetro capillare30-0060Pipette in vetro borosilicato con filamento diametro esterno 1,5 mm, diametro interno 0,86 mm.
CarbogenBOCVari95% O2/5% CO2
CCD cameraScientificaSciCamProhttps://www.scientifica.uk.com/products/
Chemicals/ReagentsSigma AldrichVariousTutti i reagenti di laboratorio acquistati da Sigma Aldrich.
Cianoacrilato (ad es. RS Pro 3)Componenti RS918-6872Evitare formulazioni di cianoacrilato a base di gel
Digitalizzatore DispositivimolecolariDigidata 1550B
Perni/aghi di dissezioneVariVariAghi da 16 gauge (sopra)
Sistema di elettrofisiologiaScientificaSliceScopehttps://www.scientifica.uk.com/products/ scientifica-slicescope
Forbici per iride finiFST14568-12Con punte in carburo di tungsteno
Piastra di Petri in vetroFisher Scientific12911408
Aghi ipodermiciBD HealthcareVaricalibro 16, 18 e 22
Isofluorano 100% P/P (i.e.IsoFlo)Zoetis50019100
Forbici tipo MayoFST14110-17Punte smussate
MicromanipolatoriScientificaMicrostarhttps://www.scientifica.uk.com/products/scientifica-microstar-micromanipulator
PaintbrushArt storen/aUn pennello a setole fini, acquistato da un negozio d'arte locale.
Pipetta PasteurFisher Scientific11546963Una pipetta Pasteur in vetro, ma tagliata in modo che l'estremità smussata venga utilizzata per trasferire la pipetta.
Pompa peristalticaWatson Marlow12466260Pompa peristaltica a canale singolo
Estrattore di pipetteSutter InstrumentsP-97Altri modelli e metodi di produzione di pipette funzionerebbero altrettanto bene.
Siringhe di plastica (1, 2, 5 mL)BD HealthcareVari
strumenti per ossa RongeurFST16021-14
Camera di tenuta per fetteFatto in casa
Peso fetta/arpaApparecchio HarvardSHD-22L/15Le alternative sarebbero adatte.
Pentobarbital di sodio (cioè Pentoject)Animalcare Ltd10347/4014200 mg/mL; altre formulazioni di pentobarbital sarebbero adatte
SpatolaBochem3213Disponibile da Fisher Scientific
Filtri per siringheFisher Scientific 10482012Filtri per siringhe di marca Corning, 0,22 e micro; m diametro dei pori.
VibtratomeLeica1491200S001modello VT1200S con
bagnomariaFisher Scientific 15167015bagnomaria da 5 litri, ad esempio: Grant Instruments™ JBA5 scientifica-scicam-pro
Vibrocheck

Riferimenti

  1. Amaral, D. G., Witter, M. P. The three-dimensional organization of the hippocampal formation: a review of anatomical data. Neuroscience. 31 (3), 571-591 (1989).
  2. Moser, M. B., Moser, E. I. Functional differentiation in the hippocampus. Hippocampus. 8....

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