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Articolo metodologico

Coltura tridimensionale di adipociti come modello per studiare il rimodellamento del tessuto adiposo bianco indotto dalla cachessia

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DOI:

10.3791/61853

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18 gennaio 2021

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In questo articolo

Sommario

Questo protocollo descrive un sistema di coltura di stampa magnetica tridimensionale (3D) che consente la dissezione del rimodellamento del tessuto adiposo bianco (WAT) indotto da un mezzo condizionato da cellule tumorali. L'utilizzo di un sistema di coltura 3D di adipociti UCP1+ che esprimono una proteina fluorescente verde (GFP) consente lo studio degli adipociti beige che contribuiscono al rimodellamento del tessuto adiposo.

Abstract

La cachessia tumorale (CC) si presenta come una sindrome con molteplici manifestazioni, che causa un marcato squilibrio metabolico multiorgano. Recentemente, è stato proposto che il deperimento cachettico sia stimolato da diversi mediatori infiammatori, che possono interrompere la fisiologia integrativa dei tessuti adiposi e di altri tessuti come il cervello e i muscoli. In questo scenario, il tumore può sopravvivere a spese dell'ospite. In recenti ricerche cliniche, l'intensità dell'esaurimento dei diversi depositi di grasso è stata correlata negativamente con l'esito di sopravvivenza del paziente. Gli studi hanno anche dimostrato che vari disturbi metabolici possono alterare il rimodellamento del tessuto adiposo bianco (WAT), specialmente nelle prime fasi di sviluppo della cachessia. La disfunzione WAT derivante dal rimodellamento tissutale contribuisce alla cachessia complessiva, con le principali modificazioni della WAT che consistono in cambiamenti morfo-funzionali, aumento della lipolisi degli adipociti, accumulo di cellule immunitarie, riduzione dell'adipogenesi, cambiamenti nella popolazione di cellule progenitrici e aumento di "nicchie" contenenti cellule beige/brite.

Per studiare i vari aspetti del rimodellamento WAT indotto dalla cachessia, in particolare i cambiamenti delle cellule progenitrici e il rimodellamento del beige, la coltura bidimensionale (2D) è stata la prima opzione per gli studi in vitro. Tuttavia, questo approccio non riassume adeguatamente la complessità del WAT. Saggi migliorati per la ricostruzione di AT funzionale ex vivo aiutano la comprensione delle interazioni fisiologiche tra le distinte popolazioni cellulari. Questo protocollo descrive un efficiente sistema di coltura tissutale con stampa tridimensionale (3D) basato su nanoparticelle magnetiche. Il protocollo è ottimizzato per lo studio del rimodellamento WAT indotto da fattori indotti dalla cachessia (CIF). I risultati mostrano che una coltura 3D è uno strumento appropriato per studiare la modellazione WAT ex vivo e può essere utile per gli screening funzionali per identificare molecole bioattive per applicazioni di singole popolazioni di cellule adipose e aiutare la scoperta della terapia anticachettica cellulare basata su WAT.

Introduzione

Gli organismi viventi sono composti da cellule in microambienti 3D con interazione cellula-cellula e cellula-matrice ed elaborate dinamiche di trasporto di nutrienti e cellule 1,2. Tuttavia, la maggior parte delle conoscenze fondamentali acquisite in biologia cellulare sono state generate utilizzando la coltura cellulare monostrato (2D). Sebbene la coltura 2D possa rispondere ad alcune delle domande meccanicistiche, questo approccio non riassume adeguatamente l'ambiente naturale in cui risiedono le cellule e può essere incompatibile con la previsione di una risposta farmacolog....

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Protocollo

1. Incubazione di cellule 2D con nanoparticelle magnetiche

  1. Coltiva colture 2D aderenti a ~ 70% di confluenza utilizzando le procedure standard di coltura cellulare.
  2. Preparare l'assemblaggio di nanoparticelle magnetiche. Toglietelo dal frigorifero e lasciatelo scaldare a temperatura ambiente (20-25 °C) per circa 15 min1.
  3. Terreno misto: aggiungere le nanoparticelle magnetiche direttamente a 12 mL di terreno in piastre di coltura cellulare da 100 mm. Sospendere e risospendere il mezzo alcune volte per ottenere una distribuzione omogenea delle nanoparticelle.
    NOTA: Il mezzo appari....

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Risultati

Adiposferoidi da coltura 3D di cellule della frazione vascolare stromale (SVF)
Sia le colture 3D che quelle 2D confluenti sono state impostate con lo stesso numero di cellule SVF provenienti dalla stessa preparazione WAT inguinale di topo (Figura 1A, Figura 1B) e sottoposte allo stesso protocollo sperimentale per confrontare il marcatore di espressione genica. Sferoidi stimolati con mezzo di induzione espanso .......

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Discussione

Questo protocollo mette a punto un sistema di coltura cellulare 3D per studiare la differenziazione degli adipociti in adiposferoidi derivati da cellule SVF primarie da WAT. Rispetto alla tradizionale coltura aderente 2D, questo sistema 3D facilita il rimodellamento AT, che assomiglia molto alle condizioni in vivo. Negli ultimi anni, gli studi hanno dimostrato che la coltura di cellule in 3D produce una morfologia cellulare e una segnalazione distinte rispetto a un sistema di coltura 2D<.......

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Dichiarazioni

Gli autori dichiarano di non avere interessi finanziari concorrenti.

Ringraziamenti

Questo lavoro è stato supportato da sovvenzioni del NIH DK117161, DK117163 a SRF e P30-DK-046200 a Adipose Biology and Nutrient Metabolism Core del Boston Nutrition and Obesity Research Center, e da São Paulo Research Foundation (FAPESP) Grants: 2018/20905-1 e CNPq 311319/2018-1 a MLBJr.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
3-Isobutil-1-metilxantinaSigma-Aldrich (St. Louis, MO, USA)I-5879Kit
bioprinting a 96 pozzetti per colture cellulari, Greiner nero(Monroe, NC, USA)655841Coltura cellulare
Alexa Fluor 647 AffiniPure F(ab')2 Frammento di asino IgG anti-coniglio (H+L)Jackson ImmunoResearch711-606-152Colorazione in immunofluorescenza, secondaria, 1:400 in TBS con 0,1% DI MICROPIASTRE PER COLTURE CELLULARI Tween-20
, 96 POZZETTI, PS, FONDO F E MICRO; TRASPARENTE, NERO, CELLSTAR, SUPERFICIE REPELLENTE PER CELLULE, COPERCHIO, STERILE, 8 PZ./BAGGreiner (Monroe, NC, USA)655976Coltura cellulare
DesametasoneSigma-Aldrich (St. Louis, MO, USA)D-1756Coltura cellulare
DMEMCorning (Manassas, VA, USA)10-017-CVColtura cellulare
Siero fetale bovino (Tova)Gemini Bio (West Sacramento, CA)100-500Coltura cellulare
IndometacinaSigma-Aldrich (St. Louis, MO, USA)I-7378Coltura cellulare
InsulinaSigma-Aldrich (St. Louis, MO, USA)I0516Coltura cellulare
LL/2 (LLC1) (ATCC CRL-1642)Collezione di colture di tipo americano (Manassas, VA, USA)CRL-1642Linea cellulare di carcinoma polmonare di Lewis
NanoShuttle-PLGreiner (Monroe, NC, USA)657843Coltura cellulare
Reagente NucBlue Fixed Cell ReadyProbes (DAPI)ThermoFisher (Waltham, MA, USA)R37606Colorazione in immunofluorescenza, seguendo le istruzioni del produttore
Pen strepCorning (Manassas, VA, USA)30-002-CIColtura cellulare
Perilipina-1 (D1D8) XP  Tecnologia di segnalazione cellulare mAb di coniglio(Danvers, MA, USA)9349Colorazione in immunofluorescenza, primaria, 1:1000 in TBS con 0,1% Tween-20
RosiglitazoneSigma-Aldrich (St. Louis, MO, USA)R-2408Coltura cellulare
Tripsina-EDTA, 0,05%Corning (Manassas, VA, USA)25-052-CIColtura cellulare
Primer per PCR a trascrizione inversa
PrimerForwardReverse
AdipoqGTTCCCAATGTACCCATTCGCTGTTGCAGTAGAACTTGCCAG
Col4a1TCCAAGGGGGAAGTGGGTTTACCCTTGCTCGCTTTGACT
em>Ciclofilina aATGGCACTGGCGGCAGGTCCTTGCCATTCCTGGACCCAAA
Fabp4TGGTGACAAGCTGGTGGTGGAATGTCCAGGCCTTTTCTTTGGCTCA
em>Fn1GCTTCCCCAACTGGTTACCCTGGGTTGGTGATGAAGGGGGTGTGTGTGTGTGTGTGTGTGTGTGTGTGT<
em>Pgc1aGAAAACAGGAACAGCAGCAGAGGGGGTCAGAGGAAGAGATAAAG
em>Ucp1TCCTAGGGACCATCACCACCCAGCCGGCTGAGATCTTGTTTCC
strong>Genotyping del topo
Primer nameDescriptionSequenza
Cre FGenerico Cre forwardGCG GTC TGG CAG TAA AAA CTA TC
Cre RCre genericoGTG AAA CAG CAT TGC TGT CAC TT
oIMR7318mT/mG forwardCTC TGC TGC CTC CTG GCT TCT
oIMR7319mT/mG wild type reverseCGA GGA GGA TCA CAA GCA ATA
oIMR7320mT/mG mutantereverse TCA ATG GGC GGG GGT CGT T
WH336UCP1 mutante avantiCAA TCT GGG CTT AAC GGG TCC TC
WH337UCP1 mutante inversoGTT GCA TCG ACC GGT TAA TGC AG
WH338UCP1 wild type forwardGGT CAG CCT AAT TAG CTC TGT
WH339UCP1 wild typereverse GAT CTC CAG CTC CTC CTC TGT C C
di <<<< reverse

Riferimenti

  1. Haisler, W. L., et al. Three-dimensional cell culturing by magnetic levitation. Nature Protocol. 8 (10), 1940-1949 (2013).
  2. Pampaloni, F., Reynaud, E. G., Stelzer, E. H. The third dimension bridges the gap between cell culture and live tissue. Na....

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Ristampe e permessi

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