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Articolo metodologico

Un modello proinflammatorio di coltura degenerativa degli organi per simulare la malattia del disco intervertebrale in fase iniziale.

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DOI:

10.3791/62100

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14 febbraio 2021

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1AO Research Institute Davos, Davos, Switzerland, 2Department of Orthopedics and Trauma Surgery, Medical Centre-Albert-Ludwigs-University of Freiburg, Faculty of Medicine, Albert-Ludwigs-University of Freiburg, Freiburg, Germany

* These authors contributed equally

In questo articolo

Sommario

Questo protocollo presenta un nuovo modello sperimentale di coltura proinfiammatoria e degenerativa di organi bovini per simulare la degenerazione del disco intervertebrale in fase iniziale.

Abstract

La degenerazione del disco intervertebrale sintomatico (IVD) (IDD) è un importante fardello socioeconomico ed è caratterizzata da infiammazione e degradazione dei tessuti. A causa della mancanza di terapie causali, c'è un'urgente necessità di modelli sperimentali innovativi di coltura degli organi per studiare i meccanismi coinvolti nella progressione della malattia, trovare obiettivi terapeutici e ridurre la necessità di modelli animali. Qui presentiamo un nuovo protocollo di modello tridimensionale di coltura di organi che imita il microambiente proinfiammatorio e catabolico, presente durante l'IDD.

Inizialmente, gli IVD caudali bovini venivano sezionati, puliti e coltivati nel mezzo di coltura tissutale. Il carico fisiologico dinamico o patologico è stato applicato in un bioreattore su misura per 2 ore al giorno. Gli IVD sono stati assegnati a un gruppo di controllo (mezzo di glucosio elevato, carico fisiologico, iniezione salina tamponata da fosfati) e a un gruppo patologico (mezzo a basso glucosio, carico patologico, iniezione di fattore di necrosi tumorale-alfa) per quattro giorni. È stata eseguita l'analisi dell'espressione genica da cellule pulpose del nucleo raccolte degli IVD e il saggio immunoassorbente legato all'enzima del supporto di coltura degli organi condizionati.

I nostri dati hanno rivelato una maggiore espressione di marcatori infiammatori e una riduzione dell'altezza del disco dopo il caricamento nel gruppo patologico rispetto al gruppo di controllo. Questo protocollo è affidabile per simulare l'infiammazione e la degenerazione dell'IVD e può essere ulteriormente ampliato per ampliare il suo ambito di applicazione.

Introduzione

Lo loto antisoccito (LBP) può colpire individui di tutte le età ed è una delle principali cause di disabilità intutto il mondo 1,2,3. Il costo totale associato a LBP supera $ 100 miliardi all'anno4,5. La degenerazione del disco intervertebrale sintomatico (IVD), una condizione caratterizzata da infiammazione e degradazione dei tessuti, è una delle principali cause di LBP6,7. In particolare, l'IDD è caratterizzato da una rottura in graduale evoluzione della matrice extracellulare (ECM) dell'IVD, indotta e innescata da molteplici fattori che portano a una patologia accelerata, disturbi neurologici ed eventualmente disabilità. Inoltre, l'IDD è associato al rilascio di citochine proinfiammatorie, biomeccanica della colonna vertebrale alterata, angiogenesi e crescita nervosa, che aumenta la sensazione di dolore, causando del tutto LBP cronico (discopatia attiva)6,8. Ad oggi, le opzioni di trattamento includono discectomia e successiva fusione delle vertebre adiacenti, impianto di una protesi IVD o approcci non chirurgici, come farmaci antinfiammatori non steroidei, oppioidi e rilassanti muscolari per pazienti con IDD9. Entrambe le attuali opzioni terapeutiche standard, chirurgiche e non chirurgiche, sono solo parzialmente efficaci e non riescono ad affrontare il problema biologicosottostante 9,10. La malattia degenerativa del disco in fase iniziale è caratterizzata da una risposta iniziale del tessuto infiammatorio, in particolare un aumento dell'espressione fattore-alfa della necrosi tumorale (TNF-alfa)11. Questi primi cambiamenti del disco si verificano principalmente a livello cellulare senza interrompere l'architettura del disco e potrebbero in precedenza essere mimicked da carenza nutrizionale in condizioni pro-infiammatorie12. Pertanto, è fondamentale una simulazione precisa della situazione in vivo per indagare questi meccanismi di degenerazione e trovare obiettivi terapeutici adeguati. Inoltre, a queste simulazioni di proprietà molecolari, l'ambiente di carico meccanico dei dischi gioca un ruolo chiave nei cambiamenti patologici e fisiologici dell'IVD. Di conseguenza, combinare questi approcci ci farebbe fare un passo avanti per imitare il complesso microambiente dei D IVD in vivo. Attualmente non ci sono studi che considerino al meglio l'aspetto del carico dinamico insieme all'ambiente pro-infiammatorio e nutrizionale.

Sebbene i modelli animali di grandi dimensioni consentano di investigre potenziali interazioni in vivo pertinenti, sono costosi e richiede molto lavoro. Inoltre, poiché l'uso di modelli animali nella ricerca è stato a lungo oggetto di controversie, la riduzione del numero di animali necessari per rispondere a importanti domande di ricerca è di grande interesse. Infine, attualmente non esiste un modello animale ideale per imitare l'IDD nella ricerca IVD13,14. Pertanto, è necessario stabilire una sostituzione economica e affidabile, come un modello di coltura di organi per simulare l'IDD e i processi infiammatori e degenerativi associati. Recentemente, l'applicazione del presente protocollo sull'istituzione di un modello di coltura proinfiammatoria e degenerativa degli organi per simulare la malattia del disco intervertebrale in fase iniziale ci ha permesso di indagare l'effetto dei farmaci antinfiammatori nella coltura di organi IDD15.

Qui descriviamo come ottenere dischi intervertebrali bovini e induciamo lo stato di IDD in fase iniziale attraverso un microambiente catabolico e proinfiammatorio causato dall'iniezione intradiscale diretta di fattore alfa della necrosi tumorale (TNF-α) e dal carico degenerativo in un bioreattore in condizioni medie nutritive basse. La figura 1 illustra il modello sperimentale e mostra il bioreattore utilizzato per simulare le condizioni di carico degenerative e fisiologiche.

figure-introduction-1
Figura 1: Illustrazione dell'impostazione sperimentale. A: coda bovina; B: dischi intervertebrali bovini sezionati; C: trasferimento del disco su una piastra di pozzo con mezzo di coltura; D: caricamento della simulazione in un bioreattore; E: tecnica di iniezione intradiscale; F: IVD dopo iniezione di pbs/tripano colorante blu per rivelare la distribuzione. IDD: degenerazione del disco intervertebrale. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

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Protocollo

Gli esperimenti sono stati eseguiti utilizzando code bovine ottenute da mattatoi locali. I materiali biologici utilizzati nell'attuale studio sono prelevati dalla catena alimentare e non richiedono alcuna approvazione etica nel diritto svizzero ed europeo.

1. Dissezione del disco intervertebrale bovino

  1. Risciacquare accuratamente l'intera coda con acqua del rubinetto per rimuovere sporco e capelli sulla superficie.
    NOTA: Con estremità distali intatte, è possibile utilizzare un massimo di 9 IVD (coccigeo 1-9) per coda per gli esperimenti a seconda della dimensione desiderata degli IVD. Considerando il diametro desiderato tra 15-20 mm, abbiamo usato 12 code bovine con 5 IVD per coda per gli esperimenti.
  2. Immergere l'intera coda in una scatola contenente l'1% di soluzione di betadina per 10 minuti. Asciugare brevemente la coda con garza sterile e posizionarla su un drappo sterile.
    NOTA: Durante la dissezione del disco, umidificare le code con la garza bagnata della soluzione di Ringer per prevenire la disidratazione. Conservare le code (o segmenti a sinistra) avvolte in garza bagnata fino al completamento dell'intera procedura di dissezione.
  3. Utilizzare un bisturi (n. 20) per rimuovere il tessuto molle nel modo più completo possibile dalla colonna vertebrale caudale per facilitare l'identificazione degli IVD. Rimuovere i processi spinosi e trasversali delle vertebre con pinze di rimozione ossea.
    NOTA: selezionare gli IVD con il diametro desiderato. Nello studio attuale sono stati utilizzati IVD con un diametro di 15-20 mm.
  4. Tagliare trasversalmente con pinze ossee attraverso il centro di ogni corpo vertebrale per ottenere singoli segmenti di movimento. Metti i segmenti di movimento in una piastra di Petri con garza bagnata con la soluzione di Ringer.
  5. Individuare l'IVD e la vertebra palpando e spostando delicatamente i segmenti di movimento. Effettuare due tagli paralleli con la sega a banda nella piastra di crescita degli IVD, uno su ciascun lato dell'IVD. Identificare la posizione della piastra di crescita toccando e trovando il sito convesso della parte ossea della piastra finale (dura) adiacente al disco (morbida) con una distanza di sicurezza di circa 0,5-1 mm dall'IVD verso la vertebra. Assicurarsi che la lama della sega a nastro sia raffreddata con la soluzione di Ringer durante il taglio delle vertebre.
  6. Trasferire gli IVD in una piastra di Petri pulita con garza pulita bagnata con la soluzione di Ringer.
    NOTA: La garza deve essere inumidita e non troppo bagnata per evitare il gonfiore degli IVD,
  7. Utilizzare la lama bisturi per raschiare il corpo vertebrale (osso rosso / rosa), piastra di crescita (cartilagine bianca), lasciare intatta la piastra finale (giallo-rosa). Rendere le due superfici piatte e parallele per la procedura di caricamento. Trasferire gli IVD raschiati in una piastra di Petri fresca con garza bagnata con la soluzione di Ringer.
    NOTA: Indossare un guanto a catena per proteggere la mano tenendo premuto l'IVD e raschiando.
  8. Misurare l'altezza e il diametro del disco con una pinza. Pulire i coaguli di sangue nell'osso delle vertebre con la soluzione di Ringer utilizzando un sistema di lavanda a getto.
  9. Trasferire gli IVD su tubi di plastica da 50 ml, un IVD per tubo. Aggiungere 25 mL di salina tamponata da fosfati (PBS) + 10% penicillina/streptomicina (P/S) per IVD e lasciarla tremare per 15 minuti su uno shaker orbitale a temperatura ambiente.
  10. Aspirare il supernatante e aggiungere 10 mL di PBS + 1% P/S per IVD per 2 minuti per risciacquare gli IVD.

2. Cultura e carico IVD

  1. Trasferire dischi in camere IVD e aggiungere il mezzo di coltura IVD (Modified Eagle Medium (DMEM di Dulbecco, DMEM ad alto glucosio 4,5 g/L per il gruppo fisiologico e 2 g/L di DMEM a basso glucosio per il gruppo patologico) + 1% P/S + 2% siero fetale di vitello + 1% ITS (contiene 5 μg/mL di insulina, 6 μg/mL transferrina e 5 ng/mL acido selenioso) + 50 μg/mL ascorbato-2-fosfato + 1% amminoacido non essenziale + 50 μg/mL agente antimicrobico per le cellule primarie) e posto in un'incubatrice a 37 °C, umidità dell'85% e 5% CO2.
  2. Coltura dei dischi per 4 giorni all'interno di un sistema bioreattore secondo i gruppisperimentali 16. Nel gruppo patologico, mantenere condizioni di carico degenerative a 0,32-0,5 MPa, 5 Hz per 2 h /giorno. Nel gruppo di controllo fisiologico utilizzare un protocollo di carico di 0,02-0,2 MPa, 0,2 Hz per 2 h/giorno.
    NOTA: Posizionare gli IVD in camere contenenti 5 mL di supporto IVD durante le procedure di carico. Il volume dipende dalle dimensioni delle camere di carico del bioreattore. Tra le procedure di carico, posizionare gli IVD in piastre a sei potte con 7 mL di mezzo di coltura IVD per il recupero a gonfiore libero.
  3. Per analizzare le variazioni dell'altezza del disco durante il periodo sperimentale, misurare l'altezza del disco con una pinza dopo la dissezione IVD (linea di base) e quindi giornalmente dopo il periodo di gonfiore libero e dopo il caricamento dinamico per la durata sperimentale.

3. Iniezione del fattore alfa della necrosi tumorale intradiscale (TNF-α)

  1. Subito dopo il primo ciclo di caricamento dinamico il primo giorno, posizionare gli IVD in una piastra di Petri in posizione verticale e stabilizzare gli IVD con una pinzetta.
  2. Iniettare TNF-α ricombinante (100 ng in 70 μL di PBS per IVD) con un ago di insulina calibro 30 nel tessuto pulposo del nucleo del gruppo patologico17. Iniettare lentamente ad una velocità di circa 70 μL in 1 min.
  3. Dopo l'iniezione, tirare la siringa a metà strada all'interno dell'IVD e tirare lo stantuffo della siringa per creare un vuoto che impedisce alla soluzione iniettata di fuoriuscire, prima di rimuovere completamente l'ago e la siringa dall'IVD.
    NOTA: Eseguire un esperimento pilota iniettando PBS contenente colorante blu trypan per valutare la distribuzione della soluzione iniettata dopo il carico e la coltura notturna.

4. Espressione genica

  1. Raccogli gli IVD il giorno 4. Raccogliere il tessuto del nucleo pulposo (NP) (parte gelosa nel mezzo dell'IVD) con un punzone di biopsia. Raccogliere il fibroso annulus esterno (AF) con una lama bisturi (n. 20).
    NOTA: Per il riferimento di base al giorno 0, raccogliere i tessuti immediatamente dopo la dissezione per l'estrazione dell'RNA.
  2. Utilizzare la quantità di tessuto NP o AF necessaria per l'analisi dell'espressione genica, a seconda del progetto sperimentale.
    NOTA: Per gli esperimenti attuali è stato utilizzato circa 150 mg di tessuto. Il rapporto tra la soluzione di isolamento dell'RNA e la massa tissutale dovrebbe essere di almeno 2 mL per 100-150 mg di tessuto per un'estrazione efficiente.
  3. Digerire il tessuto NP o AF con la soluzione di digestione (0,2% di pronasi in DMEM, filtro sterilizzato) e incubare per 1 h a 37 °C con agitazione magnetica18.
  4. Congelare flash i campioni di tessuto utilizzando azoto liquido e polverizzare in una polvere fine. Dividere equamente la polvere di tessuto polverizzato in due tubi da 2 ml ciascuno contenenti 1 ml di tiocianato di guanidina e fenolo in una soluzione monofase (soluzione di isolamento dell'RNA).
  5. Eseguire l'omogeneizzazione in tubi da 2 ml contenenti la soluzione di isolamento dell'RNA e la polvere di tessuto polverizzato. Omogeneizzare la polvere di tessuto 5x con una sfera di acciaio inossidabile da 8 mm e un tissutale a 30 Hz per 3 min. Centrifugare a 12.000 x g,4 °C per 10 min e trasferire il supernatante in un tubo fresco. I supernatanti possono essere conservati a -80 °C per almeno un mese.
  6. Aggiungere 0,1 mL di 1-bromo-3-cloropropano (BCP) per 1 mL di soluzione di isolamento dell'RNA e agitare vigorosamente per 15 s. Conservare la miscela risultante a temperatura ambiente su uno shaker orbitale per 15 minuti e centrifugare a 12.000 x g per 15 min a 4 °C.
    NOTA: L'RNA rimane esclusivamente nella fase acquosa superiore.
  7. Trasferire la fase acquosa in un tubo fresco e precipitare l'RNA con 0,25 mL di isopropanolo e 0,25 ml di soluzione ad alta precipitazione del sale per 1 ml di soluzione di isolamento dell'RNA utilizzata per l'omogeneizzazione iniziale. Conservare i campioni a temperatura ambiente per 15 minuti su uno shaker orbitale e centrifugare a 12.000 x g per 8 min a 4 °C.
    NOTA: In alternativa, utilizzare il metodo di estrazione dell'RNA basato su colonne che generalmente porta a una maggiore purezza dell'RNA ma a una minore resa dell'RNA.
  8. Rimuovere il supernatante e lavare il pellet di RNA con 1 mL di 75% di etanolo per 1 mL di soluzione di isolamento dell'RNA utilizzato per l'omogeneizzazione iniziale. Centrifuga a 7.500 x g per 5 min a 4 °C.
  9. Rimuovere il lavaggio dell'etanolo e asciugare brevemente il pellet di RNA ad aria compressa per 3-5 minuti. Sciogliere l'RNA in 20 μL di acqua trattata con dietilpirocarbonato (DEPC) passando la soluzione alcune volte attraverso una punta di pipetta e incubando per 10-15 min a 55-60 °C.
  10. Misurare l'assorbanza a 230 nm, 260 nm e 280 nm (rispettivamente A230, A260 e A280). A260 di 1,0 corrisponde a 40 μg/mL RNA. Si prevede un rapporto A260/A280 di 1,6-1,9, mentre la contaminazione si traduce in un rapporto A260/A280 di <1,6.
  11. Preparare una miscela di reazione inversa transcriptasi (RT) per un volume di reazione di 20 μL. La miscela contiene miscela enzimatica RT, inibitore della ribonucleasi, proteina aiutante, primer, dNTP, MgCl2, acqua libera di RNasi e 0,4 μg di campione di RNA.
  12. Centrifugare brevemente i tubi RT per mescolare tutti i componenti nella parte inferiore del tubo.
  13. Posizionare i campioni nello strumento termociclo. Selezionare il programma appropriato per l'RT. Eseguire l'RT per 10 min a 25 °C, seguito dalla fase di trascrizione inversa per 120 min a 42 °C e dall'inattivazione della transcriptasi inversa per 5 minuti a 85 °C, raffreddandola fino a 4 °C alla fine.
  14. Diluire il cDNA risultante con acido tris(idrossimetil)amminometano (Tris)-etilendiamminatetraacetico (EDTA) (TE) tampone (10 mM Tris con 1 mM EDTA) ad una concentrazione finale di 0,4 μg di RNA utilizzato per RT per soluzione di cDNA da 100 μL. Conservare i campioni di cDNA a -20 °C.
  15. Eseguire la reazione a catena della polimerasi in tempo reale (PCR) utilizzando un volume di reazione di 10 μL. Il volume di reazione contiene il mix principale (contenente DNA polimerasi, glicosilasi uracil-DNA, dNTP con dUTP, riferimento passivo e componenti tampone ottimizzati), primer in avanti 45 μM, primer inverso 45 μM, sonda 12,5 μM (contenente un colorante reporter collegato all'estremità 5 ' della sonda, un legante di scanalatura minore all'estremità 3 ' della sonda e un quencher non fluorescente all'estremità 3 ' della sonda) , 2 μL cDNA e acqua trattata con DEPC.
  16. Eseguire un controllo endogeno (RPLP0) per la quantificazione relativa con il metodo 2-ΔΔCT 19.
  17. Aggiungere esempi in duplicati ed eseguire un controllo senza modello aggiungendo TE-buffer anziché cDNA. Eseguire PCR in condizioni standard (2 min a 50 °C, 10 min a 95 °C, 40 cicli di 15 s a 95 °C e 1 min a 60 °C).
  18. Eseguire la quantificazione relativa degli obiettivi di mRNA seguendo il metodo ct comparativo. La quantità di mRNA normalizzata al campione di base è calcolata come 2-ΔΔCT, mentre ΔΔCT è la differenza tra il ΔCT (CT target- CT endogeno control) del campione e ΔCT (CT target e CT endogeno control) del campione di base.

5. Quantificazione del contenuto proteico nel mezzo IVD

  1. Raccogliere il mezzo condizionato dai campioni IVD per misurare il contenuto proteico nel mezzo. Eseguire test immunoassorbenti legati all'enzima (ELISA) secondo il protocollo della proteina bersaglio.
  2. L'interleuchina bovina-8 (IL-8) è quantificata con kit ELISA IL8 anti bovino secondo le istruzioni del produttore.

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Risultati

Il carico degenerativo in mezzo a basso glucosio combinato con l'iniezione di TNF-α ha causato un aumento significativo dell'espressione genica dei marcatori proinfiammatori interleuchina 6 (IL-6) e interleuchina 8 (IL-8) rispetto al gruppo di controllo fisiologico nelle cellule NP dopo 4 giorni dicoltura (Figura 2). Al contrario, non abbiamo osservato cambiamenti significativi per i geni proinflammatori interleuchina 1β (IL-1β) e TNF-α nelle cellule NP (dati non mostrati). Inoltre, le condi...

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Discussione

Qui abbiamo fornito un protocollo dettagliato per simulare l'IVDD degenerativo e infiammatorio. Questo protocollo può essere applicato per esami dettagliati delle vie infiammatorie che portano agli effetti distruttivi sul disco. Inoltre, il protocollo può aiutare a determinare obiettivi terapeutici promettenti coinvolti nella progressione della malattia.

Recentemente abbiamo dimostrato che il TNF-α ricombinante umano potrebbe indurre infiammazione nelle cellule NP sia bovine che umane

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Ringraziamenti

Questo lavoro è stato supportato da AO Foundation e AOSpine International. Babak Saravi ha ricevuto il sostegno della Fondazione tedesca Spine e della Fondazione tedesca per l'osteoartrite. Gernot Lang è stato sostenuto dal Programma Berta-Ottenstein per scienziati clinici avanzati, Facoltà di Medicina, Università di Friburgo, Germania.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
1-bromo-3-cloropropano(BCP)Sigma-Aldrich, St. Louis, USAB9673
Ascorbato-2-fosfatoSigma-Aldrich, St. Louis, USAA8960
Sega a nastroExakt Apparatebau, Norderstedt, Germaniamodello 30/833
BetadineMunndipharma, Francoforte, Germania
Bovino IL-8 Fai da te ELISAKingfisher Biotech, St. Paul, USADIY1028B-003
Corning ITS PremixCorning Inc., New York, USA354350
DMEM Gibco ad alto contenuto di glucosiodi life technologies, Carlsbad, USA10741574
DMEM Gibco a basso contenuto di glucosiodi life technologies, Carlsbad, USA11564446
Etanolo per la biologia molecolareSigma-Aldrich, St. Louis, USA09-0851
Siero fetale bovino (FBS)Gibco di life technologies, Carlsbad, USAA4766801
Soluzione di aminoacidi non essenzialiGibco di life technologies, Carlsbad, USA11140050
Penicillina/Streptomicina (P/S)gibco di life technologies, Carlsbad, USAfosfato 11548876
compressaSigma-Aldrich, St. Louis, USAP4417
PronaseSigma-Aldrich, St. Louis, USA10165921001
PrimocinInvivoGen, Sandiego, USAant-pm-05
Pulsavac Jet Lavage SystemZimmer, IN, USA
TissueLyser IIQuiagen, Venlo, Paesi Bassi85300
Streptavidinn-HRPKingfisher Biotech, St. Paul, USAAR0068-001
Superscript VILOInvitrogen di life Technologies, Carlsbad, USAKit
Biosistemi applicati di life technologies10400745
TaqMan Universal Master MixBiosystems applicati di life technologies
TNF-alfa, proteina umana ricombinanteR& D systems, Minnesota, USA210-TA-005
TRI ReagentMolecular Research Center, Cincinnati, USATR 118
Soluzione tampone Tris-EDTAsigma-Aldrich, St. Louis, USA93283
Gene bIL-6Applied Biosystems by life technologiesSondesu misuraPrimer fw (5′ – 3&primo;) TTC CAA AAA TGG AGG AAA AGG A
Primer rev (5′ – 3&primo;) Sonda TCC AGA AGA CCA GCA GTG GTT
(5′ FAM/3′ TAMRA) CTT CCA ATC TGG GTT CAA TCA GGC GATT
Gene bIL8Biosystems applicati dalle tecnologie della vitaBt03211906_m1
Gene bTNF-alfaBiosistemi applicati dalle tecnologie della vitaSonde su misuraPrimer fw (5′ – 3&primo;) CCT CTT CTC AAG CCT CAA GTA ACA A
Primer rev (5′ – 3&primo;) Sonda GAG CTG CCC CGG AGA GTT
(5′ FAM/3′ TAMRA) ATG TCG GCT ACA ACG TGG GCT ACC G
GENE bIL1betaBiosistemi applicati da life technologiesSonde su misuraPrimer fw (5′ – 3&primo;) TTA CTA CAG TGA CGA GAA TGA GCT GTT
Primer rev (5′ – 3&primo;) Sonda GGT CCA GGT GTT GGA TGC A
(5′ FAM/3′ TAMRA) CTC TTC ATC TGT TTA GGG TCA TCA GCC TCA A
RPLP0Biosistemi applicati da life technologiesBt03218086_m1
Soluzione tampone , di sintesi del cDNA 10704274

Riferimenti

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