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Articolo metodologico

Frazionamento cellulare di cellule U937 mediante purificazione del gradiente di densità isopicnica

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DOI:

10.3791/62119

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12 agosto 2021

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In questo articolo

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Sommario

Questo protocollo di frazionamento consentirà ai ricercatori di isolare proteine citoplasmatiche, nucleari, mitocondriali e di membrana da cellule di mammifero. Le ultime due frazioni subcellulari vengono ulteriormente purificate tramite gradiente di densità isopicnica.

Abstract

Questo protocollo descrive un metodo per ottenere frazioni proteiche subcellulari da cellule di mammifero utilizzando una combinazione di detergenti, lisi meccanica e centrifugazione a gradiente di densità isopicnica. Il vantaggio principale di questa procedura è che non si basa sul solo uso di detergenti solubilizzanti per ottenere frazioni subcellulari. Ciò consente di separare la membrana plasmatica da altri organelli legati alla membrana della cellula. Questa procedura faciliterà la determinazione della localizzazione delle proteine nelle cellule con un metodo riproducibile, scalabile e selettivo. Questo metodo è stato utilizzato con successo per isolare proteine citosoliche, nucleari, mitocondriali e di membrana plasmatica dalla linea cellulare monocitaria umana, U937. Sebbene ottimizzata per questa linea cellulare, questa procedura può servire come punto di partenza adatto per il frazionamento subcellulare di altre linee cellulari. Le potenziali insidie della procedura e come evitarle sono discusse così come le alterazioni che potrebbero dover essere considerate per altre linee cellulari.

Introduzione

Il frazionamento subcellulare è una procedura in cui le cellule vengono lisate e separate nei loro componenti costitutivi attraverso diversi metodi. Questa tecnica può essere utilizzata dai ricercatori per determinare la localizzazione delle proteine nelle cellule di mammifero o per l'arricchimento di proteine a bassa abbondanza che altrimenti non sarebbero rilevabili. Mentre attualmente esistono metodi per il frazionamento subcellulare, così come i kit commerciali che possono essere acquistati, soffrono di diverse limitazioni che questa procedura tenta di superare. La maggior parte dei metodi di frazionamento cellulare sono esclusivamente a base di detergente

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Protocollo

1. Preparare tamponi e reagenti

  1. Preparare soluzioni fresche di fosfatasi e inibitori della proteasi.
    1. Aggiungere 17,4 mg di fenilmetansulfonil fluoruro (PMSF) a 1 mL di etanolo al 100% per preparare una scorta di 100 mM.
      NOTA: Indossare dispositivi di protezione quando si maneggia PMSF in quanto è pericoloso se ingerito o inalato e a contatto con la pelle o gli occhi. È corrosivo per gli occhi e la pelle.
    2. Secondo le istruzioni del produttore, preparare un cocktail inibitore della proteasi disponibile in commercio (100x).
    3. Aggiungere 91,9 mg di ortovanadato di sodio (SOV) a 1 mL di acqua deionizzata per preparare una scorta di 50....

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Risultati

Un diagramma di flusso schematico di questa procedura (Figura 1) riassume visivamente i passi che sono stati intrapresi per frazionare con successo U9375 cellule cresciute in sospensione. Le frazioni raccolte dalla parte superiore del gradiente di densità isopicnica in volumi uguali (1 ml) mostrano la purificazione delle frazioni mitocondriali e di membrana (Figura 2). L'utilizzo di un anticorpo contro VDAC, una proteina localizzata nella.......

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Discussione

Questo metodo è una versione modificata di un approccio precedentemente pubblicato al frazionamento subcellulare senza l'uso della centrifugazione ad alta velocità11. Questo metodo modificato richiede attrezzature più specializzate per ottenere i migliori risultati, ma è più completo e costantemente riproducibile.

Lo sviluppo del protocollo iniziale è stato necessario a causa dell'incapacità di separare campioni mitocondriali e di membrana per l'analisi della localizzaz.......

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Dichiarazioni

Gli autori non dichiarano alcun conflitto di interessi.

Ringraziamenti

Questo lavoro è stato supportato da NIH R15-HL135675-01 e NIH 2 R15-HL135675-02 a T.J.L.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Benzonasi NucleasiSigma-AldrichE1014
Bullet Blender Omogeneizzatore tissutaleNext Advance61-BB50-DX
digitoninSigmaD141
rotatore end-over-endThermoFisher
Acido etilendiamminotetraacetico (EDTA)SigmaE9884
glicole etilenico-bis(β-amminoetil etere)-N,N,N',N'-acido tetraacetico (EGTA)SigmaE3889
GAPDH (14C10) Cell Signalling Technologies2118
HEPESVWR97064-360
Glicole esilenicoSigma68340
IgepalSigmaI7771Detergente non ionico e non denaturante
KClSigmaP9333
MannitoloSigmaM9647
MgCl2SigmaM8266
NaCl SigmaS9888
Na, K-ATPase a1 (D4Y7E)Cell Signalling Technologies23565
Provette Polyclear open-top, 16 x 52 mmSeton Scientific7048
OptiPrep (Iodixanol)  Gradiente di densità MedioSigmaD1556-250ML
fenilmetansulfonilfluoruro (PMSF)SigmaP7626
Cocktail di inibitori della proteasi, centrifugaVWRM221-1ML
ThermoFisher
S50-ST Rotore a secchiello oscillanteEppendorf
Dodecil solfato di sodio (SDS)Sigma436143
Desossicolato di sodioSigmaD6750
ortovanadato di sodio (SOV)Sonicatore Sigma567540
ThermoFisher
Sorvall MX120 Plus Micro-UltracentrifugaThermoFisher
Perline in acciaio inossidabile 3,2 mmNext AdvanceSSB32
SaccarosioSigmaS0389
Soluzione salina tamponata con tris (TBS)VWR97062-370
Tween 20detergente non ionico in tamponi western blotting
VDAC (D73D12)Cell Signalling Technologies4661
refrigerata per uso generale

Riferimenti

  1. Baghirova, S., Hughes, B. G., Hendzel, M. J., Schulz, R. Sequential fractionation and isolation of subcellular proteins from tissue or cultured cells. MethodsX. 2, 440-445 (2015).
  2. Il Hwang, S., Han, D. K.

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Ristampe e permessi

Errata corrige


Formal Correction: Erratum: Cell Fractionation of U937 Cells by Isopycnic Density Gradient Purification
Posted by JoVE Editors on 5/31/2022. Citeable Link.

An erratum was issued for: Cell Fractionation of U937 Cells by Isopycnic Density Gradient Purification. The Authors section was updated.

The Authors section was updated from:

William McCaig1
Timothy LaRocca1
1Department of Basic and Clinical Sciences, Albany College of Pharmacy and Health Sciences

to:

William D. McCaig1
Matthew A. Deragon1
Phillip V. Truong1
Angeleigh R. Knapp1
Keven J. Hughes1
Timothy J. LaRocca1
1Department of Basic and Clinical Sciences, Albany College of Pharmacy and Health Sciences

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