Method Article

Imaging time-lapse dell'arborizzazione neuronale utilizzando l'etichettatura del virus adeno-associato sparso di popolazioni di cellule retiniche geneticamente mirate

DOI:

10.3791/62308

March 19th, 2021

In This Article

Summary

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Qui, presentiamo un metodo per studiare la morfogenesi dei neuriti negli espianti retinici postnatali di topo mediante microscopia confocale time-lapse. Descriviamo un approccio per l'etichettatura sparsa e l'acquisizione di tipi di cellule retiniche e dei loro processi fini utilizzando vettori virali adeno-associati ricombinanti che esprimono proteine fluorescenti mirate alla membrana in modo Cre-dipendente.

Abstract

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La scoperta di meccanismi che modellano i pergole dendritiche richiede metodi per visualizzare, immaginare e analizzare i dendriti durante lo sviluppo. La retina del topo è un potente sistema modello per lo studio dei meccanismi specifici del tipo cellulare della morfogenesi neuronale e della connettività. L'organizzazione e la composizione dei sottotipi di retina sono ben definite e sono disponibili strumenti genetici per accedere a tipi specifici durante lo sviluppo. Molti tipi di cellule retiniche vincolano anche i loro dendriti e / o assoni a strati stretti, il che facilita l'imaging time-lapse. Le colture di espianto della retina del topo sono adatte per l'imaging di cellule vive utilizzando la microscopia confocale o multifotonica, ma mancano metodi ottimizzati per l'imaging della dinamica della dendrite con risoluzione temporale e strutturale. Qui viene presentato un metodo per etichettare e visualizzare scarsamente lo sviluppo di specifiche popolazioni retiniche caratterizzate dal sistema Cre-Lox. I virus adeno-associati disponibili in commercio (AAV) qui utilizzati hanno espresso proteine fluorescenti mirate alla membrana in modo Cre-dipendente. La somministrazione intraoculare di AAV nei topi neonatali produce l'etichettatura fluorescente dei tipi di cellule mirate entro 4-5 giorni dall'iniezione (dpi). I segnali fluorescenti a membrana sono rilevabili mediante imaging confocale e risolvono strutture e dinamiche di rami fini. Video di alta qualità della durata di 2-4 ore vengono acquisiti dall'imaging di supporti piatti retinici perfusi con liquido cerebrospinale artificiale ossigenato (aCSF). Viene inoltre fornita una pipeline di post-elaborazione delle immagini per la deconvoluzione e la correzione tridimensionale (3D) della deriva. Questo protocollo può essere utilizzato per catturare diversi comportamenti cellulari nella retina intatta e per identificare nuovi fattori che controllano la morfogenesi dei neuriti. Molte strategie di sviluppo apprese nella retina saranno rilevanti per comprendere la formazione di circuiti neurali altrove nel sistema nervoso centrale.

Introduction

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I dendriti dei neuroni retinici formano schemi intricati, ma specifici, che influenzano la loro funzione all'interno dei circuiti neurali. Nella retina dei vertebrati, diversi tipi di cellule gangliari retiniche (RGC) e interneuroni a cellule amacrine portano morfologie dendritiche uniche che differiscono per dimensioni del pergolato, posizione, lunghezza del ramo e densità1. Durante lo sviluppo postnatale, gli RGC e le cellule amacrine estendono i processi dendritici esuberanti in un neuropil chiamato strato plessiforme interno (IPL), dove ricevono input di cellule bipolari che trasmettono segnali fotorecettori2. Come c....

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Protocol

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NOTA: Questo protocollo si estende su 2 giorni con un periodo minimo di 4-5 giorni per la trasduzione virale tra i giorni sperimentali (Figura 1A). Gli esperimenti sugli animali vengono eseguiti in conformità con le linee guida del Canadian Council on Animal Care per l'uso degli animali nella ricerca e nella cura degli animali da laboratorio secondo protocolli approvati dal Laboratory of Animal Services Animal Use and Care Committee presso l'Hospital for Sick Children (Toronto, Canada).

1. Preparazioni per le iniezioni neonatali di AAV ed esperimenti di imaging

  1. Selezionare una linea del mouse Cre per ....

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Results

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Utilizzando il protocollo di cui sopra, è stato acquisito, deconvoluto e corretto un video 3D ad alta risoluzione dello sviluppo di dendriti di cellule starburst. Sono state prodotte proiezioni massime del piano Z per realizzare video 2D per l'analisi (Video supplementare 1, Figura 5A). La deconvoluzione 3D di ogni punto temporale ha aumentato la risoluzione delle proiezioni di filopodi fini (Figura 5B, C). Le protrusioni sottil.......

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Discussion

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Questo video dimostra una pipeline sperimentale che utilizza gli strumenti genetici esistenti per visualizzare le dinamiche dendrite dello sviluppo di neuroni retinici con imaging vivo confocale. Sono state dimostrate anche iniezioni intraoculari di AAV Cre-dipendenti che codificano proteine fluorescenti mirate alla membrana nei topi neonatali. Le singole cellule di popolazioni geneticamente mirate sono marcate brillantemente già a 4-5 dpi. I supporti piatti retinici sono stati preparati per le camere di imaging standard.......

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Disclosures

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Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Acknowledgements

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Ringraziamo Madison Gray per avermi dato una mano quando non ne avevo. Questa ricerca è stata supportata da un NSERC Discovery Grant (RGPIN-2016-06128), una Sloan Fellowship in Neuroscience e una Canada Research Chair Tier 2 (a J.L.L). S. Ing-Esteves è stato supportato dal Vision Science Research Program e dal NSERC Postgraduate Scholarships-Doctorals.

....

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Addgene viral prep #45185-AAV9
Addgene viral prep #45186-AAV9
Strumenti di dissezione
Carta da filtro in cellulosaWhatman1001-070
Dumont #5 pinze finiFST11252-20Due pinze Dumont #5 sono necessarie per la microdissezione retinica
Forbici sottiliDumont VWR82027-426
FST14058-09
Carte da filtro con membrana mista di estere di cellulosa (MCE), idrofile, 0,45 e micro; m dimensione dei poriMilliporeHABG01 300
Piastra di Petri, 50 &volte; 15 mmVWR470313-352
Pipetta di trasferimento monouso in polietileneVWR470225-034
Pennello a punta tonda, misura 3/0NegozioSono necessari due pennelli di misura 3/0 (o più piccoli) per le
forbici chirurgicheretinico FST14007-14
Forbici a molla Vannas - Tagliente da 2,5 mmFST15000-08
Live-imaging sistema di incubazione
Tubo in polietilene a camera, PE-160 10'WarnerInstruments64-0755
Controller riscaldatore a doppio canale, modello TC-344CWarner Instruments64-2401
HC FLUOTAR L 25x/0,95 W Obiettivo a immersioneVISIR Leica15506374
Cavo controller riscaldatoreWarner InstrumentsCC-28
Grande camera di incubazione a bagno con supporto per fetteWarnerInstruments RC-27L
MPII Mini-Pompa peristalticaHarvard Apparatus70-2027
PM-6D Piattaforma riscaldata magnetica (riscaldatore della camera di incubazione)Warner InstrumentsPM-6D
Testa della pompa Pezzi di tubo per pompa mini-peristaltica MPIIHarvard Apparatus55-4148
Ancoraggio per campioni (arpe)Warner Instruments64-0260L'ancoraggio per campioni deve essere compatibile con la camera di incubazione
Sloflo Riscaldatore per soluzione in lineaWarner InstrumentsSF-28
Iniezioni neonatali
10 µ Siringa da microlitro L serie 700, ago rimovibileHamilton Company80314
Aghi ipodermici da 30 g (0,5 pollici)BD PrecisionGlide305106
capillare in vetro a parete sottile da 4 pollici, senza filamento (diametro esterno 1,0 mm/0,75 mm) WPI World Precision InstrumentsTW100-4
Etanolo 99,8% (da diluire al 70% con acqua bidistillata [ddH2O])Sigma-AldrichV001229 
AAV9.hEF1a.lox.TagBFP. lox.eYFP.lox.WPRE.hGH-InvBYFPenn Vector CoreAV-9-PV2453Addgene Plasmide #45185 
AAV9.hEF1a.lox.mCherry.lox.mTFP
1.lox. WPRE.hGH-InvCheTF
Penn Vector CoreAV-9-PV2454Addgene Plasmide #45186
ChAT-IRES-Cre knock-in linea di topi transgeniciThe Jackson Laboratory6410
Fast Green FCF Contenuto di colorante ≥ 85 %Sigma-AldrichF7252-25G
Estrattore per micropipette fiammeggiante/marrone, modello P-97Sutter Instrument Co.P-97
Pasta per tatuaggi verdeKetchum MFG Co329A
Soluzione salina tamponata con fosfato, pH 7,4, liquida, filtrata sterile, adatta per colture cellulariSigma-Aldrich806552
Pneumatic PicoPumpWPI World Precision InstrumentsPV-820
Liquido cerebrospinale artificiale ossigenato (aCSF) Reagenti
Cloruro di calcio diidrato (CaCl2· 2H2O)Sigma-AldrichC7902
Carbogen (5% CO2, 95% O2)AirGasX02OX95C2003102Il fornitore può variare a seconda della regione
D-(+)-GlucosioSigma-AldrichG7021
HEPES, acido liberoBio BasicHB0264
Soluzione di acido cloridrico, 1 NSigma-AldrichH9892
Cloruro di magnesio esaidrato (MgCl2· 6H2O)per pH Sigma-AldrichM2670
(6,0-7,7)VWRBDH35317.604
Cloruro di potassio (KCl)Sigma-AldrichP9541
Cloruro di sodio (NaCl)Bio BasicDB0483
Fosfato di sodio monobasico (NaH2PO4)Sigma-AldrichRDD007
Software
ImageJNational Institutes of Health (NIH)Open source
di forniture d'arte convenzionale a montaggio piatto Strisce reattive

References

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Lefebvre, J. L., Sanes, J. R., Kay, J. N. Development of dendritic form and function. Annual Review of Cell and Developmental Biology. 31, 741-777 (2015).
  2. Graham, H. K., Duan, X. Molecular mechanisms regulating synapt....

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Neuronal ArborizationTime Lapse ImagingRetinal Cell PopulationsAdeno Associated VirusSparse LabelingConfocal MicroscopyCre Lox SystemDendrite DynamicsRetinal Flat Mount3D Deconvolution

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