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Visualizzazione e quantificazione dei tessuti adiposi marroni e beige nei topi utilizzando [18F]FDG Micro-PET/MR Imaging

DOI:

10.3791/62460

July 1st, 2021

In This Article

Summary

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Imaging funzionale e quantificazione di depositi adiposi termogenici nei topi utilizzando un approccio basato sull'imaging micro-PET/MR.

Abstract

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Gli adipociti marroni e beige sono ora riconosciuti come potenziali bersagli terapeutici per l'obesità e le sindromi metaboliche. I metodi di imaging molecolare non invasivi sono essenziali per fornire informazioni critiche su questi depositi adiposi termogenici. Qui, il protocollo presenta un metodo basato sull'imaging PET / MR per valutare l'attività degli adipociti marroni e beige nel tessuto adiposo bruno interscapolare di topo (iBAT) e nel tessuto adiposo bianco sottocutaneo inguinale (iWAT). La visualizzazione e la quantificazione dei depositi adiposi termogenici sono state ottenute utilizzando [18F]FDG, l'analogo del glucosio non metabolizzabile, come radiotracciante, quando combinato con le precise informazioni anatomiche fornite dall'imaging MR. L'imaging PET/MR è stato condotto 7 giorni dopo l'acclimatazione a freddo e la quantificazione del segnale [18F]FDG in diversi depositi adiposi è stata condotta per valutare la mobilizzazione relativa dei tessuti adiposi termogenici. La rimozione di iBAT ha aumentato sostanzialmente l'assorbimento di [18F] FDG evocato dal freddo in iWAT dei topi.

Introduction

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In risposta alle mutevoli esigenze nutrizionali, il tessuto adiposo funge da cache di energia per adottare la modalità di stoccaggio dei lipidi o di mobilizzazione per soddisfare le esigenze del corpo1. Inoltre, il tessuto adiposo svolge anche una funzione chiave nella termoregolazione, attraverso un processo chiamato termogenesi non tremante, chiamato anche termogenesi facoltativa. Ciò è tipicamente ottenuto dal tessuto adiposo bruno (BAT), che esprime un livello abbondante di proteina di disaccoppiamento della proteina di membrana dei mitocondri 1 (UCP1). Come vettore di protoni, UCP1 genera calore disaccoppiando il trasporto di protoni e la ....

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Protocol

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Il protocollo descritto di seguito segue le linee guida per la cura degli animali dell'Università di Hong Kong. Gli animali utilizzati nello studio erano topi C57BL / 6J di 8 settimane.

1. Procedure chirurgiche animali e sfida a freddo

  1. Eseguire la dissezione BAT interscapolare (iBAT).
    1. Anestetizzare i topi mediante iniezione intraperitoneale di ketamina/xilazina (100 mg/kg di ketamina a corpo libero e 10 mg/kg di xilazina peso corporeo). Dopo l'anestesia, radere i capelli del topo dal collo a appena sotto le scapole.
    2. Posizionare i topi sulla piastra riscaldante dopo la disinfezione e fare un'incisione di 2 cm lun....

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Results

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Tre gruppi di topi (n = 3 per gruppo) sono stati sottoposti a micro-PET/MR imaging in questo studio, dove sono stati alloggiati a termoneutralità (30 °C) o a freddo (6 °C) per 7 giorni. Un gruppo di topi (n = 3) ha avuto il loro iBAT rimosso (iBATx) prima del trattamento a freddo (Figura 1A). Questo metodo ha portato ad un'alterazione dell'attività del tessuto adiposo bianco in tutti e tre i topi. In particolare, un notevole aumento dell'assorbimento di [18F]FDG è stato osservato .......

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Discussion

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In questo studio, è stata descritta un'imaging e una quantificazione basati su PET / MR del tessuto adiposo marrone e beige funzionale in piccoli animali. Questo metodo utilizza l'analogo del glucosio non metabolizzabile [18F]FDG come biomarcatore di imaging in modo da identificare i tessuti adiposi con elevata domanda di glucosio in modo non invasivo. La RM offre un buon contrasto tra i tessuti molli e può differenziare meglio i tessuti adiposi dai tessuti molli e dai muscoli vicini. Se combinato con la PET, .......

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Disclosures

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Gli autori non hanno conflitti di interesse da divulgare.

Acknowledgements

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Ringraziamo il sostegno della National Natural Science Foundation of China (NSFC) - Excellent Young Scientists Fund (Hong Kong e Macao) (81922079), Hong Kong Research Grants Council General Research Fund (GRF 17121520 e 17123419) e Hong Kong Research Grants Council Collaborative Research Fund (CRF C7018-14E) per esperimenti di imaging su piccoli animali.

....

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Soluzione salina sterile allo 0,9%BBraunCloruro di sodio per infusione endovenosa, 500 mL
Siringa da 5 mLTerumoSS05LSiringa da 5 mL
Calibratore di doseBiodexAtomlab 500
Lubrificante per gli occhiAlcon Duratearslubrificante oculare sterile, 3,5 g
Siringa da insulinaTerumo10ME2913Siringa da insulina da 1 ml con ago
Software InterView FusionMedisoVersione 3.03post-elaborazione e analisi delle immagini
IsofluraneChanelle PharmaIso-Vet, anestetico per inalazione, 250 ml di
ketaminaAlfasan International B.V.HK-37715Ketamina 10% soluzione iniettabile, 10 mL di
ossigenomedicale Linde HKO101-HRgas compresso, purezza 99,5%
MetacamBoehringer Ingelheim5 mg/mL Meloxicam soluzione iniettabile per cani e gatti, 10 mL
di scanner PET/MR nanoScanMediso3 Tesla MR
Nucline nanoScan ScannerMedisoversione 3.0 software operativo
Clip avvolteReflex 7203-1007mm Clip avvolte in acciaio inox, 20 clip
XilazinaAlfasan International B.V.HK-56179Xilazina 2% soluzione iniettabile, 30 mL
Luer Lock Unguento Software di

References

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  1. Rosen, E. D., Spiegelman, B. M. What we talk about when we talk about fat. Cell. 156 (1-2), 20-44 (2014).
  2. Cannon, B., Brown Nedergaard, J. adipose tissue: function and physiological significance. Physiological Review. 84 (1), 277-359 (2004).
  3. Jal Wu,, et al.

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Brown Adipose TissueBeige Adipose TissuePET MR Imaging18F FDG UptakeThermogenic AdipocytesCold AcclimationInterscapular Brown FatInguinal White FatMouse ImagingAdipocyte Quantification

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