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Articolo metodologico

Implementazione AAV di costrutti di espressione basati su enhancer in vivo nel cervello di topo

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DOI:

10.3791/62650

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31 marzo 2022

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In questo articolo

Sommario

Questo protocollo descrive un nuovo test di enhancer-reporter transitorio basato su rAAV. Questo test può essere utilizzato per indurre l'espressione guidata dal potenziatore in vivo nel cervello del topo.

Abstract

Gli enhancer sono piattaforme di legame per una vasta gamma di fattori di trascrizione che guidano specifici modelli di espressione di geni specifici del tipo di tessuto e della cellula. Molteplici mezzi per valutare il DNA non codificante e vari stati della cromatina si sono dimostrati utili nel predire la presenza di sequenze enhancer nel genoma, ma convalidare l'attività di queste sequenze e trovare gli organi e gli stadi di sviluppo in cui sono attivi è un processo ad alta intensità di lavoro. I recenti progressi nei vettori del virus adeno-associato (AAV) hanno permesso la consegna diffusa di transgeni ai tessuti del topo, consentendo test di potenziatori in vivo senza la necessità di un animale transgenico. Questo protocollo mostra come un costrutto reporter che esprime EGFP sotto il controllo di un promotore minimo, che non guida l'espressione significativa da solo, può essere utilizzato per studiare i modelli di attività delle sequenze di potenziatori candidati nel cervello del topo. Un costrutto reporter confezionato AAV viene consegnato al cervello del topo e incubato per 1-4 settimane, dopo di che l'animale viene sacrificato e le sezioni cerebrali vengono osservate al microscopio. EGFP appare nelle cellule in cui il potenziatore testato è sufficiente per avviare l'espressione genica, individuando la posizione e lo stadio di sviluppo in cui il potenziatore è attivo nel cervello. I metodi di clonazione standard, l'imballaggio AAV a basso costo e l'espansione dei sierotipi e dei metodi AAV per la consegna in vivo e la lettura standard dell'imaging rendono questo un approccio accessibile per lo studio di come l'espressione genica è regolata nel cervello.

Introduzione

Gli enhancer sono elementi cis-regolatori genomici che fungono da siti di legame del fattore di trascrizione e possono guidare l'espressione di un gene bersaglio in modo spazio-temporale specifico 1,2. Sono differenzialmente attivi in diversi tipi cellulari, tessuti e stadi di sviluppo e possono essere substrati della variazione genomica correlata al rischio di malattia 3,4. Pertanto, la necessità di comprendere le dinamiche della funzione enhancer è fondamentale per il progresso nelle applicazioni sia traslazionali che scientifiche di base all'interno....

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Protocollo

Questo protocollo è stato approvato dal Comitato istituzionale per la cura e l'uso degli animali della UC Davis (Protocollo #22339) e dal Comitato istituzionale per la biosicurezza della UC Davis (BUA-R1903). Questo protocollo è stato testato su topi C57BL/6J di entrambi i sessi al giorno postnatale 0-1.

1. Clonare la sequenza del candidato enhancer nel plasmide vettore AAV.

NOTA: vengono forniti i protocolli rappresentativi, ma la strategia di clonazione ha un alto grado di flessibilità.

  1. Selezionare o progettare un costrutto reporter. Qui, il candidato enhancer viene inserito nella reg....

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Risultati

Utilizzando questi metodi, una sequenza di 915 bp nel terzo introne associato al rischio psichiatrico del gene CACNA1C19,49,50 è stata testata per l'attività del potenziatore nel cervello del topo postnatale. Questa sequenza è stata scoperta in un MPRA di 345 sequenze di potenziatori candidati centrate sul rischio psichiatrico e neurologico SNPs12 e gli esperimenti di caratterizzazione sono descr.......

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Discussione

Questo protocollo descrive un metodo basato su rAAV per il dispiegamento di transgeni guidati da enhancer nel cervello postnatale del topo. In questo protocollo generalizzato, un potenziatore candidato, un promotore minimo, un gene reporter e una sequenza di codici a barre opzionale vengono clonati in una spina dorsale del plasmide AAV. Questi esperimenti possono essere fatti con una singola sequenza di potenziatore candidato o con molte sequenze in parallelo. Il plasmide viene confezionato in un rAAV e consegnato al cer.......

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Dichiarazioni

Gli autori non dichiarano interessi finanziari concorrenti.

Ringraziamenti

Il sequenziamento è stato eseguito presso la UC Davis DNA Technologies Core. Ringraziamo il laboratorio di Lin Tian alla UC Davis per la formazione sul packaging rAAV e per averci generosamente regalato plasmidi aiutanti AAV e rep/cap. Questo lavoro è stato supportato da NIH/NIGMS R35GM119831.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
10x Tampone CitratoSigma-AldrichC9999-1000ML
5'-gatcactctcggcatggac-3'IntegratedDNA TechnologiesN/A: Primer Forward progettato su misuraper la verifica dei cloni dopo la trasformazione. Questi primer sono specifici per il vettore utilizzato e sono stati progettati per il vettore specifico utilizzato nei nostri esperimenti.
5'-gatggctggcaactagaagg-3'IntegratedDNA TechnologiesN/A:Primer inverso progettato su misura per la verifica dei cloni dopo la trasformazione. Questi primer sono specifici per il vettore utilizzato e sono stati progettati per il vettore specifico utilizzato nei nostri esperimenti.
AgarosioVWRVWRVN605-500G
Tubi aspiratoriSigma-AldrichA5177-5EAper l'erogazione orale di rAAV
Piastre di Petri batteriologicheThermo Fisher Scientific08-757-100D
CarbenicillinaSigma-AldrichC1389-5G
Pollo IgY anti-GFPThermo Fisher ScientificA10262
Microscopio confocaleZeissLSM900Le immagini sono state scattate sul modello LSM800, ma Zeiss ha lanciato il modello LSM900 negli ultimi anni per sostituire LSM800.
Provette da centrifuga coniche 15 mLThermo Fisher Scientific12-565-269
CryomoldsThermo Fisher ScientificNC9806558Questi stampi sono adatti per il cervello di topo P28. Altre dimensioni possono essere più adatte per tessuti più grandi o più piccoli.
DAPISigma-AldrichD9542-10MG
Forbici da dissezione, 4,5"VWR82027-578
Asino anti-pollo AlexaFlour-488Jackson ImmunoResearch703-545-155
Dulbecco's PBS 1xThermo Fisher ScientificMT21031CV
Eppendorf Provette per microcentrifuga 2,0 mLThermo Fisher Scientific
Falcon provette a fondo tondo 14 mLThermo Fisher Scientific352059
Fast Green coloranteGraingerF0099-1G
Set di pennelli per dettagli finiArtbrush TowerB014GWCLFO
Gibson Assembly Master MixNEBE2611S
Tubi capillari in vetroDrummond Scientific Company5-000-2005
Kit maxi plasmidico HiSpeedQIAGEN12663Kit maxi preparazione plasmidi commerciali
HyClone HyPure Acqua di biologia molecolareVWRSH30538.03
IV set per infusione a farfalla con tubo da 12" e ago da 25GThermo Fisher Scientific26708
KimwipesKimberly Clark34155Salvietta senza lanugine
LB AgarThermo Fisher ScientificBP1425-500LB premiscela di agar per terreni selettivi
McPherson Vannas forbice per irideIntegra LifeSciences360-215
Olio mineraleSigma Life Science69794-500ML
NEB Stabile Competente E. coliNEBC3040I
NucleoSpin Gel e PCR Clean-UpTakara740609.5Kit per reazione enzimatica terreno di pulizia ed estrazione del gel
OCTVWR25608-930
Agitatore orbitaleCole Parmer60-100
ParaformaldeideSigma-Aldrich158127-500G
Provette per strisce PCR 0,2 mLVWR490003-692
Pompa peristalticaGilsonF155005
Soluzione salina tamponata con fosfato (PBS) 10xThermo Fisher Scientific 70011044
Phusion Hot Start II DNA polimerasi ad alta fedeltàThermo Fisher ScientificF549L
Latte in polvereSunny Select
ProLong Gold Antifade MountantThermo Fisher ScientificP36934
QIAquick PCR Purification KitQIAGEN28106
rCutSmart TamponeNEBB6004STampone per digesto di restrizione con PacI, AscI e XmaI
Enzima di restrizione: AscINEBR0558L
Enzima di restrizione: PacINEBR0547L
Enzima di restrizione: XmaINEBR0180L
Terreno di crescita SOCNEBB0920STerreno di recupero dopo la trasformazione
Saccarosio ( Senza RNasi/DNasi)Millipore Sigma033522.5KG
tampone TAEApex20-194
Tubo di trasferimentoGilsonF1179941Per pompa peristaltica
Triton X100Sigma-AldrichX100-100ML
Wizard Plus SV Minipreps Sistema di purificazione del DNAThermo Fisher ScientificA1460Mini kit di preparazione del plasmide
22431048

Riferimenti

  1. Pennacchio, L. A., et al. In vivo enhancer analysis of human conserved non-coding sequences. Nature. 444 (7118), 499-502 (2006).
  2. Nord, A. S., et al. Rapid and pervasive changes in genome-wide enhancer usage during mammalian development. Cell.

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Ristampe e permessi

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