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Articolo metodologico

Targeting del tratto corticospinale nei ratti neonatali con un vettore doppio virale utilizzando la chirurgia combinata del cervello e della colonna vertebrale

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DOI:

10.3791/62698

30 giugno 2021

In questo articolo

Sommario

Questo protocollo dimostra un nuovo metodo per applicare terapie geniche a sottopopolazioni di cellule in ratti neonatali in età postnatale 5-10 giorni iniettando un modificatore chemiogenetico anterogrado nella corteccia somatomotoria e una Cre ricombinasi retrogradamente trasportabile nel midollo spinale cervicale.

Abstract

Affrontare con successo gli ostacoli che limitano la ricerca sui ratti neonatali è importante per studiare le differenze nei risultati osservati nelle lesioni del midollo spinale pediatrico (SCI) rispetto alle SCI adulte. Inoltre, l'introduzione affidabile di terapie nelle cellule bersaglio del sistema nervoso centrale (SNC) può essere difficile e le imprecisioni possono compromettere l'efficacia dello studio o della terapia. Questo protocollo combina la tecnologia dei vettori virali con una nuova tecnica chirurgica per introdurre accuratamente le terapie geniche nei ratti neonatali al giorno 5 postnatale. Qui, un virus progettato per il trasporto retrogrado (retroAAV2) di Cre viene introdotto ai terminali assoni dei neuroni corticospinali nel midollo spinale, dove viene successivamente trasportato ai corpi cellulari. Un recettore designer a doppio floxed orientamento-invertito (DIO) attivato esclusivamente dal virus dei farmaci designer (DREADD) viene quindi iniettato nella corteccia somatomotoria del cervello. Questa tecnica di doppia infezione promuove l'espressione dei DREADD solo nei neuroni del tratto corticospinale co-infetti (CST). Pertanto, la co-iniezione simultanea della corteccia somatomotoria e dei terminali CST cervicali è un metodo valido per studiare la modulazione chemiogenetica del recupero seguendo modelli di SCI cervicale nei ratti neonatali.

Introduzione

Mentre la SCI è un evento relativamente raro nella popolazione pediatrica, è particolarmente traumatica e causa una disabilità permanente che richiede un'immensa lungimiranza logistica. Inoltre, una percentuale maggiore di SCI pediatrici è classificata come cervicale e completa rispetto alla popolazione adulta 1,2. Un segno distintivo tra le specie di mammiferi è che i neonati guariscono notevolmente meglio dalla SCI rispetto agli adulti, e questo offre l'opportunità di valutare i meccanismi trainanti per il recupero nelle popolazioni più giovani 3,4,5....

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Protocollo

Tutte le seguenti procedure chirurgiche e di cura degli animali sono state approvate dal Comitato per la cura e l'uso degli animali della Temple University. Il protocollo descritto è un intervento chirurgico di sopravvivenza e gli animali sono stati infine eutanasizzati, mediante iniezione intraperitoneale di 100 mg/kg di pentobarbital di sodio al completamento dei loro punti temporali.

1. Preparazione pre-chirurgica

  1. Preparare almeno due aghi di vetro tirati per l'iniezione virale utilizzando pipette capillari di vetro da 3,5 nL; un ago per il DREADD e un ago per il rCre. Come misura precauzionale, preparare 4-5 aghi nel caso in c....

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Risultati

Il successo dell'iniezione e del trasporto del vettore virale dovrebbe comportare la trasduzione dei neuroni unilaterali nel midollo spinale e nella corteccia motoria. La Figura 4 mostra l'etichettatura dei neuroni CST di strato V nella corteccia motoria di una sezione coronale cerebrale che esprime Cre-dipendente-DREADDs-mCherry co-iniettato con un'iniezione controlaterale della colonna vertebrale di rCre. Le sezioni erano colorate con l'anticorpo dsRed.

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Discussione

La modulazione genetica inducibile dell'attività cerebrale con modificatori chemiogenetici iniettabili è un potente strumento per studiare i vari meccanismi che sono alla base del recupero dalla SCI. L'accuratezza del targeting per i recettori inducibili accoppiati a proteine G (DREADD) è ulteriormente aumentata se si considera che il tracciamento della fluorescenza convalida la precisione anatomica in istologia. Questo articolo discute un metodo affidabile per esplorare se l'inibizione o la stimolazione di percorsi neur.......

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Ringraziamenti

Questo lavoro è stato finanziato da una borsa di studio di Shriners Hospitals for Children SHC-84706.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Lame per bisturi #11RobozRS-9801-11Da utilizzare con il bisturi.
#10 Lame per bisturiRobozRS-9801-10Da utilizzare con il bisturi.
Siringhe da 1 ml Becton, Dickinson and CompanyPer l'iniezione di anestesia SC e il bolo fluido
Sutura in seta 4.0Ethicon771-683GPer la chiusura della pelle
Sutura cromica in catgut 4.0DemeTECHNN374-16Per rilegare il muscolo durante la chiusura.
48000 Smussatrice per micropipetteWorld Precision Instruments32416Utilizzato per smussare le punte dei tubi capillari di vetro tirati per formare aghi di vetro funzionali.
Soluzione di iodio al 5%Purdue Products L.P.L01020-08Per l'uso nella sterilizzazione del sito chirurgico.
70% EtanoloN/AN/APer la sterilizzazione di aghi di vetro appena preparati, modelli animali durante la preparazione chirurgica
Ketamina (Ketaset)Zoetis240048Per mantenere l'animale nel corretto piano di coscienza durante l'intervento chirurgico.
Sterilizzatore di perlineCellPoint5-1450Per sterilizzare a caldo gli strumenti chirurgici.
Bilancia digitaleOkausREV.005Per pesare l'animale durante la preparazione chirurgica.
Attacco flessibile dell'agoWorld Precision InstrumentsMF34G-5Per la pulizia degli aghi di vetro e il caricamento di olio rosso negli aghi di vetro.
Tubi capillari in vetroWorld Precision Instruments4878Per aghi in vetro tirati - dovrebbe essere progettato per iniettori di nanolitri.
EmostaticiRobozRS-7231Per uso generale in chirurgia.
Pinze curve a punta mediaRobozRS-5136Per uso generale in chirurgia.
Micromanipolatore con scala a corsoioKanetecN/APer un puntamento preciso durante l'intervento chirurgico.
MicroforbiciRobozRS-5621Per tagliare i fili di vetro dai tubi capillari di vetro appena tirati.
Strumento stereotassico standard da laboratorioStoelting51600Per tenere in posizione il supporto sterotassico neonatale
da laboratorio con mouse e Adattatore per neonati51615Per la fissazione del cranio neonatale durante la chirurgia cranica e le
Microscopio con luce e scala a corsoio OculareLeitz WetzlarN/AUtilizzato per visualizzare e misurare la smussatura dei tubi capillari di vetro tirati in aghi di vetro funzionali.
Controller per pompe a microsiringaWorld Precision Instruments62403Per controllare la velocità di iniezione.
Iniettore della testa della pompa Nanoliter 2000World Precision Instruments500150Per caricare e iniettare virus in modo controllato.
Estrattore per aghiNarishigePC-100Per riscaldare e separare i tubi capillari di vetro per formare aghi di vetro.
pAAV-CMV-scCreWu lab Cre
plasmide pAAV-hSyn-DIO-hM3Dq-mCherry (plasmide #44361)Bryan Roth' s laboratorio attraverso AddgeneDREADD plasmide
ParafilmBemisPM-996Per assistere con il caricamento del virus nel nanoiniettore.
Aghi PrecisionGlide (25G x 5/8)Becton, Dickinson and Company305122Da utilizzare con le siringhe da 1 ml e 10 ml per consentire l'iniezione del modello animale.
Pinze per denti di rattoRobozRS-5152Per la presa di processi spinosi.
Red OilN/AN/APer fornire un fronte per la visualizzazione del virus che entra nel tessuto durante l'iniezione.
DivaricatoriRobozRS-6510Per tenere aperta la ferita chirurgica.
RongeursRobozRS-8300Per rimuovere il muscolo dalla colonna vertebrale durante l'intervento chirurgico.
Manico a lama di bisturiRobozRS-9843Per affettare la pelle aperta e il cuscinetto adiposo di un modello animale durante l'intervento chirurgico.
ForbiciRobozRS-5980Per uso generale in chirurgia.
Pinze per la rimozione delle graffetteKent ScientificINS750347Per rimuovere le graffette, se applicate in modo errato.
Panno sterilePhenix Research ProductsBP-989Per fornire una superficie sterile per l'operazione.
Applicatori sterili con punta in cotonePuritan806-WCPer assorbire il sangue nella ferita chirurgica mantenendo la sterilità.
Garza SterileCovidien2146Per pulire l'area chirurgica e gli strumenti chirurgici mantenendo la sterilità.
Soluzione salina sterileBaxter Healthcare Corporation281324Per l'uso nella pulizia del sangue e per la sostituzione dei liquidi dopo l'intervento chirurgico.
Guanti chirurgiciN/AN/APer l'uso da parte del chirurgo per mantenere il campo sterile durante l'intervento chirurgico.
Cuscinetto riscaldante chirurgicoN/AN/APer mantenere la temperatura corporea del modello animale durante l'intervento chirurgico.
Microscopio operatorioN/AN/APer una migliore visualizzazione della ferita chirurgica.
Suturatrice chirurgicaKent ScientificINS750546Per applicare le graffette.
Cuscinetto riscaldante a convezione d'acquaBaxter Healthcare CorporationL1K018Per l'uso nell'area di recupero post-operatoria per mantenere la temperatura corporea dell'animale incosciente.
Ganci ponderatiN/AN/APer tenere aperta la ferita chirurgica.
Bendaggio liquidoNewSkin985838Da applicare lungo le suture dopo l'intervento chirurgico e favorire la guarigione delle ferite
Lampada a gabbia metallicaZooMedLF10ECPer aiutare gli animali a riprendersi dall'anestesia e a mantenere la temperatura corporea calda in modo naturale
309659 Standard iniezioni spinali

Riferimenti

  1. Parent, S., Mac-Thiong, J., Roy-Beaudry, M., Sosa, J. F., Labelle, H. Spinal cord injury in the pediatric population: A systematic review of the literature. Journal of Neurotrauma. 28 (8), 1515-1524 (2011).
  2. Vitale, M. G., Goss, J. M., Matsumoto, H., Roye, D. P.

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Ristampe e permessi

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Chirurgia su ratto neonatalelesione del midollo spinalemodulazione chemogeneticaveicolazione virale retrogradainiezione stereotassicaCre ricombinasiespressione di DREADDiniezione nel midollo spinale