Articolo metodologico

Robusta differenziazione delle iPSC umane in una popolazione pura di adipociti per studiare i disturbi associati agli adipociti

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DOI:

10.3791/63311

9 febbraio 2022

In questo articolo

Sommario

Il protocollo consente la generazione di una popolazione di adipociti puri da cellule staminali pluripotenti indotte (iPSC). L'acido retinoico viene utilizzato per differenziare le iPSC in cellule staminali mesenchimali (MSC) utilizzate per la produzione di adipociti. Quindi, viene utilizzato un approccio di selezione basato sulla colorazione rossa del Nilo per ottenere adipociti puri.

Abstract

I recenti progressi nella tecnologia delle cellule staminali pluripotenti indotte (iPSC) hanno permesso la generazione di diversi tipi di cellule, compresi gli adipociti. Tuttavia, gli attuali metodi di differenziazione hanno una bassa efficienza e non producono una popolazione omogenea di adipociti. Qui, eludiamo questo problema utilizzando un metodo basato sul retinoico completamente trans per produrre cellule staminali mesenchimali (MSC) ad alto rendimento. Regolando i percorsi che regolano la proliferazione, la sopravvivenza e l'adesione cellulare, la nostra strategia di differenziazione consente la generazione efficiente di corpi embrionali (EB) che si differenziano in una popolazione pura di MSC multipotenti. L'elevato numero di MSC generate da questo metodo fornisce una fonte ideale per la generazione di adipociti. Tuttavia, l'eterogeneità del campione derivante dalla differenziazione degli adipociti rimane una sfida. Pertanto, abbiamo utilizzato un metodo a base di rosso del Nilo per purificare gli adipociti maturi portatori di lipidi utilizzando FACS. Questa strategia di selezione ci ha permesso di stabilire un modo affidabile per modellare i disordini metabolici associati agli adipociti utilizzando un pool di adipociti con ridotta eterogeneità del campione e funzionalità cellulare migliorata.

Introduzione

Le cellule staminali mesenchimali (MSC) agiscono come un'efficace risorsa transitoria per la produzione di cellule di origine mesodermica come adipociti, osteociti e condrociti, che potrebbero essere ulteriormente utilizzate per modellare le rispettive malattie genetiche. Tuttavia, gli approcci precedenti si basavano sul raggiungimento di queste MSC da tessuti adulti 1, il che imponeva la sfida di ottenerle in numero elevato dai donatori e la limitazione di mantenerle funzionalmente vitali in condizioni di coltura in vitro non ottimali 1,2. Questi ostacoli hanno prodotto una gr....

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Protocollo

Lo studio è stato approvato dal comitato etico di ricerca istituzionale competente ed eseguito seguendo gli standard etici stabiliti nella Dichiarazione di Helsinki del 1964 e nei suoi successivi emendamenti o standard etici comparabili. Il protocollo è stato approvato dall'Institutional Review Board (IRB) di HMC (n. 16260/16) e QBRI (n. 2016-003). Questo lavoro è ottimizzato anche per hESC come H1 e H9. I campioni di sangue sono stati ottenuti da individui sani con pieno consenso informato. Le iPSC sono generate da cellule mononucleate del sangue periferico (PBMC) di individui sani.

1. Coltura e mantenimento delle iPSC

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Risultati

Schema e morfologia delle cellule durante il differenziamento mesenchimale: La differenziazione delle iPSC in MSC coinvolge varie fasi di sviluppo che vanno dalla formazione di EB, alla differenziazione delle MSC e all'espansione delle MSC (Figura 1). Durante queste fasi di sviluppo, le cellule acquisiscono morfologia diversa a causa delle diverse sostanze chimiche stimolatorie a cui sono sottoposte. All'inizio della differenziazione, le celle sono placcate in sospensione e ci si aspetta che.......

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Discussione

Questo protocollo riveste un'importanza fondamentale grazie alla sua capacità di fornire MSC in termini di rendimento ed efficienza elevati. Questa produzione su larga scala di MSC è stata resa possibile dall'incubazione transitoria di EB derivate da iPSCs con 10 μM di RA14,15. Il trattamento transitorio con 10 μM di RA ha aumentato la resa MSC da 11,2 a 1542 volte14,15, con questo protocollo applicabile .......

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Dichiarazioni

Gli autori dichiarano di non avere interessi concorrenti.

Ringraziamenti

Questo lavoro è stato finanziato da una sovvenzione del Qatar National Research Fund (QNRF) (Grant No. NPRP10-1221-160041). Maryam Aghadi è stata sostenuta dalla borsa di studio GSRA del Qatar National Research Fund (QNRF).

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
AdiponectinaAbcamab22554Marker di maturazione degli adipociti
anti-CD105BD Pharmingen560839Marker di differenziazione MSC
anti-CD14BD Pharmingen561712Marcatore di differenziazione MSC
anti-CD19BD Pharmingen555415Marker di differenziazione MSC
anti-CD34BD Pharmingen555824Marcatore di differenziazione MSC
anti-CD44abcamab93758Marcatore di differenziazione MSC
anti-CD45BD Pharmingen
560975
Marcatore di differenziazione MSC
anti-CD73BD Pharmingen550256Marcatore di differenziazione MSC
anti-CD90BD Pharmingen555596Marcatore di differenziazione MSC
bFGFR& D233-FPIntegratore di terreni di coltura MSC
C/EBPAAbcamab40761Marcatore di maturazione degli adipociti
DesametasoneTorics1126Integratore di terreni di differenziazione degli adipociti
FABP4Abcamab93945Marcatore di maturazione degli adipociti
Siero fetale bovinoThermoFisher10082147Integratore di terreni di coltura MSC
GlutamaxThermoFisher35050-061Integratore per terreni di coltura MSC
IBMXSigma AldrichI5879Integratore per terreni di differenziazione degli adipociti
IndometacinaSigma AldrichI7378Integratore per terreni di differenziazione degli adipociti
InsulinaSigma Aldrich91077CIntegratore per terreni di differenziazione degli adipociti
Knockout DMEMThermoFisher12660012Terreni basali per la preparazione di matrigel
DMEM a basso contenuto di glucosioThermoFisher11885084Terreni di coltura MSC
MatrigelCorning354230Matrice di rivestimento
MEM-alfaThermoFisher12561056Terreni di differenziazione degli adipociti
NileredSigmaAldrich 19123Marcatore di selezione per adipociti
PenicillinaThermoFisher15140122Integratore di terreni MSC/Adipocyte
Soluzione salina tamponata con fosfatoThermoFisher14190144tampone
di lavaggio Pierce™ 20X TBS BufferThermo Fisher28358tampone di lavaggio
PPARGTecnologia di segnalazione cellulare2443Marcatore di maturazione degli adipociti
ReLeSRStem Cell Tecnologie5872Reagente di dissociazione
Acido retinoicoSigma AldrichR2625Integratore di terreni di differenziazione MSC
Inibitore delle rocceTocris1254/10Integratore di terreni di coltura hPSC
RoziglitazoneSigma AldrichR2408Integratore di terreni di differenziazione degli adipociti
StemFlexThermoFisherA334901hPSC terreni di coltura
TritonThermo Fisher28314Reagente di permebealizzazione
TripsinaThermoFisher25200072Reagente di dissociazione
Tween 20Sigma AldrichP7942Tampone di lavaggio

Riferimenti

  1. Hass, R., Kasper, C., Bohm, S., Jacobs, R. Different populations and sources of human mesenchymal stem cells (MSC): A comparison of adult and neonatal tissue-derived MSC. Cell Communication and Signaling: CCS. 9, 12(2011).
  2. Wagner, W., et al.

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Differenziazione di iPSC umanecellule staminali mesenchimalidifferenziate in adipocitismistamento con Nile Redpopolazione pura di adipociticorpi embrionalismistamento FACSmarker di maturazione degli adipocitiadipociti contenenti lipidi

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