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Articolo metodologico

In vivo Imaging di tessuti biologici con fluorescenza combinata a due fotoni e microscopia a dispersione Raman stimolata

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DOI:

10.3791/63411

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20 dicembre 2021

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In questo articolo

Sommario

La microscopia A scattering Raman stimolato (SRS) consente l'imaging senza etichette di biomolecole in base alla loro vibrazione intrinseca di specifici legami chimici. In questo protocollo, viene descritta la configurazione strumentale di un microscopio integrato SRS e fluorescenza a due fotoni per visualizzare le strutture cellulari nel midollo spinale di topi vivi.

Abstract

La microscopia a diffusione Raman stimolata (SRS) consente l'imaging senza etichette dei tessuti biologici nel suo microambiente naturale basato sulla vibrazione molecolare intrinseca, fornendo così uno strumento perfetto per lo studio in vivo dei processi biologici a risoluzione subcellulare. Integrando l'imaging a fluorescenza eccitata a due fotoni (TPEF) nel microscopio SRS, l'imaging dual-modal in vivo dei tessuti può acquisire informazioni biochimiche e biofisiche critiche da più prospettive che aiutano a comprendere i processi dinamici coinvolti nel metabolismo cellulare, nella risposta immunitaria e nel rimodellamento dei tessuti, ecc. In questo protocollo video, viene introdotta la configurazione di un sistema di microscopio TPEF-SRS e il metodo di imaging in vivo del midollo spinale animale. Il midollo spinale, come parte del sistema nervoso centrale, svolge un ruolo fondamentale nella comunicazione tra il cervello e il sistema nervoso periferico. La guaina mielinica, abbondante nei fosfolipidi, circonda e isola l'assone per consentire la conduzione saltatoria dei potenziali d'azione. L'imaging in vivo delle guaine mieliniche nel midollo spinale è importante per studiare la progressione delle malattie neurodegenerative e delle lesioni del midollo spinale. Il protocollo descrive anche la preparazione animale e i metodi di imaging TPEF-SRS in vivo per acquisire immagini biologiche ad alta risoluzione.

Introduzione

La microscopia Raman1,2 sta emergendo come un potente metodo senza etichetta per l'immagine di tessuti biologici basati sulle frequenze caratteristiche di vari legami chimici nelle biomolecole. Grazie alla sua capacità di imaging non invasiva e ben adattativa, la microscopia Raman è stata ampiamente utilizzata per l'imaging di componenti arricchiti di lipidi nei tessuti biologici come la guaina mielinica3,4,5, gli adipociti6,7 e le goccioline lipidiche8,9,10<....

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Protocollo

Tutte le procedure animali eseguite in questo lavoro sono condotte secondo le linee guida del Laboratory Animal Facility della Hong Kong University of Science and Technology (HKUST) e sono state approvate dal Comitato etico animale di HKUST. La formazione sulla sicurezza per la manipolazione laser è necessaria per configurare e utilizzare il microscopio TPEF-SRS. Indossare sempre occhiali di sicurezza laser con un intervallo di lunghezze d'onda appropriato quando si ha a che fare con il laser.

1. Configurazione del microscopio TPEF-SRS (per lo schema di configurazione vedere la Figura 1)<....

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Risultati

L'imaging dual-modale in vivo degli assoni spinali e delle guaine mieliniche viene condotto utilizzando i topi transgenici Thy1-YFPH, che esprimono EYFP nei neuroni afferenti del ganglio della radice dorsale (Figura 3). Questi neuroni afferenti etichettati trasmettono le informazioni sensoriali dal nervo periferico al midollo spinale, con il ramo centrale situato nella colonna dorsale del midollo spinale. Con il microscopio TPEF-SRS, la guaina mielinica densamente distribuita può es.......

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Discussione

In questo protocollo, la configurazione di base del microscopio TPEF-SRS è descritta in dettaglio. Per l'imaging SRS, la pompa e i fasci di Stokes sono sovrapposti temporalmente e spazialmente all'interno dell'OPO. Tuttavia, questa sovrapposizione può essere interrotta dopo aver attraversato il sistema del microscopio. Pertanto, l'ottimizzazione spaziale e temporale della colocalizzazione della pompa e dei fasci di Stokes è necessaria e fondamentale per ottenere un'imaging SRS ottimale. Il ritardo temporale tra la pompa .......

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla da rivelare e non hanno interessi finanziari concorrenti.

Ringraziamenti

Questo lavoro è stato sostenuto dall'Hong Kong Research Grants Council attraverso sovvenzioni 16103215, 16148816, 16102518, 16102920, T13-607/12R, T13-706/11-1, T13-605/18W, C6002-17GF, C6001-19E, N_HKUST603/19, la Commissione per l'innovazione e la tecnologia (ITCPD/17-9), l'Area of Excellence Scheme del Comitato per le sovvenzioni universitarie (AoE/M-604/16, AOE/M-09/12) e l'Università della scienza e della tecnologia di Hong Kong (HKUST) attraverso la sovvenzione RPC10EG33.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
#2 PinzeDumont11223-20Per laminectomia
10X obiettivoNikonCFI Plan Apo Lambda 10X
25X obiettivoOlympusXLPLN25XSVMP2
Burn cremaBetadine
FotocameraSonyα 6300
Amplificatore di correnteStanford researchSR570
Moduli fotomoltiplicatori di correnteHamamatsuH11461-01
D2 665 nm specchio dicroico passa-lungoSemrockFF665-Di02-25x36Per dirigere il segnale di epifluorescenza al modulo di rilevamento
D3 700 nm specchio dicroico passa-cortoEdmund69-206Per separare SRS da Percorso di rilevamento TPEF
Crema depilanteVeet
FS1 975 nm filtro passa-cortoEdmund86-108Per il blocco del fascio di colpi
FS1 Filtro passa-bandaSemrockFF01-850/310Per il blocco del fascio di colpi
Fs2 Filtro passa-bandaSemrockFF01-525/50Per la selezione del segnale YFP
Fs2 Filtro passa-cortoSemrockFF01-715/SP-25Per bloccare il raggio laser di eccitazione fs
Piastra a semiondaThorlabsSAHWP05M-1700
Fotorivelatore ad alta velocitàMenloSystemsFPD 310-FPer il controllo della modulazione del fascio di Stokes
IodioBetadine
IR ScopeFJWFIND-R-SCOPE Visualizzatore a infrarossi 2X Kit Modello 84499C2X
IrisThorlabsCPA1
L1ThorlabsAC254-060-B-ML
L10ThorlabsLA4052-A
L2ThorlabsLA1422-B
L3ThorlabsAC254-050-B
L4ThorlabsAC254-060-B-ML
L7f=100 mm, rivestimento AB
L8ThorlabsLA4874-A
L9ThorlabsAC254-035-B-ML
Amplificatore lock-inAPE
SpecchioThorlabsPF10-03-P01
Flipper motorizzatoThorlabsMFF101/M
scheda di acquisizione multifunzioneInstrumentPCIe-6363
OscilloscopioTektronixTDS2012C
FotodiodoAPEPer il rilevamento del segnale SRS
Sorgente laser a picosecondiAPEpicoEmerald
Divisore di fascio polarizzatoreThorlabsCCM1-PBS252/M
Misuratore di potenzaNewport843-R
SalineBraun
Scan lens L5ThorlabsSL50-CLS2
Specchio di scansioneCambridge Technology6215H
Gel di siliconeWorld Precision Inc.KWIK-SIL
Ti: laser fs zaffiroCoherentChameleon Ultra II
Lente del tubo L6ThorlabsTTL200-S8
National

Riferimenti

  1. Raman, C. V., Krishnan, K. S. The optical analogue of the compton effect. Nature. 121 (3053), 711(1928).
  2. Turrell, G., Corset, J. Raman Microscopy: Developments and Applications. , Academic Press. (1996).
  3. Tian, F., et al.

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Ristampe e permessi

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