Analisi quantitativa delle proprietà viscoelastiche dei globuli rossi mediante pinzetta ottica e microscopia di defocalizzazione

Sommario

Qui viene descritto un protocollo integrato basato su pinzette ottiche e microscopia di defocalizzazione per misurare le proprietà reologiche delle cellule. Questo protocollo ha ampia applicabilità nello studio delle proprietà viscoelastiche degli eritrociti in condizioni fisio-patologiche variabili.

Abstract

Le proprietà viscoelastiche degli eritrociti sono state studiate con una serie di tecniche. Tuttavia, i dati sperimentali riportati variano. Ciò non è solo attribuito alla normale variabilità delle cellule, ma anche alle differenze nei metodi e nei modelli di risposta cellulare. Qui, un protocollo integrato che utilizza pinzette ottiche e microscopia di defocalizzazione viene impiegato per ottenere le caratteristiche reologiche dei globuli rossi nella gamma di frequenza da 1 Hz a 35 Hz. Mentre le pinzette ottiche sono utilizzate per misurare la costante elastica del complesso eritrocitario, la microscopia di defocalizzazione è in grado di ottenere il profilo di altezza della cella, il volume e il suo fattore di forma un parametro che consente la conversione della costante elastica complessa in modulo di taglio complesso. Inoltre, applicando un modello di reologia vetrosa morbida, è possibile ottenere l'esponente di scala per entrambi i moduli. La metodologia sviluppata permette di esplorare il comportamento meccanico dei globuli rossi, caratterizzandone i parametri viscoelastici, ottenuti in condizioni sperimentali ben definite, per diverse condizioni fisiologiche e patologiche.

Introduzione

I globuli rossi maturi (RBC), noti anche come eritrociti, sono in grado di estendersi più del doppio delle loro dimensioni quando passano attraverso i capillari più stretti del corpo umano¹. Tale capacità è attribuita alla loro capacità unica di deformarsi quando sottoposta a carichi esterni.

Negli ultimi anni, diversi studi hanno caratterizzato questa caratteristica nelle superfici RBC ^2,3. L'area della fisica che descrive le risposte elastiche e viscose dei materiali dovute a carichi esterni è chiamata reologia. In generale, quando viene applicata una forza esterna, la deformazione risultante dipende dalle proprietà del materiale e può essere suddivisa in deformazioni elastiche, che immagazzinano energia, o deformazioni viscose, che dissipano energia⁴. Tutte le cellule, compresi i globuli rossi, mostrano un comportamento viscoelastico; In altre parole, l'energia viene immagazzinata e dissipata. La risposta viscoelastica di una cellula può quindi essere caratterizzata dal suo modulo di taglio complesso G*(ω) = G'(ω) + iG"(ω), dove G' (ω) è il modulo di accumulo, correlato al comportamento elastico, e G" (ω) è il modulo di perdita, correlato alla sua viscosità⁴. Inoltre, sono stati utilizzati modelli fenomenologici per descrivere le risposte cellulari, uno dei più utilizzati è chiamato il modello 5 di reologia vetrosa morbida^{, caratterizzato} da una dipendenza dalla legge di potenza del modulo di taglio complesso con la frequenza di carico.

Sono stati impiegati metodi basati su singole cellule per caratterizzare le proprietà viscoelastiche dei globuli rossi, applicando forza e misurando lo spostamento in funzione del carico imposto ^2,3. Tuttavia, per il complesso modulo di taglio, pochi risultati possono essere trovati in letteratura. Utilizzando la diffusione dinamica della luce, sono stati riportati valori per i moduli di stoccaggio e perdita di RBC variabili da 0,01-1 Pa, nella gamma di frequenza 1-100 Hz⁶. Utilizzando la citometria a torsione magnetica ottica, è stato ottenuto un modulo elastico complesso apparente⁷ e, a scopo di confronto, è stato affermato un fattore moltiplicativo per chiarire eventualmente le discrepanze.

Più recentemente, è stata stabilita una nuova metodologia basata su pinzette ottiche (OT) insieme alla microscopia di defocalizzazione (DM), come strumento integrato per mappare quantitativamente l'immagazzinamento e la perdita dei moduli di taglio degli eritrociti umani su carichi dipendenti dal tempo ^8,9. Inoltre, è stato utilizzato un modello reologico vetroso morbido per adattarsi ai risultati e ottenere un coefficiente di legge di potenza che caratterizza i globuli rossi ^8,9.

Nel complesso, la metodologia sviluppata^8,9, il cui protocollo è descritto in dettaglio di seguito, chiarisce le precedenti discrepanze utilizzando i valori misurati per il fattore di forma, F_f^, che mette in relazione forze e deformazioni con sollecitazioni e deformazioni nella superficie dei globuli rossi e può essere utilizzato come nuovo metodo diagnostico in grado di determinare quantitativamente i parametri viscoelastici e le caratteristiche vetrose morbide dei globuli rossi ottenuti da individui con sangue diverso Patologie. Tale caratterizzazione, utilizzando il protocollo descritto di seguito, può aprire nuove possibilità per comprendere il comportamento dei globuli rossi da una prospettiva meccanobiologica.

Protocollo

I campioni di sangue umano sono stati forniti da volontari adulti uomini e donne secondo i protocolli approvati dal Comitato Etico di Ricerca dell'Università Federale di Rio de Janeiro (Protocollo 2.889.952) e registrati nella piattaforma brasiliana con il numero CAAE 88140418.5.0000.5699. Una forma scritta di consenso è stata rilasciata e raccolta da tutti i volontari. Sono stati esclusi quelli con emoglobinopatia e/o assunzione di farmaci controllati. L'intero processo ha seguito le linee guida approvate dal comitato etico dell'istituto.

1. Preparazione dei portacampioni

1. Acquistare due coprivetrini (24 mm x 60 mm e 24 mm x 32 mm; spessore = 0,13-0,17 mm) e un anello di gomma (diametro = 10 mm; spessore = 2 mm) per ciascun portacampioni.
2. Versare grasso siliconico sulla superficie dell'anello di gomma in modo da coprire l'intero perimetro.
3. Posizionare l'anello di gomma sul coperchio con il lato grasso rivolto verso il coperchio. Attendere 5 minuti per il corretto fissaggio, i portacampioni sono quindi pronti a ricevere la coltura cellulare.
   NOTA: Inoltre, è possibile utilizzare anche piatti con fondo di vetro commerciali o fatti in casa, come descritto in precedenza¹⁰.

2. Coltura cellulare

NOTA: I passaggi seguenti descrivono come ottenere globuli rossi sani dal sangue umano. È importante che i campioni siano preparati al momento prima di ogni esperimento.

1. Diluire 20 μL di sangue in 250 μL di soluzione salina tampone fosfato (PBS) contenente 137 mM NaCl, 2,7 mM KCl, 10 mM Na 2 HPO 4, 1,8 mM KH₂PO₄, 10 mM glucosio e integrato con 1 mg/mldi albumina sierica bovina (BSA).
2. Dopo centrifugazione a 200 x g per 2 minuti a temperatura ambiente, aspirare il surnatante con una pipetta e risospendere il pellet cellulare in 1 ml di 1x soluzione PBS/BSA. Lavare le celle 2 volte nel buffer.
3. Calcolare la densità cellulare utilizzando un emocitometro e seminare da 50.000 a 100.000 cellule nel portacampioni preparato nella fase 1. Attendere 10-15 minuti per il fissaggio non specifico della cella al coprifoglio; Il tempo di attesa non influisce sulle celle.
4. Aggiungere al campione 0,2 μL di una soluzione di sfere di polistirene al 10% v/v (raggio = 1,52 ± 0,02 μm) per ulteriori esperimenti OT. Confermare la corretta miscelazione osservando i campioni al microscopio.
5. Dopo la semina delle celle, basta posizionare il secondo coprivetrino sopra l'anello di gomma (non è necessario aggiungere grasso per il fissaggio), chiudere la configurazione e terminare la preparazione del campione. I campioni sono pronti per l'analisi e la manipolazione al microscopio.

3. Configurazione del microscopio a pinzetta ottica

NOTA: OT sono strumenti che utilizzano un raggio laser altamente focalizzato per intrappolare oggetti microscopici e misurare le forze nella gamma di piconewton e gli spostamenti su scala nanometrica. Il laser OT utilizzato (lunghezza d'onda 1064 nm) deve essere opportunamente allineato, come descritto in precedenza¹⁰.

1. In breve, utilizzando almeno due specchi separati da una distanza di pochi centimetri (almeno 10-20 cm), dirigere un raggio laser polarizzato linearmente verso l'ingresso posteriore di un microscopio invertito. Allineare con precisione il raggio laser per entrare nel microscopio in linea retta (Figura 1).
2. Quindi, riflettere il raggio laser utilizzando uno specchio dicroico, installato nel microscopio, per procedere parallelamente all'asse della lente dell'obiettivo ed entrare nella lente vicino al centro del suo ingresso posteriore. Questo focalizzerà il laser per creare la trappola ottica (Figura 1).
3. Successivamente, per misurare le forze con OT, calibrare il sistema per ottenere la rigidità della trappola (κ_OT). Vedere¹⁰ per una descrizione più dettagliata della procedura di calibrazione OT. Una volta trovato κ OT, il sistema _OT è pronto per gli esperimenti di reologia.

4. Configurazione DM

NOTA: DM è una tecnica di microscopia ottica basata su campo chiaro che consente agli oggetti trasparenti di diventare visibili se il microscopio è leggermente sfocato^11,12. Tale tecnica è stata applicata per ottenere la forma RBC¹³. Lo stesso microscopio impiegato per il sistema OT può essere utilizzato per il DM, per ottenere un profilo di altezza attraverso ricostruzioni 3D.

1. Regolare il sistema di illuminazione del microscopio eseguendo l'illuminazione Köhler¹⁴ e, per una migliore risoluzione, aprire completamente il condensatore-diaframma per eseguire gli esperimenti.
2. Utilizzare un sistema di posizionamento piezoelettrico per spostare il campione in tutte le coordinate, con precisione nanometrica sull'asse z. Eseguire l'autocalibrazione del sistema piezoelettrico su tutti gli assi. Una volta eseguite tutte le procedure, il sistema di microscopio è pronto per gli esperimenti DM.

5. Esperimento e analisi reologica basata su OT

NOTA: L'esperimento di reologia consiste nell'osservare le risposte della cellula a piccole oscillazioni di frequenze variabili.

1. Sperimentazione
   1. Utilizzando il sistema OT, intrappolare la sfera con il laser OT e quindi collegarla a un RBC premendo la sfera contro la superficie della cella vicino alla superficie superiore e vicino al bordo della cella. Utilizzare il microscopio per questo passaggio. Quindi, intrappolare un'altra sfera e ripetere la stessa procedura di attacco, ma ora attaccarla al coprifoglio, vicino alla cella. La sfera attaccata al coprislip è il tallone di riferimento (Figura 2), che è necessario per seguire lo spostamento piezoelettrico e per confrontarlo con la sfera RBC.
   2. Assicurarsi che la cella scelta sia ben fissata al coprivetrino e che i globuli rossi e le sfere di riferimento abbiano aderito rispettivamente alla superficie dei globuli rossi e al coprifoglio, prima di iniziare la misurazione. Identificare visivamente le cellule non aderenti mentre si muoveranno nel tempo, nonostante l'alto tasso di adesione (circa l'80% -90%).
   3. Aggiungere una funzione sinusoidale di ampiezza, ξ 0 = 0,500 ± 0,001 μm e frequenze variabili di 1 Hz, 7 Hz, 14 Hz, 21 Hz, 28 Hz e 35 Hz, con rispettive frequenze angolari, ω, di 6,3 rad/s, 169 rad/s, 88 rad/s, 132 rad/s, 176 rad/s e 220 rad/s, al software dello stadio piezoelettrico, utilizzando il software piezoelettrico, come precedentemente dimostrato ^8,9.
   4. Utilizzando lo stadio piezoelettrico, premere il pulsante di avvio per consentire lo spostamento piezoelettrico e mantenere la sfera RBC nella trappola, sottoporre il campione ad un ciclo di movimenti utilizzando la funzione sinusoidale precedentemente impostata. Utilizzare una fotocamera in grado di produrre immagini a 790 fotogrammi/s o superiore per registrare il movimento del campione. Uno schema dell'esperimento è mostrato nella Figura 2.
   5. Mentre il campione è sottoposto a movimenti sinusoidali, attivare l'OT per intrappolare la sfera attaccata alla superficie RBC. Indipendentemente dalla temperatura scelta per eseguire gli esperimenti, temperatura ambiente, 37 °C o un'altra temperatura, monitorare attentamente la temperatura per evitare variazioni durante le misurazioni. Il laser a infrarossi (1064 nm) utilizzato per creare l'OT non provoca quasi nessun danno o riscaldamento delle celle.
2. Analisi
   1. Analizza le immagini ottenute durante i movimenti sinusoidali utilizzando ImageJ per trovare la posizione del centro di massa di ciascuna delle sfere nel tempo.
      NOTA: Questi dati consentono di generare grafici in grado di mostrare le differenze di fase e ampiezza tra le due sfere. Tali informazioni sono cruciali per ottenere la risposta viscoelastica dei globuli rossi.
   2. Per ottenere il centro di massa per ciascuna delle sfere, aprire il software ImageJ. Importa l'intero filmato ottenuto durante i movimenti sinusoidali.
   3. Nella scheda Immagine , fare clic su Regola, quindi selezionare Soglia. Si aprirà la finestra di soglia. Seleziona B/N. Questo renderà lo sfondo bianco e le sfere nere.
   4. Regola la soglia con entrambe le barre di scorrimento sotto l'istogramma in modo che entrambe le sfere vengano visualizzate con la quantità massima di pixel.
   5. Selezionare la sfera di riferimento facendo clic su File > Rettangolo. Disegna un rettangolo per selezionare la sfera. Dopo aver selezionato la sfera di riferimento in un'immagine, assicuratevi che il rettangolo selezioni correttamente la stessa sfera anche in tutte le altre immagini del filmato.
   6. Quindi, nella scheda Analizza , fare clic su Imposta misure e selezionare l'opzione Centro di massa .
   7. Fare nuovamente clic sulla scheda Analizza e selezionare Analizza particelle. Si aprirà una nuova finestra. Definire le dimensioni e la circolarità (a seconda del raggio della sfera). Selezionare le caselle seguenti Visualizza risultati e Cancella risultati. Infine, fai clic su OK per elaborare tutte le immagini.
   8. Apparirà una nuova finestra contenente una tabella con le coordinate xy per il centro della massa. Salvare questi valori di coordinate come file .txt. Ripetete la procedura per l'altra sfera, attaccata alla superficie RBC.
   9. Per ottenere l'ampiezza e le differenze di fase per entrambe le sfere, aprire il software di analisi. Importare i file .txt ottenuti in precedenza.
   10. Creare una nuova tabella con tre colonne. Nella prima colonna (c0) aggiungere il numero di fotogrammi, nella seconda colonna (c1) aggiungere le coordinate x per la sfera di riferimento e nella terza colonna (c2), le coordinate x per la sfera attaccata alla superficie RBC.
       NOTA: in questo esempio, poiché i movimenti sinusoidali sono stati eseguiti solo sull'asse x, è necessario utilizzare solo le coordinate x per entrambe le sfere.
   11. Quindi, correlare i fotogrammi con il tempo. Fare clic su Windows > voce Formula. Si aprirà una nuova finestra chiamata voce della formula. In questa finestra è possibile impostare otto diverse equazioni, ognuna delle quali in una chiave specifica (da F1 a F8).
   12. Selezionare F1, digitare la formula seguente:
       C 3 = C0 / (FPS fotocamera)
       Fare clic su Esegui. In questo modo verrà creata una nuova colonna per un periodo di tempo nella tabella (colonna 4).
   13. Sottrarre il valore delle coordinate x di ciascun fotogramma in base al rispettivo valore medio. A tale scopo, designare due chiavi qualsiasi sulla voce della formula e digitare le equazioni seguenti per ogni chiave:
       c 4 = (c 1 - media(c 1)) e c 5 = (c 2 - media(c2))
       Fare clic sul pulsante Esegui . I risultati verranno visualizzati nelle colonne 5 e 6 rispettivamente per le sfere di riferimento e RBC.
   14. Convertite i valori del centro di massa da pixel a micrometri. Per questo, utilizzare un'altra chiave sulla voce della formula e digitare l'equazione seguente:
       c 4 = c 4 / numero di conversione
       Ripetere lo stesso processo per la colonna 5.
       NOTA: La conversione viene acquisita utilizzando una scala/righello micrometrico e ottenendo la sua immagine con la stessa configurazione del microscopio utilizzata per le misurazioni (inclusa la stessa lente dell'obiettivo). Questa procedura può essere eseguita durante la calibrazione del microscopio. Si ottiene così una relazione pixel/micrometro.
   15. Generate un grafico con i centri di massa di entrambe le sfere sull'asse y e il tempo sull'asse x. Per questo, fai clic su Galleria > lineare e dispersione. Si aprirà una nuova finestra. Selezionate la colonna temporale per l'asse x e nell'asse y selezionate le colonne del centro di massa in micrometri sia per le sfere di riferimento che per quelle RBC.
   16. Nel grafico, selezionare solo i dati relativi alla prima frequenza angolare (6,3 rad/s). Utilizzare gli strumenti indicati nella Figura 3.
   17. Definite l'equazione che regola la curva dei dati per la sfera di riferimento. Per questo, fare clic su Curve Fit > Generale e Fit1, selezionare la casella di dati relativi alla posizione della sfera di riferimento, quindi fare clic su Definisci. Si aprirà una nuova finestra per definire l'equazione. La posizione ξ(t) della sfera di riferimento è descritta da:
       ξ(t) = ξ₀cos(ωt)
       dove ξ è il movimento sinusoidale del campione, ω è la frequenza angolare e t è il tempo in s. Trasponendo questa equazione al software di analisi, apparirà come segue:
       , dove m1 è ξ, m2 è f, m0 è il tempo t e m3 è la fase della funzione coseno per t = 0.
   18. Stimare i valori per m1, m2 e m3 dal plot. Dopo aver definito l'equazione, fare clic su OK. I dati verranno adattati in base all'equazione e una curva insieme a un piccolo quadrato apparirà nel grafico con i valori di m1, m2 e m3.
   19. Definire l'equazione che regola la curva dei dati per la sfera RBC. Per questo, fai clic su Adattamento curva > Generale e definisci l'equazione che regolerà la curva per i dati. La posizione ρ(t) della sfera RBC è data da:
       
       dove ξ' è l'ampiezza fuori fase, e φ è l'angolo fuori fase. Trasponendo questa formula al software di analisi, apparirà come segue:
       , dove m1, m2 e m3 sono i valori ottenuti nell'adattamento della curva della sfera di riferimento. m4 è ξ' e m5 è φ.
   20. Stimare i valori per m4 e m5 dal grafico. Dopo aver definito la formula, fare clic su OK. I dati verranno adattati in base all'equazione e una curva insieme a un piccolo quadrato apparirà nel grafico con i valori di m4 e m5.
   21. Quindi, create una nuova tabella per aggiungere i dati ottenuti dal raccordo della curva nelle rispettive colonne. Definite cinque colonne diverse per i seguenti parametri: frequenza angolare, ampiezza (sfera di riferimento), tempo iniziale, ampiezza (sfera RBC) e angolo fuori fase. Eseguire la stessa procedura per tutte le altre frequenze.
   22. Utilizzare le seguenti equazioni per trovare le costanti di stoccaggio (K') e di perdita (K"):
       
       
       dove κ OT è la costante elastica _OT e β è il coefficiente di resistenza di Stokes. Trasponendo le equazioni al software di analisi, apparirà come segue:
       e
       
        , dove β e κ_OT devono essere sostituiti dai valori trovati nel sistema.
   23. Tracciare i risultati su un grafico, utilizzando l'asse x per K" e l'asse y per K' (Figura 4).

6. Esperimento e analisi DM per ottenere il fattore di forma cellulare complessivo

1. Acquisizione video
   1. Spostare lo stadio piezoelettrico nella direzione xy utilizzando il software per cercare una cella isolata attaccata al coprifoglio. Intrappolare e attaccare una sfera di polistirene di diametro noto alla superficie dei globuli rossi. Utilizzando lo stadio piezoelettrico, spostare leggermente il tallone intrappolato, anch'esso attaccato alla superficie RBC, in modo da deformare la cella, quindi attaccare il tallone al coprifoglio.
      NOTA: È anche possibile utilizzare la stessa cella delle misurazioni OT.
   2. Modificate la posizione dell'asse z per trovare l'immagine a fuoco, dove il piano di messa a fuoco si trova al centro della cella scelta. Questa immagine presenta il contrasto minore con il livello di grigio al centro della cella uguale al livello di grigio all'esterno della cella (sfondo).
   3. Quando la posizione è fissa, utilizzare il software della fotocamera per creare un filmato dell'intera cella con circa 5.000 immagini a 8 bit e 256 pixel x 256 pixel, a un frame rate di 25 fps. Quindi, spostare la posizione dell'asse z di 2 μm verso il basso o verso l'alto per ottenere un'immagine sfocata per la cella scelta. Ripetete i parametri per creare un filmato per questa situazione.
   4. Infine, senza modificare la posizione dell'asse z, cercate una regione senza celle per ripetere la stessa procedura e create un filmato dello sfondo dell'immagine.
2. Acquisizione di immagini a contrasto
   1. Converti ciascuno dei tre filmati in tre immagini medie. Utilizzando ImageJ, selezionare uno dei filmati, fare clic su Image > Stacks > Z Project e scegliere l'opzione Intensità media . Ripeti questa procedura affinché gli altri filmati ottengano le rispettive immagini.
   2. Cambia tutte le immagini ottenute da 8 bit a virgola mobile a 32 bit. Utilizzando ImageJ, fare clic su Image > digitare > 32 bit. Quindi, fai clic su Analizza > Imposta misurazioni e scegli l'opzione Valore grigio medio . Infine, fai nuovamente clic su Analizza > misura.
   3. Quindi, fai clic su Process > Image Calculator e dividi l'immagine focalizzata per l'immagine di sfondo. Per ottenere questo risultato, moltiplicare il valore medio del livello di grigio dell'immagine messa a fuoco. Ottenere il valore medio facendo clic su Elabora > Matematica > Moltiplica.
   4. Per ottenere il valore medio, scegliere l'immagine messa a fuoco, quindi fare clic su Analizza > misura. Per l'immagine rappresentativa, il valore medio del livello di grigio è 69.199. Ripetere le procedure precedenti per l'immagine sfocata. In questo caso, il valore medio del livello di grigio è 69.231. La Figura 5 mostra le immagini a fuoco e sfocate prima e dopo la procedura.
   5. Le immagini possono perdere il contrasto visivo durante le operazioni. Per visualizzare meglio le immagini, fare clic su Immagine > Regola > luminosità / contrasto e selezionare l'opzione Auto .
   6. Quindi, per trovare il contrasto dell'immagine, utilizzare la seguente relazione:
      , dove N _Img è il livello di grigio della cella, N₀ è il livello di grigio esterno alla cella ed è un parametro costante corrispondente al livello di grigio per l'intensità della luce zero che dipende dalla fotocamera.
   7. Per trovare il valore B, utilizzare un misuratore di potenza per misurare l'intensità della luce. Per ogni valore di intensità luminosa, deve essere registrato un video; Pertanto, diversi valori di intensità possono essere correlati a diversi livelli di grigio. Infine, ottenere un adattamento lineare e mettere in relazione B con l'intensità luminosa zero¹⁵.
   8. Trova il valore di N₀, fai clic sull'icona Selezione poligono e disegna un poligono come quello in Figura 6. Quindi, fare clic sulla scheda Analizza e selezionare Misura per trovare il livello di grigio medio per l'area selezionata. Ogni immagine è formata da un insieme di pixel e ogni pixel ha un certo livello di grigio. L'insieme di tutti i livelli di grigio dovuti a tutti i pixel che compongono l'immagine corrisponde a N_Img.
   9. Utilizzare l'equazione di contrasto per determinare N _Img - N_o ed eseguire questa operazione selezionando Elabora > Matematica > Sottrai. Dividere il risultato per N₀ - B. Infine, trova il contrasto per l'immagine focalizzata (C 0) e sfocata (C1).
3. Ottenere il profilo di altezza
   1. Per ottenere il profilo di altezza, utilizzare il metodo¹³ già descritto. In breve, utilizzare la trasformata di Hartley (FHT) per ottenere lo spessore RBC. In ImageJ, fare clic su Elabora > FFT > Opzioni FFT, quindi scegliere FHT.
   2. Sottrarre le immagini C0 e C1 in ImageJ utilizzando Process > Math > Subtract per ottenere l'immagine per la procedura seguente, C = C0 - C1.
   3. Per l'immagine C, fare clic su Elabora > FFT > Opzioni FFT, quindi scegliere FHT per eseguire la trasformazione di Hartley dell'immagine. Quindi, dividi per la frequenza spaziale q² usando il plugin personalizzato DivideQ2. Clicca su Plugin > DivideQ2.
      Nota : il file DivideQ2.class deve essere copiato nella directory dei plugin in cui è installato ImageJ. Il plugin viene fornito come file .class (Supplementary File 1) da includere nella cartella plugin di ImageJ.
   4. Quindi, eseguire la trasformazione inversa FHT utilizzando Process > FFT > FFT per ottenere un'immagine con un livello di grigio proporzionale all'altezza della cella.
   5. Infine, fai clic su Elabora > Matematica > moltiplica per moltiplicare l'immagine risultante usando la seguente costante:
      
      che viene definito in base alle caratteristiche delle immagini, del campione e dell'impostazione sperimentale¹³. Qui, n = 1,51 è l'indice di rifrazione dell'olio, p = 0,0721 μm è la relazione tra micrometri e pixel delle immagini, Δ n = 0,058 è la differenza tra l'RBC e gli indici di rifrazione del mezzo acquoso, la distanza tra le immagini di messa a fuoco e sfocatura (Z f1 - Z_f2) = 2μm e la dimensione delle immagini, N 2 = 256 pxl².
   6. Utilizzare l'immagine risultante per ottenere il profilo di altezza (Figura 7). L'immagine risultante viene utilizzata in ImageJ per osservare diversi profili di altezza. Dipende da dove nella cella è posizionata la linea verticale gialla, ad esempio, nella Figura 7 si ottiene un profilo di altezza limitato dalla linea verticale, osservarlo premendo Ctrl + K.
4. Fattore di forma
   1. Dopo aver trovato l'immagine che contiene il profilo di altezza RBC, utilizzare il contrasto sfocato di 2 μm per creare un set di due immagini in ImageJ. Fare clic su Image > Stacks, quindi selezionare l'opzione Immagini da impilare. Per trovare il fattore di forma, utilizzare una macro personalizzata ImageJ per analizzare lo stack. La macro personalizzata ImageJ è disponibile per il download come file supplementare 2.
      Nota : il programma utilizza l'immagine di sfocatura per determinare i bordi della cella. Determina quindi il perimetro, utilizzando l'immagine che contiene il profilo di altezza, per ogni posizione orizzontale. Oltre ai bordi, determina il perimetro e l'inverso del perimetro. La somma dei valori perimetrali inversi, moltiplicati per lo spessore dei pixel, corrisponde all'inverso del fattore di forma.
   2. Inserire la relazione pixel/micrometro nel programma. Ottenere questo valore dall'esperimento di calibrazione dell'obiettivo del microscopio. Nell'esempio utilizzato, il valore è 13,87 pixel/μm.
   3. Scegliere la posizione iniziale orizzontale per inserire la linea gialla nella prima immagine della pila. Iniziare la linea prima dell'inizio della cella e disegnarla oltre i limiti verticali della cella. Nell'esempio, la linea gialla ha 153 pixel di lunghezza e la posizione iniziale è compresa tra i = 70, y1 = 80 e i = 70 e y2 = 195. Quindi, spostare la linea gialla orizzontalmente fino a quando la posizione finale è f = 245, y1 = 80 e f = 245 e y2 = 195.
   4. Infine, per trovare i bordi delle celle, il perimetro e l'inverso del perimetro, selezionare la scheda Macro e fare clic su Esegui macro. La macro fornirà una tabella con la posizione dei bordi, il perimetro e l'inverso del perimetro e un'immagine della cella analizzata. Verificare se i bordi di questa immagine sono simili ai bordi della Figura 7, altrimenti ripetere la procedura.
   5. Utilizzare la somma dell'inversa del perimetro per trovare il fattore di forma⁸.

7. Modello di reologia vetrosa morbida e analisi sperimentale

1. Organizzazione dei dati sperimentali in una tabella
   1. Creare una nuova tabella nel software di analisi facendo clic sulla scheda File . Determinare 10 colonne diverse (da c0 a c9) per i seguenti parametri: frequenze angolari utilizzate (rad/s): c0; Valori K' (pN/μm) ottenuti per ogni frequenza angolare: c1; ErrK': c2; Valori di K" (pN/μm) ottenuti per ogni frequenza angolare: c3; ErrK": c4; Valori G'(Pa) ottenuti per ogni frequenza angolare: c5; ErrG': c6; G" (Pa) valori ottenuti per ogni frequenza angolare: c7; ErrG": c8 e F_f con il rispettivo errore: c9 (Figura 8). Utilizzare la formula seguente per popolare le colonne seguenti:
      c5 = (3 x c1) / (8 x 1,28 x 0,087)
      c6 = (3 / (8 x 0,087 x 1,28)) x sqrt (c2^2 + (c1 x 0,01 / 1,28)^2 + (c1 x 0,008 / 0,087) ^ 2)
      c7 = (3 x c3) / (8 x 1,28 x 0,087)
      c8 = (3 / (8 x 0,087 x c4)) x sqrt (c4^2 + (c3 x 0,01 / 1,28)^2 + (c3 x 0,008 / 0,087)^2)
2. Tracciare la curva G' (ω) contro G" (ω)
   1. Per generare la curva G' (ω) rispetto a G" (ω) nel software di analisi, utilizzare i dati della tabella precedente. Fate clic su Galleria > Lineare (Linear) e scegliete il formato Grafico a dispersione.
   2. Si aprirà una nuova finestra. Selezionare la colonna G " come asse x e la colonna G' come asse y. Infine, fare clic sul pulsante Plot per ottenere il grafico.
   3. Per aggiungere le barre di errore nel plottaggio, fare clic sulla finestra Plot , quindi fare clic su Barre di errore > di stampa. Si aprirà una nuova finestra. Innanzitutto, contrassegna l'opzione Y Err . Si aprirà un'altra finestra, chiamata Impostazioni barra di errore .
   4. Fare clic su % di valore, selezionare Data Column, quindi fare clic sulla colonna ErrG'. Infine, fai clic su OK > Plot, appariranno le barre di errore per i valori y. Ripetere la stessa procedura per i valori dell'asse x selezionando ora il quadrato X Err e la colonna corretta per ErrG". Il grafico finale sarà simile a quello mostrato nella Figura 9.
3. Adattamento dei parametri al modello di reologia vetrosa morbida
   NOTA: L'analisi dei dati è divisa in due parti: 1) curva che si adatta al diagramma G' (ω) rispetto a G" (ω) per ottenere i parametri Γ e G_m; 2) curva che raccorda G' (ω) e G" (ω) in funzione della frequenza ω, per ottenere l'esponente della legge di potenza α.
   1. Curva che adatta il grafico G' (ω) rispetto a G" (ω) per ottenere i parametri Γ e G_m.
      1. Fate clic sulla scheda Adattamento curva (Curve Fit), selezionate Adatta 1. Si aprirà una nuova finestra. Selezionare il quadrato e fare clic sul pulsante Definisci. Apparirà una finestra chiamata definizione generale di adattamento della curva. Digitare l'equazione seguente:
         m1 + m0/m2
         dove m1 = 61,576; m2 = 1, con errore ammissibile di 1 x ^10-5. Qui m0 rappresenta G ", m1 rappresenta G_m e m2 rappresenta Γ.
         NOTA: Per m1 e m2 è necessario stimare i rispettivi valori durante la definizione dell'adattamento della curva. Le stime di cui sopra erano basate sull'esperimento di esempio mostrato. Negli esperimenti, stimare i numeri in base ai valori osservati nel grafico.
      2. Fare clic sul pulsante OK in entrambe le finestre e verrà visualizzato il raccordo, come mostrato nella Figura 10 : una curva nera. Controllare i valori corretti per m1 e m2, elencati nella tabella di adattamento della curva visualizzata con il grafico.
   2. Curve fitting G ' e G" in funzione della frequenza angolare ω
      1. Quindi, creare altri due grafici, vale a dire, G' come funzione di ω e G' come funzione di ω. Posizionare le barre di errore solo sull'asse y, come illustrato in precedenza.
      2. Ripetete la procedura di adattamento della curva, ma ora selezionate l'opzione "G" in Selezioni adattamento curva (General Fit Definition), quindi in Adattamento generale > definizione curva (General Fit Definition) scrivete la seguente equazione:
         
         In questo caso, m1 è stato stimato come il valore di G" (ω) = 23,683 Pa, quando ω = 6,3 rad/s; m2 è stato stimato essere 0,5 (ricordiamo che m2 è l'esponente α e varia tra 0 e 1). Inserire il valore per Γ = 2,0293, in base al risultato di m2 nella Figura 10.
      3. Contrassegnare l'opzione Dati peso. Dopo tutte queste procedure, fare clic su OK e verrà visualizzato un adattamento della curva simile a quello nella Figura 11: verrà visualizzata una curva blu. Appariranno i valori per α, α = 0,63 ± 0,02 e G 0, G 0 = (3,7 ± _0,3)Pa. Utilizzare questi valori per adattare la curva successiva, G' (ω).
      4. Fate clic sulla curva successiva, ripetete la procedura di adattamento della curva, ma ora nella Definizione generale della curva di adattamento (General Fit Curve Definition), scrivete la seguente equazione:
         
         In questo caso, m3 è solo un valore stimato di α per confermare il valore ottenuto in precedenza. Utilizzare i valori per G ₀ = 3,703 e G' (ω) = 23,683 Pa quando ω = 6,3 rad/s.
      5. Ancora una volta, aggiungi 1 x ^10-5 come errore consentito e contrassegna l'opzione Dati di peso. Dopo tutte queste procedure, fare clic su OK e verrà visualizzato un adattamento della curva simile a quello nella Figura 11 : verrà visualizzata una curva verde.

Risultati

La figura 1 rappresenta gli schemi del sistema OT utilizzato per le misure reologiche. La Figura 2 mostra gli schemi dell'esperimento di microreologia con entrambe le sfere e viene mostrato anche un RBC rappresentativo. La figura 3 mostra una curva tipica per le ampiezze di entrambe le sfere in funzione del tempo quando i movimenti sinusoidali sono prodotti dallo stadio piezoelettrico. Mentre la sfera di riferimento (Figura 3 - curv...

Discussione

In questo protocollo, viene presentato un metodo integrato basato su pinzette ottiche e microscopia di defocalizzazione per mappare quantitativamente le proprietà viscoelastiche dei globuli rossi. Vengono determinati i risultati per i moduli di taglio di stoccaggio e perdita, insieme all'esponente di scala che caratterizza la reologia vetrosa morbida dei globuli rossi. L'applicazione di questo protocollo per diverse condizioni sperimentali, come nella situazione fisiologica⁸ o lungo ogni stadio

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo

Nome	Azienda	Numero di catalogo	Commenti
Piastre di coltura da 35 mm	Corning	430165
Albumina sierica bovina	Sigma-Aldrich	A9418
Vetrini coprioggetti	Knittel Glass	VD12460Y1A.01 e VD12432Y1A.01
Piastre con fondo in vetro	MatTek Life Sciences	P35G-0-10-C
Glucosio	Sigma-Aldrich	G7021
ImageJ	NIH	https://imagej.nih.gov/ij/
Olio da immersione	Nikon	MXA22165
Microscopio invertito	Nikon	Eclipse TE300
KaleidaGraph	Synergy Software	https://www.synergy.com/
KCl	Sigma-Aldrich	P5405
KH2PO4	Sigma-Aldrich	P5655
Fotocamera per microscopio	Hamamatsu	C11440-10C
Na2HPO4	Sigma-Aldrich	S5136
NaCl	Sigma-Aldrich	S5886
Camera Neubauer	Sigma-Aldrich	BR717805-1EA
Obiettivo Nikon		PLAN APO 100X 1.4 NA DIC H; PLAN APO 60x 1.4 NA DIC H e Plan APO 10x XXNA PH2
Tavolo ottico	Thorlabs	T1020CK
OT laser	IPG Photonics	YLR-5-1064-LP
Microsfere di polistirene	Polysciences	17134-15
di gomma	Forever Seals	NBR O-Ring
grasso siliconico	Dow Corning	Z273554
Posizionamento tavolino	PI	P-545.3R8S
Pipetta	Gilson	P1000