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Articolo metodologico

Tecnica di iniezione di embrioni per l'editing genetico nella zecca dalle zampe nere, Ixodes scapularis

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DOI:

10.3791/64142

13 settembre 2022

In questo articolo

Sommario

Il presente protocollo descrive un metodo per iniettare embrioni di zecca. L'iniezione di embrioni è la tecnica preferita per la manipolazione genetica per generare linee transgeniche.

Abstract

Le zecche possono trasmettere vari patogeni virali, batterici e protozoari e sono quindi considerate vettori di importanza medica e veterinaria. Nonostante il crescente onere delle malattie trasmesse dalle zecche, la ricerca sulle zecche è rimasta indietro rispetto ai vettori di malattie degli insetti a causa delle sfide nell'applicazione di strumenti di trasformazione genetica per studi funzionali alla biologia unica delle zecche. Gli interventi genetici hanno guadagnato attenzione per ridurre le malattie trasmesse dalle zanzare. Tuttavia, lo sviluppo di tali interventi richiede una trasformazione germinale stabile mediante iniezione di embrioni. Tale tecnica di iniezione di embrioni è carente per i chelicerati, comprese le zecche. Diversi fattori, come uno spesso strato di cera esterno sugli embrioni di zecche, corion duro e alta pressione intraovale, sono alcuni ostacoli che in precedenza impedivano lo sviluppo del protocollo di iniezione embrionale nelle zecche. Il presente lavoro ha superato questi ostacoli e qui è descritta una tecnica di iniezione di embrioni per la zecca dalle zampe nere, Ixodes scapularis.  Questa tecnica può essere utilizzata per fornire componenti, come CRISPR / Cas9, per trasformazioni germinali stabili.

Introduzione

Le zecche sono vettori di importanza medica e veterinaria, in grado di trasmettere una varietà di patogeni virali, batterici, protozoari e nematodi 1,2. Negli Stati Uniti orientali, la zecca dalle zampe nere, Ixodes scapularis, è un importante vettore del patogeno della malattia di Lyme (LD), la spirocheta Borrelia burgdorferi. Oltre 400.000 casi di LD sono segnalati ogni anno negli Stati Uniti, rendendola la principale malattia infettiva trasmessa da vettori negli Stati Uniti1. Oltre a B. burgdorferi, altri sei microrganismi sono trasmessi da I. scapulari....

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Protocollo

Gli adulti di Ixodes scapularis sono stati acquistati dalla Oklahoma State University (OSU) o allevati presso l'Università del Nevada, Reno (UNR) (protocollo IACUC # 21-001-1118).

1. Preparazione di zecche femminili per la raccolta di embrioni

NOTA: Per raccogliere le uova di età appropriata, è importante sincronizzare la deposizione delle uova. Sebbene i segnali di deposizione delle uova nelle zecche rimangano poco chiari, nelle condizioni settarie standard (temperatura di 27 ° C e umidità relativa del >90% (RH)), le femmine di I. scapularis iniziano a deporre le uova circa 8 gio....

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Risultati

Un protocollo di iniezione embrionale di successo per I. scapularis è descritto in questo articolo. Le femmine che depongono le uova sono state mantenute ad alta umidità per evitare l'essiccazione delle uova parzialmente cerate. Lo strato di cera è stato rimosso per iniettare embrioni di zecca ablando l'organo del gene (ghiandola di cera) della femmina gravida (Figura 1A-E). Abbiamo usato aghi di vetro alluminosilicati con un collo più corto (

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Discussione

Questo è il primo protocollo sviluppato per iniettare con successo embrioni di zecca precoci. È stato raggiunto un tasso di sopravvivenza di ~ 4% -8%, che è paragonabile all'iniezione di embrioni in altri modelli di insetti ben consolidati5.

Poiché questo è il protocollo iniziale, si prevede che questo protocollo sarà ulteriormente perfezionato e specializzato per le singole specie di zecche. In particolare, i tempi di iniezione varieranno da specie a specie, a seconda .......

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Ringraziamenti

Gli autori ringraziano Channa Aluvihare e Yonus Gebermicale, ITF, UMD, per la comprensione e il supporto durante la fase iniziale dello sviluppo del protocollo. Gli aghi di tungsteno sono stati un dono generoso di David O'Brochta, ITF, UMD. Siamo grati al Dr. Ladislav Simo per aver testato questo protocollo in I. ricinus e per le discussioni approfondite. Questo progetto è stato finanziato da NIH-NIAID R21AI128393 e Plymouth Hill Foundation, NY a MG-N, fondi di avvio dall'Università del Nevada ad AN, il National Science Foundation Grant No. 2019609 a MG-N e AN e una sovvenzione peer-to-peer da IGTRCN a AS.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Capillari in silicato di alluminio, con filamentoStrumenti SutterAF100-64-10Iniezione di embrioni
Cloruro di benzalconio 50% in acqua, 25 gTCI-AmericaB0414Trattamento embrionale, 25 g è circa 25 mL
Carta da filtroWhatman1001-090Cura post-iniezione
PinzeThomas Scientific300-101Organo del gene manipolazione
Salviette da laboratorioGenesee Scientific88-115
Punte per microloaderEppendorf930001007Caricamento degli aghi tirati
MicromanipolatoreStrumenti SutterROE-200Iniezione di embrioni
Vetrini microscopici - bordi lisci e rettificatiGenesee Scientific29-100Allineamento dell'embrione, i bordi rettificati sono preferibili, i bordi smussati potrebbero oscurare le uova dalla vista
NaClResearch Products InternationalS23020-500.0Trattamento degli embrioni
Needle PullerSutter InstrumentsP-1000
Nastro biadesivo permanenteScotch34-8716-3417-5Allineamento degli embrioni
Piastre di PetriGenesee Scientific32-107GCura post-iniezione
Tegaderm/ Trasparente rivestimento in pellicola3M Healthcare1628Allineamento degli embrioni Aghi
di tungstenoStrumenti di scienza fine10130-10Manipolazione degli organi dei geni
Filo di tungstenoAmazonB08DNT7ZK3Manipolazione degli organi dei geni
Microiniettore digitale XenoWorksSutterMPC-200Iniezione di embrioni
Strumenti

Riferimenti

  1. Hinckley, A. F. et al. Lyme disease testing by large commercial laboratories in the United States. Clinical Infectious Diseases: An Official Publication of the Infectious Diseases Society of America. 59 (5), 676-681 (2014).
  2. Jongejan, F., Uilenberg, G. The global importance of ticks. Parasitology. 129 Suppl, S3-14 (2004).
  3. Eisen, R. J., Eisen, L. The blacklegged tick, Ixodes scapularis: An increasing public health concern. Trends in Parasitology. 34 (4), 295-309 (2018).
  4. Sharma, A. et al. Cas9-mediated gene editing in the black-legged tick, Ixodes scapularis, by embryo injection....

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Ristampe e permessi

Tag

Embrioni di zeccatrasformazione della linea germinaleCRISPR Cas9interazione zecca-patogenoammorbidimento del corioncloruro di benzalconiofunzione genica della zecca