È richiesta un abbonamento a JoVE per visualizzare questo contenuto. Accedi o inizia la tua prova gratuita.

Articolo metodologico

Monitoraggio spaziotemporale rapido ed efficiente della metilazione della citosina normale e aberrante all'interno di embrioni di zebrafish intatti

1.3K visualizzazioni

⸱

DOI:

10.3791/64190

⸱

18 agosto 2022

 , 

In questo articolo

Sommario

Questo articolo descrive un protocollo per il monitoraggio spaziotemporale rapido ed efficiente della metilazione della citosina normale e aberrante all'interno di embrioni intatti di zebrafish.

Abstract

La metilazione della citosina è altamente conservata tra le specie di vertebrati e, come fattore chiave della programmazione epigenetica e dello stato della cromatina, svolge un ruolo fondamentale nello sviluppo embrionale precoce. Le modifiche enzimatiche guidano la metilazione attiva e la demetilazione della citosina in 5-metilcitosina (5-mC) e la successiva ossidazione di 5-mC in 5-idrossimetilcitosina, 5-formilcitosina e 5-carbossilcitosina. La riprogrammazione epigenetica è un periodo critico durante lo sviluppo in utero e l'esposizione materna a sostanze chimiche ha il potenziale per riprogrammare l'epigenoma all'interno della prole. Ciò può potenzialmente causare esiti avversi come conseguenze fenotipiche immediate, effetti a lungo termine sulla suscettibilità alle malattie negli adulti ed effetti transgenerazionali dei segni epigenetici ereditari. Sebbene il sequenziamento basato sulla bisolfito consenta ai ricercatori di interrogare la metilazione della citosina alla risoluzione della coppia di basi, gli approcci basati sul sequenziamento sono proibitivi in termini di costi e, come tali, precludono la capacità di monitorare la metilazione della citosina attraverso le fasi di sviluppo, concentrazioni multiple per sostanza chimica e replicare gli embrioni per trattamento. A causa della facilità dell'imaging automatizzato in vivo , delle manipolazioni genetiche, del rapido tempo di sviluppo ex utero e dell'allevamento durante l'embriogenesi, gli embrioni di zebrafish continuano ad essere utilizzati come modello fisiologicamente intatto per scoprire percorsi xenobiotici mediati che contribuiscono a esiti avversi durante lo sviluppo embrionale precoce. Pertanto, utilizzando anticorpi specifici per 5 mC disponibili in commercio, descriviamo una strategia economica per un monitoraggio spaziotemporale rapido ed efficiente della metilazione della citosina all'interno di singoli embrioni intatti di zebrafish sfruttando l'immunoistochimica a montaggio intero, l'imaging automatizzato ad alto contenuto e l'elaborazione efficiente dei dati utilizzando il linguaggio di programmazione prima dell'analisi statistica. Secondo le conoscenze attuali, questo metodo è il primo a rilevare e quantificare con successo i livelli di 5-mC in situ all'interno degli embrioni di zebrafish durante lo sviluppo iniziale. Il metodo consente la rilevazione della metilazione del DNA all'interno della massa cellulare e ha anche la capacità di rilevare la metilazione della citosina degli mRNA materni localizzati nel tuorlo durante la transizione da madre a zigotica. Nel complesso, questo metodo sarà utile per la rapida identificazione di sostanze chimiche che hanno il potenziale di interrompere la metilazione della citosina in situ durante la riprogrammazione epigenetica.

Introduzione

Le modifiche enzimatiche guidano la metilazione attiva e la demetilazione della citosina in 5-metilcitosina (5-mC) e la successiva ossidazione di 5-mC in 5-idrossimetilcitosina, 5-formilcitosina e 5-carbossilcitosina 1,2. Il tris(1,3-dicloro-2-propil) fosfato (TDCIPP) è un ritardante di fiamma ampiamente utilizzato negli Stati Uniti che ha precedentemente dimostrato di alterare la traiettoria della metilazione della citosina dopo l'esposizione embrionale precoce da 0,75 ore dopo la fecondazione (hpf) fino alla gastrulazione precoce (6 hpf)3,4,5,6,7,8 <....

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Protocollo

Gli allevatori adulti sono stati gestiti e trattati in conformità con un protocollo di utilizzo degli animali approvato dall'Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) (# 20180063) presso l'Università della California, Riverside.

1. Raccolta di embrioni di zebrafish ed esposizione chimica

  1. Aggiungi trappole da riproduzione in vasca alle vasche contenenti pesci zebra maschi e femmine adulti sessualmente maturi e riproduttivamente vitali. Aggiungere almeno tre trappole per serbatoio da 6 litri almeno 12 ore prima della raccolta a ~ 9:00 AM, che è il tempo approssimativo di fecondazione e deposizione delle uo....

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Risultati

Lo scopo generale di questo protocollo è determinare se un trattamento influisce sull'abbondanza relativa di 5-mC valutando l'area totale e l'intensità relativa della fluorescenza all'interno di embrioni di zebrafish fissi ed etichettati. Dopo aver completato il protocollo, è possibile utilizzare uno stereomicroscopio a fluorescenza per determinare innanzitutto se l'IHC a montaggio completo ha avuto successo. Quando gli embrioni marcati sono osservati sotto un filtro FITC o GFP, un risultato positivo è indicato da un seg.......

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Discussione

Durante questo protocollo, ci sono alcuni passaggi che sono critici. In primo luogo, quando si dechorionano gli embrioni, è importante puntare l'ago lontano dal tessuto dell'embrione / sacco vitellino / massa cellulare, poiché queste porzioni dell'embrione in via di sviluppo sono molto fragili e facili da perforare. In secondo luogo, quando si trasferiscono embrioni marcati a singoli pozzetti, utilizzare una pipetta di vetro per trasferire gli embrioni in quanto aderiranno a una pipetta di plastica. In terzo luogo, quand.......

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Dichiarazioni

Gli autori dichiarano di non avere interessi finanziari concorrenti noti o relazioni personali che potrebbero aver influenzato il lavoro riportato in questo articolo.

Ringraziamenti

Il supporto alla ricerca è stato fornito da una UCR Graduate Division Fellowship a SAB, una NRSA T32 Training Program Fellowship (T32ES018827) a SAB e una sovvenzione del National Institutes of Health (R01ES027576) e USDA National Institute of Food and Agriculture Hatch Project (1009609) a DCV.

....

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Provette per microcentrifuga da 1,5 mLFisher Scientific540225
10-µ Pipetta microcapillare in vetro LFisher Scientific211762B
Piastra di Petri in plastica da 100 mmFisher Scientific08757100D
10x soluzione salina tamponata con fosfato Fisher ScientificBP399500
Pipetta da 1 ml Fisher Scientific13690032
Pallone di Erlenmeyer da 250 mlFisher Scientific FB501250
Pipetta da 5 mlFisher Scientific13690033
piastre di Petri in vetro da 60 mm con coperchiFisher Scientific08747A
Piastra a 96 pozzettiFisher Scientific720089
AlexaFluor 488 IgG di capra coniugata anticorpo Fisher ScientificA21121
Albumina sierica bovinaFisher ScientificBP67110
DMSOFisher ScientificBP2311
Piastra riscaldante Fisher Scientific1110016SH
Trappole per riproduzione in vascaHabitat acquaticiN/AQuesto prodotto non è più disponibile a seguito dell'acquisizione di Aquatic Habitats da parte di Pentair. Gli investigatori possono utilizzare vasche di riproduzione standard fuori sistema disponibili da più fornitori.
ImageXpress Micro XLS Widefield High-Content Screening SystemMolecular DevicesN/A Saràadatto qualsiasi sistema di screening ad alto contenuto dotato di luce trasmessa e filtro FITC.
Cestello per immunochimica (IHC)N/AN/AProdotto internamente utilizzando provette per microcentrifuga con parte conica rimossa e fondo dotato di rete, dimensionato per piastre da 24 o 48 pozzetti.
MetaXpress 6.0.3.1658 Dispositivi molecolariN/ASarà adatto qualsiasi software in grado di quantificare l'area totale e l'intensità integrata della fluorescenza.
MicrospatolaFisher Scientific2140115
Anticorpo monoclonale di topo anti-5-mCMillipore SigmaMABE146
NaOHFisher ScientificBP359-500
Agitatore orbitale Fisher Scientific50998290
Parafilm Fisher Scientific1337412
Paraformaldeide Fisher Scientific18612139
Pipetta per trasferimento in plasticaFisher Scientific1368050
RstudioRStudioN/ARStudio è un software open source e può essere scaricato all'indirizzo https://www.rstudio.com.
Siero di pecoraMillipore SigmaS3772-5ML
StereomicroscopioLeica10450103
Incubatrice a temperatura controllata Fisher Scientific PR505755L
Tween-20 Fisher ScientificP7949-500ML

Riferimenti

  1. Zhang, H. -Y., Xiong, J., Qi, B. -L., Feng, Y. -Q., Yuan, B. -F. The existence of 5-hydroxymethylcytosine and 5-formylcytosine in both DNA and RNA in mammals. Chemical Communications. 52 (4), 737-740 (2016).
  2. Huang, W., et al.

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Ristampe e permessi

Esplora altri articoli

Rilevazione della 5-metilcitosinariprogrammazione epigeneticaimmunoistochimica su campioni interiimaging ad alto contenutoeffetti epigenetici materniscreening dell'esposizione chimicaanalisi automatizzata delle immaginiquantificazione della metilazione del DNA