Qui, presentiamo un protocollo per dimostrare tecniche sicure di trappola-vaccinazione-rilascio (TVR) per i carnivori suscettibili alla rabbia.
Articolo metodologico
Un protocollo trappola-vaccino-rilascio per l'immunizzazione delle puzzole e di ulteriori vettori della rabbia contro la rabbia
In questo articolo
Sommario
Abstract
La vaccinazione orale della fauna selvatica contro la rabbia attraverso la distribuzione di esche cariche di vaccini è ampiamente utilizzata come strumento di gestione in Europa e Nord America. Negli ultimi decenni, i programmi di successo hanno preso di mira importanti bacini idrici, tra cui coyote, volpi, procioni e procioni, per la prevenzione e il controllo. Tuttavia, altre specie (ad esempio, le puzzole) o determinati habitat (ad esempio, urbani) possono essere meno suscettibili alla vaccinazione orale, richiedendo la considerazione di ulteriori strategie. La trappola-vaccino-rilascio (TVR) è un metodo alternativo che prevede l'uso di trappole vive per catturare la fauna selvatica mirata. Le trappole sono distribuite lungo le griglie in habitat idonei e accessibili. Gli animali catturati vengono identificati mediante marcatura, vaccinati per via parenterale con un vaccino commerciale inattivato, sessuati, invecchiati, pesati e rilasciati nel sito di cattura. Dal 2001, la trasmissione interspecie del virus della rabbia dai pipistrelli ai mesocarnivori, come le puzzole, è stata rilevata a Flagstaff, in Arizona. Negli ultimi due decenni, la TVR è stata utilizzata come metodo sicuro ed efficace per prevenire e controllare la rabbia durante tali eventi in questa regione.
Introduzione
Il virus della rabbia (RABV) è una malattia zoonotica mortale che ha un impatto sulla salute umana su scala globale. L'Organizzazione Mondiale della Sanità (OMS) riferisce che circa 59.000 persone vengono uccise ogni anno, prevalentemente nei paesi asiatici e africani. Inoltre, 29 milioni di persone hanno ricevuto una vaccinazione post-esposizione ogni anno a causa del morso di un animale. Gli impatti sulle popolazioni di fauna selvatica non possono essere misurati con precisione, ma le popolazioni di fauna selvatica possono sperimentare alti tassi di mortalità durante gli eventi di epidemia quando le condizioni geospaziali sono favorevoli. Rosatte ha riferito che la popolazione di procioni (Procyon lotor) su 124 km quadrati (48 miglia quadrate) è diminuita di circa il 71% nei mesi successivi a un focolaio di RABVsegnalato 1.
Il controllo e la gestione del RABV sono essenziali per proteggere la salute umana, gli animali domestici e le popolazioni di fauna selvatica vulnerabili. Poiché tutti i mammiferi sono suscettibili al RABV, nel corso del tempo, il RABV si è adattato a diverse specie di mammiferi distinte, che ora fungono da ospiti serbatoio. Queste specie ospiti e le loro varianti associate abitano tipicamente specifiche regioni geografiche. All'interno di queste regioni, si verifica una ricaduta in ospiti non serbatoio (trasmissione tra specie), ma nella maggior parte dei casi, le specie non serbatoio infette non trasmettono l'infezione ad altri individui della popolazione. Un cambio di ospite è un evento raro in cui il virus si è adattato con successo a un nuovo ospite. Questi eventi sono i più pericolosi, in quanto possono influenzare la diffusione del RABV e minare qualsiasi sforzo di gestione del RABV messo in atto2.
In Nord America, gli sforzi di gestione della RABV si concentrano su diverse specie di serbatoi di fauna selvatica terrestre. I programmi di vaccinazione orale contro la rabbia (ORV) si sono dimostrati efficaci nella gestione della rabbia su larga scala. L'ORV utilizza il dispiegamento aereo e manuale di piccole esche che contengono un vaccino orale RABV. Queste esche sono distribuite sul paesaggio; qualsiasi animale selvatico bersaglio che incontra questi pacchetti riceve il vaccino RABV per via orale quando li morde. L'uso dell'ORV è stato essenziale nel controllo della volpe rossa (Vulpes vulpes) RABV in Europa3, del procione RABV in Canada e dei coyote (Canis latrans) e dei procioni negli Stati Uniti4. Le esche ORV hanno dimostrato di essere uno strumento prezioso nei programmi di gestione RABV, in quanto possono essere implementate in vaste regioni del paesaggio e ridurre il numero di personale necessario nei programmi di gestione. Uno svantaggio del programma ORV è la sua inefficacia nel vaccinare con successo le specie di puzzole. L'inadeguata diffusione del vaccino dagli attuali pacchetti di ORV sembra essere l'attuale battuta d'arresto per l'efficacia dell'ORV nelle popolazioni di puzzole selvatiche sul campo5.
Il rilascio di trappole per vaccini (TVR) è uno strumento alternativo per la gestione della rabbia, che viene occasionalmente utilizzato contemporaneamente all'ORV. L'obiettivo del TVR è aumentare il numero di individui vaccinati contro la rabbia in una popolazione. Poiché richiede la cattura intensiva degli animali ed è più costoso dell'ORV per chilometro quadrato6, il TVR viene eseguito su scala molto più piccola dell'ORV ed è spesso applicato nelle aree urbane dove esistono molte sfide per l'ORV7.
Il rilascio di puzzole negli Stati Uniti è stato efficace a Flagstaff, in Arizona, in diverse occasioni. Dal 2001, Flagstaff ha sperimentato ripetuti focolai di grande pipistrello bruno (Eptesicus fuscus) variante RABV nelle popolazioni di puzzola striata (Mephitis mephitis)8. Dal 2001 al 2011 (in molteplici sforzi distinti di TVR guidati dal Dipartimento dell'Agricoltura degli Stati Uniti, dal Servizio di ispezione della salute degli animali e delle piante, dai Servizi per la fauna selvatica), 842 animali sono stati catturati, vaccinati e rilasciati, tra cui 753 puzzole striate (Wildlife Services Capture Data). Ogni sforzo ha fermato le epidemie di rabbia dei pipistrelli nelle puzzole. Nel 2021, questo fenomeno di incrocio di specie si è verificato di nuovo quando sono state confermate puzzole striate rabbiose in due regioni fortemente urbanizzate di Flagstaff. I servizi per la fauna selvatica hanno immediatamente coordinato e lanciato un programma TVR in queste aree per contenere l'epidemia in collaborazione con il Dipartimento dei servizi sanitari di Coconino e diverse agenzie statali. L'obiettivo di questo manoscritto è quello di dimostrare in sicurezza i passaggi di un programma TVR mirato alle puzzole.
Le attrezzature necessarie per la cattura e la vaccinazione sono le seguenti:
Attrezzatura da campo TVR
Un elenco dettagliato di tutte le attrezzature utilizzate è disponibile nella tabella dei materiali allegata. Tuttavia, è necessario chiarire i "pistoni di legno" utilizzati. Si tratta di dispositivi fatti a mano costituiti da un tassello di legno per il manico. Fissato all'estremità della tassella c'è un pezzo di compensato tagliato alle dimensioni dell'apertura della trappola. Poiché abbiamo utilizzato tre diverse dimensioni di trappola, abbiamo costruito stantuffi delle seguenti dimensioni (6 pollici x 6 pollici, 8 pollici x 8 pollici, 10 pollici x 10 pollici) (Figura 1). Inoltre, le coperture delle trappole sono necessarie solo quando si lavora su una puzzola. Il materiale di copertura della trappola può essere una tela, un vecchio telo o un foglio di plastica usa e getta come quello che abbiamo usato.
Dispositivi di protezione individuale (DPI)
Gli equipaggi sul campo devono aver ricevuto vaccinazioni antirabbiche prima dell'esposizione prima di partecipare a qualsiasi programma TVR. I DPI necessari per il lavoro TVR includono protezioni per gli occhi come uno scudo di sicurezza monouso, occhiali da laboratorio o occhiali di sicurezza. Una tuta usa e getta è la migliore protezione dai diversi composti volatili contenuti in uno spray per puzzole. (Nota: la tuta non è necessaria quando si lavora su un procione o una volpe). I guanti monouso in nitrile proteggono da varie sostanze chimiche e liquidi e offrono protezione dalla saliva e dai fluidi corporei contenenti agenti patogeni provenienti da animali catturati.
Preparazione e distribuzione delle trappole
Abbiamo utilizzato tre dimensioni di trappole per la cattura di animali vivi: piccole (7 pollici x 7 pollici x 24 pollici), medie (9 pollici x 9 pollici x 26 pollici) e grandi (10 pollici x 12 pollici x 32 pollici) (Figura 1). Prima di schierare le trappole sul campo, devono essere lavate accuratamente con acqua e sapone. Le trappole devono essere lasciate all'aria aperta per diverse settimane o mesi per consentire l'eliminazione degli odori. I meccanismi di innesco vengono testati e riparati quando necessario prima dell'impostazione. Su ogni trappola sono installate etichette di avvertenza con la dicitura "Vettore della rabbia". Un ulteriore cartello di avvertimento antirabbico è affisso nelle vicinanze di ogni trappola; Questo avviso secondario fornisce informazioni generali sull'abbondanza e fornisce informazioni di contatto del programma. Le trappole sono posizionate all'interno o vicino alle rotte di viaggio degli animali e ai luoghi di alimentazione. Dovrebbero essere selezionati luoghi che riducano al minimo lo stress per l'animale, compresi gli eventi meteorologici e il disturbo causato dalle attività umane. Una posizione di cattura stabilita riceve un nome univoco e la posizione viene registrata in un'unità GPS portatile.
Protocollo
La manipolazione e la cura sicura degli animali dimostrate in questo protocollo sono conformi agli standard messi in atto da APHIS Wildlife Services.
1. Protocollo di vaccinazione
- Preparazione
- Indossa i DPI, inclusi visiera/occhiali, guanti in nitrile e tute.
- Rimuovi un paio di marchi auricolari numerati dalla confezione per contrassegnare l'animale catturato. Annota i numeri dei marchi auricolari sulla scheda tecnica e inseriscili in un sacchetto di plastica richiudibile etichettato con il numero del marchio auricolare per tenerli al sicuro e organizzati fino a quando non sono pronti per essere distribuiti.
- Avvicinati con calma e tranquillità alla trappola. Se una puzzola è stata catturata, usa un pezzo di telo, tela o telo di plastica per coprire la trappola e proteggerti da qualsiasi spray per puzzola.
- Avvolgere con cura il coperchio attorno alla trappola e utilizzare una molla in acciaio clamp per fissarlo alla trappola. La copertura non è necessaria per un procione o una volpe.
- Posizionare con cura la trappola all'estremità con la porta della trappola rivolta verso l'alto (verso il cielo).
- Vaccinazione
- Una volta che l'animale catturato si è spostato sul fondo della trappola, apri la porta e posiziona lo stantuffo di legno all'interno della trappola sul corpo dell'animale.
- Applicare una leggera pressione sull'animale per evitare che si muova liberamente. Utilizzare l'immobilizzazione meccanica per vaccinare e marcare in sicurezza l'animale.
- Recuperare il vaccino antirabbico dal frigorifero e aspirare il dosaggio corretto (1 ml) nella siringa da 3 ml. Posiziona i marchi auricolari nella busta per sandwich per l'animale in un luogo facilmente accessibile.
- Tira indietro con cautela il coperchio attorno alla trappola per individuare una regione in cui somministrare il vaccino.
- Inserire con cautela l'ago nel tessuto muscolare dell'animale nella zampa posteriore e premere delicatamente lo stantuffo per somministrare il vaccino antirabbico.
- Smaltire la siringa usata in un contenitore per oggetti taglienti.
- Posizionare la trappola in modo che le orecchie siano accessibili e posizionare un marchio auricolare in metallo nella scanalatura di posizionamento sulle pinze.
- Posizionare l'estremità aperta del marchio auricolare sull'orecchio e applicare una pressione uniforme e delicata fino a quando i manici delle pinze non si fermano. Ripeti la sequenza sull'altro orecchio.
- Con la trappola all'estremità, rimuovere lo stantuffo, chiudere la botola e fissare l'estremità del gancio della bilancia portatile alla trappola. Sollevare delicatamente la trappola e tenerla ferma. Registrare il peso della trappola e dell'animale sulla scheda tecnica.
- Appoggiare la trappola in piano e posizionare il coperchio in modo che non sia più avvolto attorno alla trappola ma si trovi sopra la parte superiore della trappola.
- Sollevare delicatamente la trappola da terra utilizzando la maniglia e posizionare lo specchio portatile sotto la trappola. Usando il riflesso dell'animale nel riflesso dello specchio, determina il sesso dell'animale. Registrare sulla scheda tecnica.
NOTA: Uno specchio non è necessario per il sesso di una volpe o di un procione. - Stimare l'età dell'animale come adulto o giovane. Registrare sulla scheda tecnica.
- Termina la compilazione della scheda tecnica. Un blocco appunti in metallo con un'area di stoccaggio protegge al meglio i fogli in caso di maltempo e li mantiene in un unico posto durante la sessione di cattura.
- Utilizzare un morsetto metallico per tenere la botola in posizione aperta. Indietreggia lentamente e lascia che l'animale esca dalla trappola senza pressione.
- Una volta che l'animale è uscito, ripesarma la trappola vuota, assicurandosi che le clip e il coperchio di protezione rimangano con essa. Sottrai questo peso dal peso registrato in precedenza per calcolare il peso dell'animale.
Risultati
Abbiamo implementato la tecnica di gestione del RABV a terra chiamata TVR per affrontare i focolai di RABV nella città di Flagstaff, in Arizona (Figura 2). L'obiettivo di questo progetto non era quello di valutare l'efficacia della TVR, ma piuttosto una risposta di emergenza per vaccinare i mesocarnivori all'interno delle aree di quarantena RABV e ridurre al minimo eventuali minacce per la salute pubblica. Da agosto 2021 a dicembre 2021, diverse puzzole striate malate sono state segnalate al dipartimento di polizia di Flagstaff e al Flagstaff Animal Control; queste puzzole sono state successivamente soppresse e testate per il RABV. Anche le puzzole morte segnalate dal pubblico durante questo periodo sono state sottoposte a test. In totale, 16 puzzole striate sono risultate positive al grande pipistrello marrone RABV, 4 a ovest di Flagstaff e 12 a est di Flagstaff. In risposta, all'inizio di dicembre 2021 abbiamo avviato gli sforzi per la TVR e abbiamo documentato il seguente successo della vaccinazione. A West Flagstaff, abbiamo vaccinato 27 puzzole striate, 3 volpi grigie e 4 procioni. Inoltre, abbiamo ricatturato puzzole striate in 37 occasioni. A East Flagstaff, abbiamo vaccinato 106 puzzole striate e 2 procioni. Inoltre, abbiamo ricatturato puzzole striate in 110 occasioni. Gli sforzi di cattura sono stati sostenuti per tutto il 2022. Durante questo periodo, non sono state rilevate puzzole RABV-positive in nessuna delle due aree di cattura. Nei mesi di luglio e agosto del 2022, 3 puzzole rabbiose sono state rilevate in un quartiere a sud di Flagstaff (Figura 3). Abbiamo immediatamente coordinato e avviato il TVR in questa nuova area, dove abbiamo vaccinato 22 puzzole striate, 1 puzzola dal naso di maiale e 10 procioni. Gli animali ricatturati includevano 34 puzzole striate e 1 puzzola dal naso di maiale. Le trappole a sud di Flagstaff sono iniziate alla fine di luglio e sono continuate per tutto il resto del 2022. Nei mesi successivi, non sono state rilevate altre puzzole rabbiose a sud di Flagstaff. Altre 15 puzzole sono state catturate dalle società locali di disinfestazione al di fuori delle aree TVR. Ci siamo coordinati con le società di disinfestazione per vaccinare gli animali prima che venissero rilasciati.
I programmi di gestione come il TVR sono efficaci per il controllo del RABV perché riducono il numero di individui suscettibili presenti in una popolazione di fauna selvatica. I risultati qui presentati (Tabella 1) dimostrano quanto sia efficace e efficace il protocollo nella vaccinazione della fauna selvatica contro il RABV. Come notato, non abbiamo osservato nuovi casi di RABV dopo l'implementazione del TVR. (Figura 4) La TVR ha un netto vantaggio dell'inoculazione diretta degli animali catturati. Al contrario, l'ORV non può garantire che la fauna selvatica mirata riprenda esche distribuite in modo casuale. TVR garantisce che ogni animale catturato sarà inoculato con il vaccino. Valutare l'efficacia di questi animali vaccinati nel fermare la diffusione del RABV è difficile, ma quando tentiamo di analizzare i risultati soggettivamente, possiamo determinare che qualsiasi minaccia per la salute pubblica è ridotta avendo 190 mesocarnivori completamente vaccinati in queste aree urbane.
| Anno | Notti trappola | Totale catture | Puzzole striate | Procioni | Volpi grigie | Puzzola dal naso di porco |
| T (V) | T (V) | T (V) | T (V) | |||
| 2021 (dicembre) | 180 | 4 | 4 (4) | 0 (0) | 0 (0) | 0(0) |
| 2022 | 5,343 | 367 | 346 (166) | 16 (16) | 3 (3) | 2 (1) |
| Totale | 5,523 | 371 | 350 (170) | 16 (16) | 3 (3) | 2 (1) |
Tabella 1: Mesocarnivori vaccinati contro il RABV durante le operazioni TVR a Flagstaff, Arizona, nel periodo 2021-2022. T = numero totale di animali catturati, V = numero di individui diversi vaccinati e rilasciati con successo.
Figura 1: Dimensioni della trappola e dello stantuffo. (Sinistra) La trappola più piccola 7 pollici x 7 pollici x 24 pollici, (al centro) media 9 pollici x 9 pollici x 26 pollici (destra) e grande 10 pollici x 12 pollici x 32 pollici. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
Figura 2: Puzzole positive per RABV Flagstaff Arizona, USA 2021-2022. Mappa delle puzzole positive al RABV rilevate nella città di Flagstaff, in Arizona, dal 2021 al 2022. I punti rossi mostrano le posizioni in cui sono state rilevate puzzole RABV-positive. I poligoni blu mostrano le aree di cattura TVR all'interno dei confini della città. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
Figura 3: Area TVR di South Flagstaff. Mappa aerea di una linea di cattura stabilita a sud di Flagstaff, in Arizona, nel 2021. I punti rossi mostrano dove sono stati rilevati animali positivi alla rabbia. I punti verdi mostrano le posizioni delle trappole che non hanno catturato alcun animale. I punti blu mostrano le posizioni delle trappole in cui un animale è stato catturato, vaccinato e rilasciato con successo. I numeri bianchi vicino ai punti blu indicano quanti animali sono stati vaccinati in quel sito di trappola. I punti arancioni mostrano i siti di trappola che hanno ricatturato solo animali precedentemente vaccinati. La tabella dei dati mostra quante specie sono state catturate e vaccinate su questa trappola. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
Figura 4: Puzzole RABV-positive e vaccinazioni TVR al mese a Flagstaff 2021-2022. La linea rossa rappresenta gli animali positivi al RABV rilevati a Flagstaff da luglio 2021 a dicembre 2022. La linea blu mostra il numero di animali vaccinati da dicembre 2021 a dicembre 2022. I numeri sopra la linea blu indicano quanti mesocarnivori sono stati vaccinati per quel particolare mese. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
Discussione
I Centers for Disease Control and Prevention stimano che circa 55.000 americani ricevano la profilassi post-esposizione (PEP) ogni anno, con un costo medio per ogni esposizione di circa $ 3.6009. I principali impatti economici associati alla rabbia sono i costi di gestione della malattia e il trattamento per prevenire la mortalità umana dopo l'esposizione. La chiave per ridurre i problemi di salute e l'impatto economico è il successo della vaccinazione delle specie serbatoio terrestri10. Un programma TVR è uno strumento di gestione per l'intervento in caso di epidemie che minacciano la salute umana, gli animali domestici e la fauna selvatica. La TVR è più efficace nell'affrontare le epidemie di rabbia su piccola scala in quanto è molto costosa e laboriosa da impiegare su scale di paesaggio più ampie6. Nonostante questi inconvenienti, la TVR è un prezioso strumento di gestione della rabbia che ha ripetutamente dimostrato di essere efficace nel fermare la diffusione della malattia vaccinando le specie serbatoio 11,12. Il protocollo TVR dimostrato in questo manoscritto è in risposta alle epidemie di rabbia nella città di Flagstaff, in Arizona, che ha sperimentato ripetute grandi epidemie di RABV marrone nelle popolazioni di puzzola striata dal 20018. Questo programma TVR si basava su uno studio TVR condotto da Rosatte in cui puzzole e procioni sono stati vaccinati per via intramuscolare contro la rabbia nell'Ontario metropolitano13. Questo protocollo riguardava come vaccinare in modo sicuro e con successo le puzzole striate catturate e altri mesocarnivori.
Uno dei passaggi più importanti di questo protocollo è immobilizzare in modo sicuro l'animale. L'animale deve essere al sicuro, ma la forza di immobilizzazione non dovrebbe danneggiarlo in alcun modo. Una corretta immobilizzazione garantisce che l'animale riceva una dose completa del vaccino (1 ml) impedendo all'animale di allontanarsi durante l'iniezione. Inoltre, un animale sicuro non è in grado di mordere e artigliare gli strumenti utilizzati per installare i marchi auricolari. Questo aiuta a ridurre lo stress esercitato su ogni animale accorciando il tempo necessario per elaborare ogni animale.
Una sfida che abbiamo incontrato è stata quella di vaccinare e marcare le puzzole catturate nelle grandi trappole (10 pollici x 12 pollici x 32 pollici). Questo processo può essere difficile, in quanto offre alle puzzole più spazio per allontanarsi dai lati della trappola e fuori dalla portata degli strumenti. Questo problema è stato ancora più evidente quando sono state catturate puzzole giovani. Queste situazioni hanno richiesto alcune modifiche alla nostra tecnica di lavorazione. In queste situazioni, useremmo lo stantuffo di legno per le piccole trappole per intrappolare la puzzola in un angolo della trappola e lavorarle dall'alto attraverso l'apertura della porta. Ciò ha reso possibile la lavorazione delle puzzole, ma si è comunque rivelato impegnativo.
Abbiamo documentato le catture di puzzole in tutte le trappole di tre dimensioni. Le catture di procioni sono state documentate in trappole di medie e grandi dimensioni, mentre le volpi grigie sono state catturate esclusivamente nelle trappole di grandi dimensioni. C'è la tendenza per alcuni animali ad abituarsi alle trappole e ad essere ricatturati frequentemente. Il costante movimento delle trappole verso nuove posizioni aiuta a ridurre al minimo le ricatture e offre l'opportunità di catturare e vaccinare nuovi individui sul territorio.
Un limite della TVR è la dimensione dell'area che può essere trattata efficacemente. Nelle operazioni di gestione della rabbia su larga scala, la TVR viene spesso utilizzata in combinazione con l'ORV per coprire vaste aree del paesaggio. La TVR, di per sé, copre un'area molto più piccola ed è meglio utilizzata nelle aree urbane come risposta rapida alle emergenze o, nel nostro caso, per affrontare le epidemie di rabbia nelle popolazioni di puzzole. Anche gli sforzi del TVR possono rivelarsi costosi, con stime di $ 625,00 per km2 trattati12. Questi costi possono variare in modo significativo poiché aree più grandi richiedono più personale e attrezzature, aumentando di conseguenza i costi.
Lavori precedenti hanno determinato che l'inoculazione con 1 ml di vaccino antirabbico era efficace nello stimolare la produzione di anticorpi antirabbici nei mesocarnivori14. Ci sono diversi articoli basati sulla TVR che menzionano la vaccinazione degli animali 1,12,13,14, ma non siamo riusciti a trovare articoli pubblicati che offrano una spiegazione dettagliata del protocollo per la somministrazione del vaccino. Pertanto, non abbiamo potuto confrontare il protocollo offerto in questo manoscritto con i metodi esistenti. I materiali e i metodi condivisi in questo manoscritto consentiranno agli equipaggi sul campo di somministrare vaccinazioni precise ed efficaci alle popolazioni di fauna selvatica. Questo protocollo si è dimostrato efficace e continuerà ad essere utilizzato negli sforzi TVR in corso e futuri.
Dichiarazioni
Gli autori non hanno conflitti di interesse da rivelare. Il riferimento in questo sito a qualsiasi prodotto, processo o servizio commerciale specifico, o l'uso di qualsiasi nome commerciale, azienda o società è per informazione e comodità del pubblico e non costituisce approvazione, raccomandazione o favore da parte del Dipartimento dell'Agricoltura degli Stati Uniti.
Ringraziamenti
Gli autori desiderano ringraziare i servizi sanitari della contea di Coconino, in particolare Sabrina Kelley, per aver facilitato l'attuazione della quarantena antirabbica. Inoltre, gli autori desiderano ringraziare Dennis Slate e Richard Chipman per aver facilitato il programma TVR e Tad Theimer per i consigli sulla cattura delle trappole. Il progetto è stato interamente finanziato dal Dipartimento dell'Agricoltura degli Stati Uniti, dal Servizio di ispezione della salute degli animali e delle piante, dai Servizi per la fauna selvatica e dal National Rabies Program.
Materiali
| Nome | Azienda | Numero di catalogo | Commenti |
|---|---|---|---|
| #8 x 1-1/2 in. R4 Multi-Purpose Star Drive Flat Head Screw (110 per Pack) | Home Depot | 96085 | Usato per fissare la base all'asta di spinta del pistone |
| #8 x 1-1/4 in. #2 Phillips, Wafer-Head Wood Screw (100-Pack) | Home Depot | SD8X1.25-R | Usato per fissare il cartello della trappola al palo |
| 2 in. x 2 in. x 8 ft. Furring Strip Board Lumber | Home Depot | 75800593 | Astuccio per il pistone |
| 20 G x 1.5 " ago | Kendall monoject | 8881 | Usato per vaccinare gli animali |
| 3 mL siringa | Kendall monoject | 513934 | Usato per vaccinare gli animali |
| 48 oz. Martello da trapano in acciaio | Home Depot | MRF3LB | Usato per mettere il palo del cartello della trappola nel terreno |
| 7-1/4 in. x 140-Tooth OSB/Plywood Circular Saw Blade | Home Depot | A07140A | Lama per sega circolare necessaria per tagliare il compensato |
| Cartellina in alluminio - Apertura superiore, Lettera | ULINE | S-20173 | Usato per registrare e conservare le schede tecniche |
| Sega circolare | Home Depot | CSB144LZK | Usato per tagliare il legno per realizzare il pistone |
| Pacchi freddi - 6 oz | ULINE | S-9902 | Usato per regolare la temperatura del vaccino |
| Detergente per piatti | ULINE | S-9975 | Usato per pulire le trappole |
| Abbigliamento protettivo Dupont Tyvek | ULINE | S-11495 | Usato per proteggere il personale dallo spray delle puzzole. La taglia dipenderà dalla taglia del personale. Puoi anche usare il tuta senza cappuccio S-9636. |
| Unità GPS portatile | Garmin | ETrex 32X | Usato per registrare la posizione della trappola e degli animali catturati |
| Specchio portatile 6 in. x 7 in. | Walmart | Equate | Usato per determinare il sesso dell'animale |
| Lampada frontale | Home Depot | HDB32EH | Per controllare le trappole prima dell'alba |
| Barattolo di burro di arachidi | Walmart | Barattolo da 40 oz | Esca per la cattura delle puzzole. |
| Trappola viva per puzzole | Tomahawk | 103 | Usato per catturare le puzzole |
| Trappola viva per puzzole e altri carnivori | Tomahawk | 205; 602 | Usato per catturare puzzole e altri carnivori |
| Guanti in nitrile | ULINE | S-14179 | Usato per proteggere il personale dai patogeni. La taglia e l'uso di polvere o meno dipenderà dalla scelta del personale. |
| Kit trapano/avvitatore ONE+ 18 V senza fili da 3/8 in. con batteria da 1,5 Ah, caricabatterie, strumenti manuali, accessori e borsa per attrezzi | Home Depot | PCL201K1SB | Usato per assemblare i cartelli sui pali |
| Paper Mate Profile 8 pk Penne a sfera con punta grassa da 1,4 mm nere | Staples | 2095460 | Usato per scrivere sui fogli dati |
| Cartello di segnalazione per la cattura della rabbia da 9 in. x 12 in. | FedEx Office | NA | Da attaccare al palo vicino alla posizione della trappola |
| Vaccino antirabbico | Boehringer Ingelheim | Imrab® | 1 mL per animale; https://www.boehringer-ingelheim.com/animal-health/companion-animals-products/rabisin-imrab#:~:text=Rabisin%C2%AE%20%2F%20Imrab%C2%AE%20is,signs%20due%20to%20rabies%20infection. |
| Cartello di avvertimento per la rabbia da 4 in. x 6 in. | FedEx Office | NA | Da attaccare alla parte superiore della trappola |
| Etichetta per orecchie di procione e volpe | National Band and Tag Company | 1005-3 | Etichette per orecchie per procioni e volpi |
| Etichetta per orecchie di procione e volpe | National Band and Tag Company | 1005s3 | Pinze per tappi auricolari per attaccare le etichette per orecchie a procioni e volpi |
| Refresh 6-Pack Lunch Cooler | 4imprint.com | 155149 | Usato per trasportare il vaccino sul campo |
| Rotolo di lamiera di plastica 12 ft. x 400 ft. | 3M | 6723 | Usato per calmare l'animale e proteggere il personale |
| Occhiali di protezione o visiera monouso | ULINE | S-24607 | Usato per proteggere il viso del personale dallo spray delle puzzole e dai patogeni. |
| Legno compensato levigato (Comune: 1/2 in. x 2 ft. x 4 ft.; Effettivo: 0,451 in. x 23,75 in. x 47,75 in.) | Home Depot | 300896 | Base per il pistone |
| Bilancia 55 libbre x 0,5 once | Brecknell | Modello 816965007486 | Usato per pesare la gabbia e l'animale |
| Sharpie Pennarello permanente a punta fine nero 1 pk | Ace Hardware | 35010 | Usato per etichettare i sacchetti per sandwich |
| Contenitore per siringhe usate - 1 litro | ULINE | S-15307 | Per contenere le siringhe usate |
| Etichetta per orecchie di puzzola | National Band and Tag Company | 1005-1 | Etichette per orecchie per puzzole |
| Applicatore per etichette per orecchie di puzzola | National Band and Tag Company | 1005s1 | Pinze per etichette per orecchie per attaccare le etichette per orecchie alle puzzole |
| Acqua del rubinetto | NA | Usato per pulire le trappole | |
| Filo per trappole | Minnesota Trap Line Products, INC | 11GA-01 | Filo per trappole per attaccare il cartello alla trappola https://www.minntrapprod.com/Snares/departments/577/ |
| Universal Forest 48 in. x 1 in. x 2 in. Wood Grade Stake 24 pk | Ace Hardware | 5606413 | Palo per il cartello della trappola |
| XM Series 3 in. Capacity Steel Spring Clamp with Handles and Tips, 3-1/3 in. Throat Depth | Home Depot | XM7 | Usato per fissare la lamiera di plastica alla trappola o per tenere aperta la porta della trappola |
| Ziploc Sandwich Bags | ULINE |
Riferimenti
- Rosatte, R., et al. The elimination of raccoon rabies from Wolfe Island, Ontario: animal density and movements. Journal of Wildlife Diseases. 43 (2), 242-250 (2007).
- Marston, D. A., et al. Genetic analysis of a rabies virus host shift event reveals within-host viral dynamics in a new host. Virus Evolution. 3 (2), vex038(2017).
- Freuling, C. M., et al. The elimination of fox rabies from Europe: determinants of success and lessons for the future. Philosophical Transactions of the Royal Society B: Biological Sciences. 368, 20120142(2013).
- Slate, D., et al. Oral rabies vaccination in North America: opportunities, complexities, and challenges. PLoS Neglected Tropical Diseases. 3 (12), e549-e549 (2009).
- Wohlers, A., Lankau, E. W., Oertli, E. H., Maki, J. Challenges to controlling rabies in skunk populations using oral rabies vaccination: A review. Zoonoses and Public Health. 65 (4), 373-385 (2018).
- Sterner, R. T., Meltzer, M. I., Shwiff, S. A., Slate, D. Tactics and economics of wildlife oral rabies vaccination, Canada and the United States. Emerging Infectious Diseases. 15 (8), 1176-1184 (2009).
- Elmore, S. A., Chipman, R. B., Slate, D., Huyvaert, K. P., VerCauteren, K. C., Gilbert, A. T. Management and modeling approaches for controlling raccoon rabies: The road to elimination. PLOS Neglected Tropical Diseases. 11, e0005579(2017).
- Kuzmin, I. V., et al. Molecular inferences suggest multiple host shifts of rabies viruses from bats to mesocarnivores in Arizona during 2001-2009. PLoS Pathogens. 8 (6), e1002786(2012).
- Shwiff, S. A., et al. Direct and indirect costs of rabies exposure: a retrospective study in southern California (1998-2002). Journal of Wildlife Diseases. 43 (2), 251-257 (2007).
- Shwiff, S. A., Elser, J. L., Ernst, K. H., Shwiff, S. S., Anderson, A. M. Cost-benefit analysis of controlling rabies: placing economics at the heart of rabies control to focus political will. OIE Scientific and Technical Review. 37 (2), 681-689 (2018).
- Rosatte, R. C., Power, M. J., Machines, C. D., Campbell, J. B. Trap-vaccinate-release and oral vaccination for rabies control in urban skunks, raccoons and foxes. Journal of Wildlife Diseases. 28 (4), 562-571 (1992).
- Slavinski, S., et al. Trap-vaccinate-release program to control raccoon rabies, New York, USA. Emerging Infectious Diseases. 18 (7), 1170-1172 (2012).
- Rosatte, R. C., et al. The control of raccoon rabies in Ontario Canada: Proactive and reactive tactics, 1994-2007. Journal of Wildlife Diseases. 45 (3), 772-784 (2009).
- Rosatte, R. C., Howard, D. R., Campbell, J. B., Maclnnes, C. D. Intramuscular vaccination of skunks and raccoons against rabies. Journal of Wildlife Diseases. 26 (2), 225-230 (1990).
Ristampe e permessi
