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Articolo metodologico

Imaging a lungo termine di popolazioni neurali identificate utilizzando microprismi in animali che si muovono liberamente e fissano la testa

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DOI:

10.3791/65387

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19 gennaio 2024

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In questo articolo

Sommario

Se integrata con una piastra di testa e un design ottico compatibile con microscopi a singolo e due fotoni, la lente del microprisma presenta un vantaggio significativo nella misurazione delle risposte neurali in una colonna verticale in diverse condizioni, inclusi esperimenti ben controllati in stati di fissazione della testa o compiti comportamentali naturali in animali che si muovono liberamente.

Abstract

Con il progresso della microscopia multi-fotone e delle tecnologie molecolari, l'imaging a fluorescenza sta rapidamente crescendo fino a diventare un potente approccio per studiare la struttura, la funzione e la plasticità dei tessuti cerebrali viventi. Rispetto all'elettrofisiologia convenzionale, la microscopia a fluorescenza è in grado di catturare l'attività neurale e la morfologia delle cellule, consentendo registrazioni a lungo termine delle popolazioni di neuroni identificate a risoluzione singola o subcellulare. Tuttavia, l'imaging ad alta risoluzione richiede in genere una configurazione stabile e fissata sulla testa che limita il movimento dell'animale, e la preparazione di una superficie piana di vetro trasparente consente la visualizzazione dei neuroni su uno o più piani orizzontali, ma è limitata nello studio dei processi verticali che attraversano diverse profondità. Qui, descriviamo una procedura per combinare una fissazione della piastra di testa e un microprisma che fornisce immagini multistrato e multimodali. Questa preparazione chirurgica non solo dà accesso all'intera colonna della corteccia visiva del topo, ma consente l'imaging a due fotoni in una posizione fissa sulla testa e l'imaging a un fotone in un paradigma che si muove liberamente. Utilizzando questo approccio, è possibile campionare popolazioni cellulari identificate in diversi strati corticali, registrare le loro risposte in stati di testa fissa e in movimento libero e monitorare i cambiamenti a lungo termine nel corso dei mesi. Pertanto, questo metodo fornisce un saggio completo dei microcircuiti, consentendo il confronto diretto delle attività neurali evocate da stimoli ben controllati e secondo un paradigma comportamentale naturale.

Introduzione

L'avvento dell'imaging fluorescente a due fotoni in vivo 1,2, che combina le nuove tecnologie nei sistemi ottici e gli indicatori di fluorescenza geneticamente modificati, è emerso come una potente tecnica nelle neuroscienze per studiare l'intricata struttura, funzione e plasticità nel cervello vivente 3,4. In particolare, questa modalità di imaging offre un vantaggio senza precedenti rispetto all'elettrofisiologia tradizionale, catturando sia la morfologia che le attività dinamiche dei neuroni, facilitando così il monitoraggio a lungo

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Protocollo

Tutti gli esperimenti sono stati condotti secondo l'UK Animals (Scientific Procedures) Act 1986 in base a licenze personali e di progetto approvate e rilasciate dal Ministero degli Interni del Regno Unito a seguito di un'appropriata revisione etica. Linee transgeniche adulte CaMKII-TTA; GCaMP6S-TRE21 sono stati allevati e la loro progenie è stata utilizzata nell'esperimento. Per la sicurezza degli sperimentatori e il mantenimento delle condizioni di sterilità, tutte le procedure sono state eseguite in condizioni asettiche e con dispositivi di protezione individuale completi.

1. Preparazione pre-operatoria

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Risultati

È stato mostrato il metodo di condurre l'imaging cronico del calcio multistrato in vivo della stessa popolazione neuronale per un periodo di diverse settimane, utilizzando modalità di imaging a uno o due fotoni, in condizioni di movimento libero e testa fissata. In questo caso, è stata dimostrata la capacità di identificare popolazioni neuronali corrispondenti nell'ambito dell'imaging a un fotone mentre l'animale esplorava un'arena aperta al buio (Figura 7A). Le tracce di calcio son.......

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Discussione

Qui, abbiamo mostrato la capacità di osservare e confrontare direttamente i neuroni in condizioni di testa fissa e in movimento libero nelle stesse popolazioni neurali. Mentre abbiamo dimostrato l'applicazione nella corteccia visiva, questo protocollo può essere adattato a una moltitudine di altre aree cerebrali, sia aree corticali che nuclei profondi 24,25,26,27,28, così come altre acquisizioni di dati e configurazioni comportamentali

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Dichiarazioni

Gli autori dichiarano di non avere interessi finanziari concorrenti o conflitti di interesse.

Ringraziamenti

Ringraziamo la Sig.ra Charu Reddy e il Professor Matteo Carandini (Cortex Lab) per i loro consigli sul protocollo chirurgico e sulla condivisione del ceppo di topo transgenico. Ringraziamo il Dr. Norbert Hogrefe (Inscopix) per la sua guida e assistenza durante lo sviluppo dell'intervento. Ringraziamo la Sig.ra Andreea Aldea (Sun Lab) per la sua assistenza con la configurazione chirurgica e l'elaborazione dei dati. Questo lavoro è stato sostenuto dalla Moorfields Eye Charity.

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Materiali

Soluzione di di Coltello da dissezione di Software di lubrificante
Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
cloruro di sodio allo 0,9% per infusione (Vetivex 11) 250 mlDechra20091607soluzione salina per idratazione e ricostituzione del farmaco
18004-1 Trephine fresa da 1,8 mm di diametroFST18004-18Punta da trapano
Siringa da 1 mlTerumoMDSS01SESiringa da 1 ml
23G x 5/8 pollici 6% Ago
LUER Terumo NN-2316R 23G71000 Apparecchio stereotassico automatizzato con software integratoRWD-RWD
Spugna di gelatina emostatica assorbibile (10x10x10mm)SurgisponSSP-101010gel-schiuma
Tamponi imbevuti di alcol isopropilico al 70%9160612Braun Tamponi imbevuti
alcol Foglio di alluminioQualsiasi rivenditore-Foglioper coprire gli occhi durante l'intervento chirurgico
Liquido cerebrospinale artificiale Tocris Bioscience a Bio-Techne Brand3525/25MLACSF
Pompa di microiniezione automatizzataWPI8091
Soluzione di Betadine (10% di Povidone iodato) 500 mlVidene/Ecolab3030440Betadine
Bruker Ultime 2Pplus (personalizzato)Sistema di imaging Bruker-Two-Photon 
Cardiff AldasorberVet-TechAN006Assorbitore per anestesia
CFI S Plan Fluor ELWD ADM 20XCNikonMRH48230Obiettivo 20x
Sistema per anestesia compatto - gas singolo - isoflurano K/F, con concentratore di ossigeno modello: ZY-5AC e unità di evacuazioneVet-TechAN001Sistema per anestesia compatto.
Contec Prochlor Aston PharmaAP2111L1disinfettante (acido ipocloroso)
Iniezione di fosfato di sodio desametasone, USP, 4 mg/ml, NDC: 0641-6145-25HikmaCovetrus:70789desametasone
, tagliente 4 mm, spessore 0,5 mm, acciaio inossidabileFine Science Tools10055-12Coltello per incisino della corteccia
Topo e topo senza puntura su entrambi i lati Barre auricolari per ratti neonataliStoelting51649Barra auricolare
Microscopio fittizioInscopixMicroscopio fittizioPer aiutare con l'impianto
Etanolo (100%) VWR40-1712-25Utilizzato per produrre il 70% di etanolo 
Fisherbrand  Guanti monouso in nitrile indaco DPI Cat IIIFischerScientific17182182Guanti Monitor
omeotermico 50-7222-FApparecchio Harvard50-7222-FSistema di monitoraggio omeotermico/termoforo
Software di elaborazione delle immagini Software di elaborazione delle immaginiImageJ-Softwareelaborazione delle immagini
Inscopix Software di elaborazione dati (IDPS)Inscopix-One-imagingdel calcio software di elaborazione
Insight Duals-232, S/N 2043InSightInsight Spectra X3Laser per imaging a due fotoni
IsoFlo 250ml 100% p/n per inalazioneZoetisWM 42058/4195Isoflurano
Kwik-Sil Adesivo siliconico a bassa tossicitàStrumenti di precisione mondiali (WPI)KWIK-SILAdesivo siliconico
Adattatore di rete MICROMOT NG 2/S, con unità di foratura 60/EPROXXONNO 28 515Trapano portatile
nVoke Integrated Imaging and Optogenetics Systemsystem e software Inscopix-One-photon Kit
di imaging ProView Kit di impiantoInscopixProView Implant Kit di infissi ProViewMicroscopio fittizio, braccio stereotassico e attacco 
Sonda a prisma ProViewInscopix1050-002203Lente a microprisma
Rimadyl (50mg/ml)ZoetisVM 42058/4123Carprofene 
Microscopio per stereotassi su braccio articolato con morsetto da tavoloWPIPZMTIII-AAC microscopio
Kit universale Super-Bond, SUN MedicalPrestige-DentalK058ECemento adesivo
Software di immagine del calcio a due fotonielaborazione dell'imaging del calcio Suite2P-Two-Photon Software di elaborazione dell'imaging del calcio
VapouriserVet-Tech-IsofluranoUnguento
per gli occhi Xailin 5gXailin-NightMLG/28/1551Unguento oftalmico 

Riferimenti

  1. Denk, W., Strickler, J. H., Webb, W. W. Two-photon laser scanning fluorescence microscopy. Science. 248 (4951), 73-76 (1990).
  2. Svoboda, K., Yasuda, R. Principles of two-photon excitation microscopy and its applications to neuroscience. Neuron. 50 (6), 823-839 (2006).....

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