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Articolo metodologico

Dinamica del cAMP in tempo reale in cellule vive utilizzando il rivelatore di differenza fluorescente cAMP in situ

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DOI:

10.3791/66451

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22 marzo 2024

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In questo articolo

Sommario

Il protocollo presentato in questo studio illustra l'efficacia del cAMP Difference Detector In Situ nella misurazione del cAMP attraverso due metodi. Un metodo utilizza uno spettrofotometro per la lettura di piastre a 96 pozzetti con celle HEK-293. L'altro metodo dimostra le singole cellule HASM sotto un microscopio a fluorescenza.

Abstract

cAMP Difference Detector In Situ (cADDis) è un nuovo biosensore che consente la misurazione continua dei livelli di cAMP nelle cellule viventi. Il biosensore è creato da una proteina fluorescente permutata circolarmente legata alla regione cerniera di Epac2. Questo crea un singolo biosensore fluoroforo che mostra un aumento o una diminuzione della fluorescenza al legame del cAMP. Il biosensore esiste nelle versioni rosse e verdi verso l'alto, così come nelle versioni verdi verso il basso e in diverse versioni rosse e verdi mirate alle posizioni subcellulari. Per illustrare l'efficacia del biosensore, è stata utilizzata la versione verde verso il basso, che diminuisce in fluorescenza dopo il legame con il cAMP. Vengono dimostrati due protocolli che utilizzano questo sensore: uno che utilizza uno spettrofotometro di lettura a piastra a 96 pozzetti compatibile con lo screening ad alto rendimento e un altro che utilizza l'imaging a singola cellula su un microscopio a fluorescenza. Sul lettore di piastre, le cellule HEK-293 coltivate in piastre a 96 pozzetti sono state stimolate con 10 μM di forskolina o 10 nM di isoproterenolo, che ha indotto rapide e ampie diminuzioni della fluorescenza nella versione verde verso il basso. Il biosensore è stato utilizzato per misurare i livelli di cAMP in singole cellule muscolari lisce delle vie aeree umane (HASM) monitorate al microscopio a fluorescenza. Il biosensore verde verso il basso ha mostrato risposte simili a popolazioni di cellule quando stimolato con forskolina o isoproterenolo. Questo test a singola cellula consente la visualizzazione della posizione del biosensore con un ingrandimento di 20x e 40x. Pertanto, questo biosensore di cAMP è sensibile e flessibile e consente la misurazione in tempo reale del cAMP sia in cellule immortalizzate che primarie e con singole cellule o popolazioni di cellule. Questi attributi rendono cADDis uno strumento prezioso per studiare le dinamiche di segnalazione del cAMP nelle cellule viventi.

Introduzione

L'adenosina 3',5'-monofosfato ciclico, cAMP, svolge un ruolo centrale nella comunicazione cellulare e nel coordinamento di vari processi fisiologici. Il cAMP agisce come un secondo messaggero, trasmettendo segnali esterni da ormoni, neurotrasmettitori o altre molecole extracellulari per avviare una cascata di eventi intracellulari1. Inoltre, il cAMP è coinvolto in modo complesso in varie vie di segnalazione, comprese quelle associate ai recettori accoppiati a proteine G (GPCR) e alle adenilil ciclasi. Comprendere il ruolo del cAMP nella segnalazione cellulare è fondamentale per svelare i complessi meccanismi che sono alla base delle normali fun....

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Protocollo

I dettagli di tutti i reagenti e le attrezzature utilizzate per lo studio sono elencati nella tabella dei materiali.

1. Saggio ad alto rendimento con spettrofotometro a lettura su piastra

  1. Semina di cellule HEK-293 con il vettore cADDis BacMam in una piastra a 96 pozzetti (Giorno 1)
    1. Dividere e infettare le cellule in un cappuccio virale.
      1. Caldo in HEK (Tabella 1) e tripsina-EDTA allo 0,25% in un bagno d'acqua a 37 °C.
      2. Disinfettare la cappa e i materiali strofinandoli con fazzoletti imbevuti di EtOH.
      3. Rimuovere ed eliminare il terreno HEK dal pall....

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Risultati

Il presente studio ha convalidato il biosensore citosolico sia in saggi con lettore di piastre che al microscopio. Una volta che le cellule hanno espresso il biosensore, sono state stimolate con 10 μM di forskolina (un attivatore diretto dell'adenilil ciclasi), 10 nM di isoproterenolo (un agonista a ß1AR e ß2AR) o veicolo (Figura 1). Le successive variazioni della fluorescenza, indicative della produzione di cAMP, sono state catturate ogni 30 s.

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Discussione

Una misurazione accurata e sensibile del cAMP è fondamentale per comprendere il suo ruolo in vari processi cellulari e per studiare l'attività delle vie di segnalazione dipendenti dal cAMP. Esistono diversi metodi comunemente impiegati per misurare i livelli di cAMP, tra cui ELISA, test radioimmunologico, biosensori FRET e il test cAMP GloSensor 14,15,16,17,18.

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno interessi finanziari concorrenti.

Ringraziamenti

Questo studio è stato supportato dal National Heart, Lung, and Blood Institute (NHLBI) (HL169522).

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Piastra a 96 pozzetti (trasparente)Fisherbrand21-377-203
Piastra da 35 mmGreiner Bio-One627870Piastre per colture cellulari con fondo in vetro
Piastra a 96 pozzetti Corning3904Nero con fondo piatto trasparente
Antibiotico-Antimicotico (100x)Gibco15240062Per terreni HEK e HASM
Microscopio a fluorescenza BZ-XKeyence
Cloruro di calcio (IM)Quality Biological IncE506Per terreni HASM
Provetta da centrifuga (15 mL)Thermo Scientific339651
DMEM ( 1x)Gibco11965092HEK media
DPBS con Mg2+ e Ca2+ Gibco14040-133
DPBS senza Mg2+ e Ca2+Corning14040-133
Siero fetale bovino (FBS)R& Sistemi DS11195per terreni HEK e HASM
ForskolinMillipore344270
Farmaco Green Down cADDis cAMP Kit di analisiMontana Molecolare#D0200GReagente
F-12K Gibco21127022Per terreni HASM
HEPES (1M)Gibco15630080Per terreni HASM
IsoproterenoloSigmaI6504Farmaco
L-glutammina 200 mM (100x)Gibco25030-081Per terreni HASM
Provetta per microcentrifuga (2 mL)Eppendorf22363352
PrimocinInvitrogenant-pm-1Antibiotico per terreni HASM
RNAsi viaThermo Scientific700511 Reagente
Soluzione di idrossido di sodioSigmaS2770Per mezzi HASM
Lettore di piastre Spectrmax M5Molecular Devices Tricostatina
ATCI AmericaT2477Reagente
Tripsina EDTAGibco25200-056

Riferimenti

  1. Krishna, G., Weiss, B., Brodie, B. B. A simple, sensitive method for the assay of adenyl cyclase. J Pharmacol Exp Ther. 163 (2), 379-385 (1968).
  2. Post, S. R., Ostrom, R. S., Insel, P. A. Biochemical methods for detection and measurement of cyclic amp an....

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Ristampe e permessi

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