Preparazione di microsfere di alginato di sodio reticolato con diversi ioni metallici utilizzando la tecnologia microfluidica Electrospray

Sommario

Il protocollo descrive la preparazione di microsfere di alginato di sodio reticolate con diversi ioni metallici utilizzando un dispositivo microfluidico per la progettazione di vettori di farmaci. Sono state studiate anche le proprietà antimicrobiche e il lento rilascio di farmaci di queste microsfere.

Abstract

Le microsfere sono particelle di dimensioni micrometriche che possono caricare e rilasciare gradualmente farmaci tramite incapsulamento fisico o adsorbimento sulla superficie e all'interno dei polimeri. Nel campo della biomedicina, le microsfere di idrogel sono state ampiamente studiate per la loro applicazione come vettori di farmaci grazie alla loro capacità di ridurre la frequenza di somministrazione del farmaco, minimizzare gli effetti collaterali e migliorare la compliance del paziente. L'alginato di sodio (ALG) è un polisaccaride lineare presente in natura con tre legami glicosidici dello scheletro. Ci sono due gruppi ossidrilici ausiliari presenti in ciascuna delle parti del polimero, che hanno le caratteristiche di una porzione ossidrilica alcolica. Le unità ALG sintetiche possono subire reazioni chimiche di reticolazione con ioni metallici, formando una struttura a rete reticolata di pile di polimeri, formando infine un idrogel. Le microsfere di idrogel possono essere preparate utilizzando un semplice processo che coinvolge le proprietà di reticolazione ionica dell'ALG. In questo studio, abbiamo preparato microsfere di idrogel a base di ALG (ALGMS) utilizzando una strategia di elettrodeposizione microfluidica. Le microsfere di idrogel preparate erano di dimensioni uniformi e ben disperse, grazie al controllo accurato del flusso di elettrospray microfluidico. Gli ALGMS reticolati con diversi ioni metallici sono stati preparati utilizzando una tecnica di elettrospray microfluidica che combina microfluidica e un elevato campo elettrico, e sono state studiate le sue proprietà antimicrobiche, la lenta capacità di rilascio del farmaco e la biocompatibilità. Questa tecnologia è promettente per l'applicazione nello sviluppo e nella produzione di farmaci avanzati.

Introduzione

I sistemi di somministrazione dei farmaci sono un punto di riferimento per la ricerca nel campo dell'ingegneria dei biotessuti, con l'obiettivo di migliorare l'efficienza e l'efficacia della somministrazione dei farmaci e ridurre le reazioni avverse e gli effetti collaterali¹. Tra questi sistemi, le microsfere di idrogel, caratterizzate da buona biocompatibilità, proprietà meccaniche regolabili e plasticità funzionale, sono uno dei veicoli più comunemente utilizzati per il caricamento e la somministrazione di farmaci². Possono essere utilizzati sia per il rilascio lento che controllato di farmaci, forniscono buoni effetti protettivi per i farmaci, evitano o riducono al minimo gli effetti non specifici dei farmaci in altri tessuti e mirano alla somministrazione di farmaci a specifiche strutture tissutali³. Pertanto, le microsfere di idrogel sono diventate un nuovo ed efficiente sistema di somministrazione di farmaci, con la ricerca in questo campo che sta gradualmente emergendo⁴.

Le microsfere di idrogel sono tipicamente sintetizzate da materiali biodegradabili, tra cui polisaccaridi, proteine e polimeri naturali⁵. Tra questi, l'ALG è un polisaccaride biocompatibile e biodegradabile estratto dalle alghe brune marine⁶. La sua catena molecolare contiene gruppi ossidrilici e carbossilici liberi che possono reticolare con la maggior parte dei cationi bivalenti o multivalenti per formare una struttura di idrogel insolubile in acqua con una rete tridimensionale⁵. Le microsfere di idrogel formate dall'ALG possono essere convertite in polielettroliti caricati negativamente in soluzioni neutre e alcaline. Questa repulsione tra le cariche negative provoca il rigonfiamento delle microsfere, consentendo il rilascio del principio attivo o del farmaco incapsulato. Queste proprietà hanno portato a considerare le microsfere di ALG come promettenti vettori di farmaci ampiamente utilizzati per il caricamento di farmaci e il rilascio controllato⁷.

Esistono vari metodi per la preparazione di microsfere di idrogel. I metodi tradizionali di preparazione degli ALGMS di solito includono il metodo sol-gel o il metodo emulsione-sol. Questi metodi prevedono fasi come la precipitazione, la co-precipitazione e le reazioni di gelificazione per ottenere le microsfere bersaglio⁸. Negli ultimi anni, con il continuo sviluppo della tecnologia microfluidica, il metodo elettrospray microfluidico è diventato gradualmente un metodo di preparazione delle microsfere efficiente e preciso⁹. Questo metodo utilizza la tecnologia microfluidica per spruzzare elettromedicalmente una soluzione polimerica attraverso un ugello microfine per formare goccioline e microsfere di dimensioni micrometriche durante il successivo processo di polimerizzazione o reticolazione¹⁰. Rispetto al metodo tradizionale, l'elettrospray microfluidico offre un controllo preciso della dimensione e della morfologia delle particelle di microsfera, regolando parametri quali la portata della soluzione, la tensione e la dimensione dell'ugello fine¹¹. Consente inoltre la preparazione continua ad alta velocità delle microsfere, migliorando l'efficienza della preparazione e mantenendo condizioni di reazione blande. Inoltre, gli ALGMS possono essere preparati per possedere varie funzioni, come farmaci a rilascio controllato e catalizzatori caricati, consentendo la loro facile applicazione in vari campi.

Qui presentiamo un protocollo per la preparazione di microsfere ALG utilizzando il metodo dell'elettrospray microfluidico. Il processo prevede il passaggio di una soluzione ALG attraverso un dispositivo microfluidico e la sottoposizione a elettrospray. Le goccioline risultanti sono state raccolte nella soluzione contenente diversi ioni metallici (Ca²⁺, Cu²⁺, Zn²⁺ e Fe³⁺) per avviare la reazione di reticolazione. Questa reazione migliora la stabilità e l'adesione delle microsfere e le dota di diverse funzionalità. Questo metodo è facile da eseguire e le microsfere sintetizzate mostrano una buona uniformità dimensionale nella loro morfologia. Inoltre, abbiamo studiato le loro proprietà antimicrobiche, la lenta capacità di rilascio del farmaco e la biocompatibilità. Questo protocollo sarà utile per l'ulteriore sviluppo e produzione di farmaci.

Protocollo

Il sangue utilizzato negli esperimenti è stato ottenuto da topi femmina BALB/c di grado SPF del peso di 20-25 g e di circa 7 settimane. Il Comitato Etico per la Sperimentazione Animale dello Zhejiang Shuren College ha approvato tutte le procedure sperimentali e di cura degli animali.

1. Preparazione della soluzione

1. Pesare l'ALG e scioglierlo in acqua ultrapura agitando a bagnomaria a 50 °C per ottenere una soluzione di ALG al 2%.
2. Preparare separatamente la frazione di massa con soluzioni al 5% (o la concentrazione di massa molare è 0,3 M) di CaCl₂, FeCl₃, ZnSO₄ e CuSO₄ in acqua ultrapura. Versare ogni soluzione separatamente in una vasca di raccolta.

2. Dispositivo elettrospray microfluidico

1. Prendete un tubo capillare di vetro e posizionatelo sulla fiamma di una fiamma ossidrica per ammorbidirlo, quindi allungatelo a vari diametri (50 μm-500 μm). Tagliare le parti fini con un tagliavetro e lucidare delicatamente la porta della punta con carta vetrata al carburo di silicio di alta qualità. Dopo la pulizia, collegare l'estremità spessa del tubo capillare a un tubo lungo e l'altra estremità del tubo a un ago di erogazione e una siringa da 5 ml (Figura supplementare 1).
   NOTA: Gli spigoli vivi dei tagli dei tubi di vetro sono difficili da inserire nel tubo; Pertanto, la rottura dovrebbe essere arrotondata sul bordo della fiamma.
2. Collegare la siringa alla pompa a siringa microfluidica e il tubo capillare a un'estremità al supporto. Collegare la clip terminale rossa ad alta tensione dell'alimentatore ad alta tensione all'ago di erogazione della siringa e posizionare la clip argentata nel liquido di raccolta. Questa configurazione crea un semplice dispositivo elettrospray microfluidico (Figura 1A).
   NOTA: Posizionare il tubo capillare perpendicolarmente al tavolo.

3. Preparazione delle microsfere ALG

1. Posizionare le piastre di raccolta differenziata contenenti diversi ioni metallici direttamente sotto il tubo capillare. Accendere la pompa a siringa microfluidica e selezionare Avanti veloce per adescare la provetta con l'ALG, quindi impostare la portata appropriata (2 mL/h).
2. Accendere l'interruttore di alimentazione ad alta tensione e ruotare la manopola per impostare la tensione appropriata (5-7 kV).
3. Aggiungere 20 mL di soluzione a ciascuna delle piastre di Petri da 90 mm per raccogliere le microsfere di ALG e formare ALGMS reticolati con diversi ioni metallici (Figura 1B).
4. L'ALG forma microsfere sotto l'azione del campo elettrico e della gravità in diverse soluzioni di raccolta ionica in pochi secondi. Aspirare le microsfere con una pipetta sterilizzata e trasferirle in singole provette da centrifuga da 1,5 ml per ottenere microsfere di idrogel Zn²⁺, Ca²⁺, Cu²⁺ e Fe³⁺ -ALG (Figura 1C). Etichettare le provette Zn-ALGMS, Ca-ALGMS, Cu-ALGMS e Fe-ALGMS.
   NOTA: Microsfere di diverso diametro possono essere ottenute regolando parametri quali tensione, diametro della punta, portata e concentrazione della soluzione.
5. Prelevare una piccola quantità delle microsfere preparate, disperderle il più uniformemente possibile in PBS e posizionarle al microscopio per la visualizzazione.
6. Selezionando casualmente 10 campi di osservazione nello stesso lotto di microsfere, importare le immagini da misurare nel software ImageJ, convertire le immagini nella modalità in scala di grigi appropriata e utilizzare la tecnologia di segmentazione della soglia per definire con precisione l'area delle particelle target e avviare la funzione di analisi delle particelle in modo che ImageJ possa identificare e misurare le particelle target. Ottenere i dati sulle microsfere e quindi importare i dati nel software Origin per l'analisi e la mappatura delle dimensioni delle particelle.

4. Test delle prestazioni antimicrobiche

1. Preparare 5 mL di sospensioni di Staphylococcus aureus (S. aureus) ed Escherichia coli (E. coli) con una torbidità batterica iniziale di 0,2 mcF utilizzando un terreno liquido Luria-Bertani (LB).
2. Aggiungere 10 mL di ciascuna soluzione batterica a 4 provette da centrifuga sterili da 15 mL. Quindi, aggiungere 0,5 mL di Zn-ALGMS, Ca-ALGMS, Cu-ALGMS e Fe-ALGMS ALG a ciascuna provetta e metterli in un agitatore a temperatura costante a 37 °C e 200 giri/min per 12 ore. Aggiungere una quantità uguale di soluzione fisiologica al gruppo di controllo.
3. Diluire ogni soluzione batterica a 10⁵ volte con acqua sterile. Utilizzare una perla di vetro sterile per spargere 200 μL di soluzione batterica su un mezzo solido LB.
4. Stendere la soluzione in modo rapido e uniforme sulla lastra di rivestimento, evitando avanti e indietro nella stessa zona. Quindi, porre le piastre in un'incubatrice a 37 °C per 12 ore. Osserva le colonie di diversi gruppi.
   NOTA: Tutte le procedure asettiche devono essere eseguite vicino a una lampada ad alcool. Sterilizzare i recipienti di coltura microbica, gli utensili per l'inoculazione e i terreni di coltura.

5. Test di rilascio del farmaco

1. Per valutare la capacità di rilascio del farmaco di diverse microsfere, utilizzare l'albumina sierica bovina (BSA) come farmaco modello caricato. Aggiungere 500 μl di ciascuna microsfera (Ca-ALGMS, Cu-ALGMS, Zn-ALGMS e Fe-ALGMS) a 1 mg/mL di sospensione di BSA per 24 ore.
2. Per il test di rilascio del farmaco, aggiungere ciascun campione saturo a 5,0 M di soluzione salina tamponata con fosfato (PBS; pH 7,4), seguita da agitazione per 15 minuti a 37 °C con agitazione continua a 80 giri/min.
3. Utilizzare 100 μl della soluzione e sostituire il terreno con uno nuovo a 1, 3, 6, 12, 24, 36 e 48 ore.
4. Quantificare le concentrazioni di proteine surnatanti in momenti specifici utilizzando un kit BCA secondo le istruzioni del produttore. Misurare quantitativamente il farmaco rilasciato mediante marcatore enzimatico per ottenere l'assorbanza corrispondente e convertire il valore misurato in concentrazione effettiva del farmaco secondo la curva standard. Calcola il tasso di rilascio del farmaco utilizzando la seguente formula:
   Percentuale di rilascio di farmaco = (concentrazione di farmaco rilasciato in un momento specifico / concentrazione iniziale del farmaco) x 100%
5. A intervalli regolari, rimuovere un volume uguale di PBS da ciascun pozzetto e sostituirlo con un volume uguale di terreno fresco.

6. Test di emolisi

1. Porre i Ca-ALGMS, i Cu-ALGMS, gli Zn-ALGMS e i Fe-ALGMS preparati in PBS e incubarli a 37 °C per 24 ore per formulare la soluzione di incubazione.
2. Ottenere sangue intero da topi sani BALB/c mediante flebotomia oculare, raccolto in provette anticoagulate contenenti citrato di sodio. Agitare e centrifugare a 1509 x g per 15 min per ottenere globuli rossi.
3. Lavare i globuli rossi 2x-3x con PBS e preparare una soluzione di globuli rossi al 10% con PBS.
4. Preparazione di vari ALGMS: Prelevare 500 μL di ciascuna microsfera per il gruppo sperimentale, 1 mL di acqua ultrapura (ddH₂O) per il gruppo di controllo positivo e 1 mL di soluzione di PBS per il gruppo di controllo negativo e mescolare ciascuno con 20 μL di soluzione di cellule del sangue.
5. Incubare i campioni a 37 °C per 4 ore, centrifugare a 1509 x g, 15 min. Tenere da parte il surnatante e fotografare i globuli rossi di ciascun gruppo dopo l'emolisi.
6. Prendi il tasso di emolisi del gruppo di controllo positivo come 100% e il gruppo di controllo negativo come 0%. Misurare i valori di assorbanza dei surnatanti in ciascun gruppo e calcolare il tasso di emolisi utilizzando la formula:
   Emolisi (%) = (Valori di assorbanza dei surnatanti di ciascun gruppo-
   Valori di assorbanza della sola acqua distillata) / (Valori di assorbanza del gruppo di controllo positivo - Valori di assorbanza della sola acqua distillata) x 100

7. Test di citobiocompatibilità

1. Lavare i diversi ALGM 2 volte con PBS e metterli in una capsula di Petri da 5 ml per 15 minuti e scartare il surnatante.
2. Aggiungere separatamente diversi ALGM a 0,2 mL in terreno di coltura completo (DMEM) contenente il 10% di FBS, incubare a 37 °C per 24 ore e filtrare la soluzione per ottenere il percolato.
3. Coltura di cellule NIH3T3 a circa il 70% di densità cellulare in piastre a 24 pozzetti, trattamento delle cellule NIH3T3 con una soluzione di lisciviazione a microsfere e continuazione della coltura con terreno completo per altre 24 ore.
4. Rimuovere il terreno di coltura cellulare e lavare le cellule con PBS.
5. Valutare la vitalità cellulare utilizzando il test Calcein-AM/PI. Prendere 2,5 μL di soluzione di Calceina-AM (4 mM) e 12,5 μL di soluzione PI (2 mM) e aggiungerli a 5 mL di 1x PBS e mescolare bene per ottenere una soluzione di lavoro con 2 μM di Calcein-AM e 5 μM di PI.
6. Aggiungere la soluzione di lavoro alle piastre di coltura cellulare precedentemente seminate a 500 μl per pozzetto, incubare a 37 °C sotto protezione dalla luce per 15 minuti e osservare e fotografare al microscopio a fluorescenza invertita. Impostare tre repliche per ogni gruppo.
7. Calcolare la vitalità cellulare secondo la seguente formula:
   Vitalità cellulare (%) = numero di cellule vitali / (numero di cellule vitali + numero di cellule morte)

Risultati

Caratterizzazione di ALGMS reticolati con diversi ioni metallici
La morfologia ottica di Ca-ALGMS, Cu-ALGMS, Zn-ALGMS e Fe-ALGMS è mostrata nella Figura 2, mostrando una buona sfericità, superficie liscia, distribuzione granulometrica uniforme (Figura 2 supplementare) e un'eccellente monodispersività. Abbiamo inoltre eseguito la caratterizzazione microscopica utilizzando la microscopia elettronica a scansione (SEM) e l'analisi della spettroscopia a dispersione di energia (EDS). Come mostrato nella Figura 3, le microsfere erano generalmente sferiche con rotondità ben definita. La superficie di Zn-ALGMS era distribuita in modo non uniforme, apparendo più ruvida con molte rughe. Abbiamo eseguito la spettroscopia a dispersione di energia per determinare la distribuzione del contenuto di ioni metallici coinvolti nella reazione di reticolazione nel gel. In particolare, la dimensione della microsfera può essere regolata modificando parametri come la distanza di raccolta, la concentrazione di gel e la tensione del campo elettrico¹². Nel protocollo delineato, regolando i parametri del dispositivo microfluidico e la concentrazione del liquido, è possibile ottenere facilmente particelle di diverse dimensioni in base a requisiti specifici.

Valutazione delle proprietà antimicrobiche
Abbiamo valutato la capacità antimicrobica di diverse microsfere utilizzando il metodo della piastra, come mostrato nella Figura 4. Diverse microsfere hanno mostrato attività antibatterica contro E. coli e S. aureus, con Cu-ALGMS e Zn-ALGMS che hanno mostrato le più forti proprietà antibatteriche. Questa maggiore efficacia può essere attribuita all'attività antimicrobica dei metalli, in particolare il rame (Cu) e lo zinco (Zn)¹³. Sukhodub et al. hanno dimostrato che Fe³⁺, Zn²⁺, Ca²⁺ e Cu²⁺ hanno mostrato effetti antibatterici sinergici con il chitosano, mentre i campioni senza chitosano non hanno mostrato tale attività, convalidando l'effetto antibatterico sinergico dei complessi formati¹⁴. I risultati ottenuti sono in linea con questo studio, con Cu-ALGMS e Zn-ALGMS superiori ad altre microsfere di idrogel nel trattamento delle malattie infettive batteriche.

Valutazione delle proprietà di rilascio dei farmaci
La valutazione del rilascio di farmaci da diverse microsfere di idrogel di alginato a base di metallo utilizzando BSA come farmaco modello ha rivelato differenze nei loro profili di rilascio. (Figura supplementare 3). Gli ioni hanno mostrato una migliore capacità di rilascio lento del farmaco rispetto a quelli di altri materiali. Il tasso di rilascio del farmaco di Fe²⁺ era relativamente più veloce di quello degli altri tre ioni, mentre il tasso di rilascio del farmaco di Ca²⁺ e Zn²⁺ era relativamente più lento. Questi risultati evidenziano le differenze negli effetti dei diversi ioni sul rilascio del farmaco. Ipotizziamo che il Fe²⁺ possa interagire con il farmaco o si leghi in un modo che ne facilita il rilascio, mentre il Ca²⁺ e lo Zn²⁺ si legano più strettamente al farmaco, o ci sono altri fattori che limitano il tasso di rilascio. Questo rilascio prolungato di farmaco dalle microsfere di idrogel può essere correlato alla forza di reticolazione tra il metallo e il polisaccaride di alginato. Inoltre, la differenza nella capacità di adsorbimento di metalli diversi rispetto a quella della BSA ha probabilmente contribuito alle differenze osservate nelle capacità di ritardo dei farmaci.

Valutazione della biocompatibilità
Una buona biocompatibilità è un prerequisito per i vettori di somministrazione di farmaci nelle applicazioni cliniche. Pertanto, abbiamo valutato l'emocompatibilità delle microsfere utilizzando un test di emolisi in vitro . Abbiamo usato acqua pura come controllo positivo e la soluzione PBS come controllo negativo. I risultati sperimentali sono mostrati nella Figura 4 supplementare, rivelando che i globuli rossi nella sospensione sono rimasti intatti al contatto con diverse microsfere, indicando un'emolisi minima da parte delle microsfere. I risultati della citobiocompatibilità hanno mostrato che le microsfere non hanno influenzato l'attività cellulare (Figura 5 supplementare). Questi risultati hanno indicato che le microsfere hanno una buona compatibilità con le cellule del sangue.

Figura 1: Preparazione di microsfere di idrogel di alginato. (A) Installazione della tecnologia elettrospray microfluidica. (B) L'immagine in tempo reale del processo di elettrospray microfluidico. (C) Le microsfere preparate di idrogel di alginato Ca²⁺, Cu²⁺, Zⁿ²⁺ e Fe³⁺ . Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Figura 2: Micrografia delle microsfere di idrogel di alginato. Micrografia di (A) Ca-ALGMS, (B) Cu-ALGMS, (C) Zn-ALGMS e (D) Fe-ALGMS in PBS (pH 7.4). Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Figura 3: Microscopia elettronica a scansione e spettroscopia a dispersione di energia. Le immagini mostrano la caratterizzazione di (A) Ca-ALGMS, (B) Cu-ALGMS, (C) Zn-ALGMS e (D) Fe-ALGMS con i e ii per i dati di microscopia a scansione e iii-v per i dati di spettroscopia. Le immagini iii-v mostrano una mappatura EDS, in cui l'EDS seleziona un volto sulla superficie del campione da scansionare per ottenere informazioni sulla distribuzione elementare su tutta l'area. La modalità di scansione della mappa viene utilizzata in applicazioni per l'analisi composizionale, l'analisi delle zone di fase e la distribuzione granulometrica dei materiali, in cui ogni elemento è rappresentato da un colore diverso, come mostrato. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Figura 4. Proprietà antimicrobiche delle microsfere. (A) Le proprietà antimicrobiche dei gruppi sono state testate utilizzando il metodo dello striscio batterico. (B, C) Quantificazione dei risultati della conta dello striscio batterico per ciascun gruppo. I campioni di controllo mostrano colonie cresciute su terreno LB senza alcuna aggiunta. Le colonie relative per gli altri batteri sono state calcolate prendendo il conteggio dei cloni del gruppo di controllo al 100% e utilizzandolo come linea di base. La barra di errore: deviazione standard, n = 3. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Figura 1 supplementare: Un tubo di vetro è collegato alla siringa attraverso un lungo tubo di gomma. Clicca qui per scaricare questo file.

Figura supplementare 2: Dimensione delle particelle. (A) Zn-ALGMS, (B) Ca-ALGMS, (C) Cu-ALGMS, (D) Fe-ALGMS. Per tutti i campioni è stata utilizzata una concentrazione molare del 5%. Clicca qui per scaricare questo file.

Figura supplementare 3: Rilascio di farmaci. La curva di rilascio del farmaco di Ca-ALGMS, Cu-ALGMS, Zn-ALGMS e Fe-ALGMS in PBS (pH 7,4). La barra di errore: deviazione standard, n = 3 Fare clic qui per scaricare questo file.

Figura 4 supplementare: Saggio di emolisi di Ca-ALGMS, Cu-ALGMS, Zn-ALGMS e Fe-ALGMS. PC (controllo positivo): ddH₂O; NC (Controllo negativo): PBS. La barra di errore: deviazione standard, n = 3. Clicca qui per scaricare questo file.

Figura 5 supplementare: Citotossicità di microsfere reticolate con ioni diversi. È stata effettuata la valutazione della biocompatibilità di Zn-ALGMS, Ca-ALGMS, Cu-ALGMS e Fe-ALGMS. Per eseguire il test è stato utilizzato Calcein-AM/PI e per i risultati sono stati selezionati casualmente 5 campi visivi. ImageJ è stato utilizzato per analizzare il rapporto tra globuli rossi e cellule morte per ottenere la vitalità cellulare relativa. 1. PC, controllo positivo, 2.NC, controllo negativo, 3. Zn-ALGMS, 4. Ca-ALGMS, 5. Cu-ALGMS, 6. Fe-ALGMS, La barra di errore: deviazione standard, n = 3. Clicca qui per scaricare questo file.

Discussione

In questo protocollo, presentiamo un metodo per la preparazione di ALGMS basato sulla tecnologia microfluidica elettrospray. Il metodo è semplice da usare e produce un gran numero di microsfere con rotondità uniforme e diametro controllabile. Questo approccio offre convenienza ai ricercatori e può promuovere la ricerca e l'applicazione di microsfere di idrogel. Inoltre, attraverso la reticolazione con diversi ioni metallici, sono state migliorate la stabilità e la bioattività degli ALGMS. Negli esperimenti antimicrobici, Cu-ALGMS e Zn-ALGMS hanno mostrato significativi effetti inibitori batterici.

Le microsfere di idrogel sono microstrutture flessibili con un'eccellente plasticità, che consentono un'efficace somministrazione di farmaci attraverso la selezione di materiali specifici e la progettazione strutturale. L'alginato, un polisaccaride naturale che gelifica in condizioni blande, è biocompatibile, biodegradabile e non tossico. Le microsfere di alginato di sodio su scala micron sono ampiamente utilizzate in biochimica e biomedicina, compresa la ricerca farmaceutica, la somministrazione di farmaci e l'ingegneria tissutale. Un vantaggio chiave delle microsfere di alginato di sodio nelle applicazioni di somministrazione di farmaci è la loro capacità di rilascio prolungato del farmaco, garantendo il mantenimento di alte concentrazioni del principio attivo farmaceutico per una durata prolungata¹⁴. I nostri esperimenti di rilascio prolungato di farmaci hanno rivelato che gli ALGM con diversi cross-linking ionici hanno la capacità di sostenere il rilascio di farmaci e possono essere utilizzati per applicazioni di somministrazione di farmaci.

I metodi di fabbricazione comuni per le microsfere di idrogel includono l'emulsione in batch, la sminuzzatura meccanica, la litografia, l'emulsione microfluidica e l'elettrospray ^8,15. I vantaggi dell'emulsione batch e dei metodi di frantumazione meccanica risiedono nella semplicità del metodo di fabbricazione e nell'elevata efficienza di produzione. Tuttavia, è difficile controllare la forma delle singole microsfere di idrogel utilizzando questi metodi. La fotolitografia consiste nel focalizzare la luce su una maschera, una lastra o uno stampo per polimerizzare la reticolazione e formare microsfere di idrogel. Tuttavia, l'efficienza produttiva di questo metodo è facilmente influenzata dalla piastra della maschera, dalla fonte di luce e dallo stampo. Inoltre, il metodo dell'emulsione microfluidica può controllare meglio il processo di stampaggio delle microsfere di idrogel e produrre microsfere di idrogel con forme specificate; Tuttavia, la sua efficienza produttiva è bassa¹⁶. Rispetto a questi metodi, il metodo elettrospray microfluidico può produrre microsfere di idrogel con dimensioni uniformi, forma regolare e dimensione delle particelle regolabile¹⁷. Il passaggio chiave di questo protocollo è la preparazione delle microsfere. La dimensione e la forma delle microsfere possono variare a seconda della planarità del tubo di vetro, del valore di tensione e della portata¹⁸. Ci sono anche alcune limitazioni nell'uso della tecnologia elettrospray microfluidica per preparare le microsfere, come la tendenza dei microcanali all'intasamento e la resa limitata, la limitata compatibilità dei materiali e la difficoltà di scale-up del processo e la difficoltà di controllo e monitoraggio del processo. Ciò limita in una certa misura la loro applicazione diffusa¹⁹.

In sintesi, la tecnologia elettrospray microfluidica è un metodo di preparazione delle microsfere maturo, che offre il vantaggio della sintesi in un'unica fase. Ottimizzando i parametri dimensionali del canale di flusso e controllando la concentrazione e la portata del materiale, è possibile ottenere facilmente microsfere di varie morfologie e dimensioni. In particolare, il processo coinvolge solo la fase acquosa e nessun tensioattivo aggiuntivo, il che lo rende ecologico e semplice da usare, evitando la necessità di complessi processi di lavaggio. Questo metodo fornisce una strategia per la produzione di microsfere da materiali idrogel simile al processo di gelificazione dell'alginato.

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo

Nome	Azienda	Numero di catalogo	Commenti
Schermo a 120 maglie	Solarbio, Cina	YA0946
Bruciatore ad alcool	Solarbio, Cina	YA2320
BALB / c topi	Wukong Biotechnology, Cina
Reagente per il test dell'acido bicinchoninico	Meilunbio, Cina	MA0082
Siero bovino Albumina	Lablead, Cina	9048-46-8
CaCl2 nbsp; polvere	Aladdin, Cina	10043-52-4
Calcein-AM/PI	Biosharp, Cina	BL130A
Provette da centrifuga	Corning, America	430290
CuSO4   polvere	Jnxinyuehuagong, Cina	7758-99-8
	DMEM Gibicol, Cina	C11995500BT
FeCl3   polvere	Aladdin, Cina	7705-08-0
Fetale Siero Bovino	HAKATA, Cina	HN-FBS Tubi di
vetro	Sartorius, Germania	CC0028
Microscopia ottica	Evidentscientific, Giappone	BX53 (LED)
Pompa a siringa microfluidica	Longerpump, Inghilterra	LSP01-3A
NIH3T3	HyGyte, Cina	TCM-C752
Piastra di Petri	Thermofisher, America	150464
Soluzione salina tampone fosfato	Thermofisher, America	3002
Microscopio elettronico a scansione	Thermofisher, America	Axia ChemiSEM
Polvere di alginato di sodio	Bjbalb, Cina	Y13095
ZnSO4 polvere	Jnxinyuehuagong, Cina	7733-02-0