Qui, presentiamo un protocollo per lo studio del movimento ortodontico dei denti (OTM), che funge da modello adatto per studiare i meccanismi di adattamento osseo, riassorbimento radicolare e risposta delle cellule ossee agli stimoli meccanici. Questa guida completa fornisce informazioni dettagliate sul modello OTM, sull'acquisizione della microtomografia computerizzata e sulla successiva analisi.
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Articolo metodologico
Studiare il movimento ortodontico dei denti nei topi
In questo articolo
Sommario
Abstract
Il movimento ortodontico dei denti (OTM) rappresenta un processo dinamico in cui l'osso alveolare subisce un riassorbimento nei siti di compressione e una deposizione nei siti di tensione, orchestrati rispettivamente da osteoclasti e osteoblasti. Questo meccanismo funge da modello prezioso per lo studio di vari aspetti dell'adattamento osseo, tra cui il riassorbimento radicolare e la risposta cellulare agli stimoli della forza meccanica. Il protocollo qui descritto offre un approccio diretto per studiare l'OTM, stabilendo 0,35 N come forza ottimale in un modello murino che impiega una molla elicoidale in nichel-titanio (NiTi). Utilizzando l'analisi della tomografia microcomputerizzata, abbiamo quantificato l'OTM valutando la discrepanza nella distanza lineare alla giunzione cemento-smalto. La valutazione ha incluso anche un'analisi del riassorbimento radicolare infiammatorio indotto dall'ortodonzia, valutando parametri come la densità minerale radicolare e la percentuale di volume radicolare per volume totale. Questo protocollo completo contribuisce a far progredire la nostra comprensione dei processi di rimodellamento osseo e a migliorare la capacità di sviluppare strategie di trattamento ortodontico efficaci.
Introduzione
Il rimodellamento osseo è un processo continuo orchestrato da osteoclasti, osteoblasti, cellule di rivestimento osseo e osteociti, essenziale per mantenere l'integrità dello scheletro adulto 1,2. Guidato principalmente dalla differenziazione e dall'attività di osteoclasti e osteoblasti, questo processo dinamico comporta il riassorbimento e la deposizione dell'osso, innescato da stress meccanico e carico 3,4,5.
Gli esperimenti sugli animali svolgono un ruolo fondamentale nel chiarire gli intricati meccanismi biologici e cellulari alla base del movimento ortodontico dei denti (OTM)6,7. Questo processo coinvolge una vasta gamma di tipi di cellule, come osteoblasti, osteoclasti, osteociti, fibroblasti e cellule immunitarie come macrofagi e cellule T, situate all'interno dell'osso mascellare e del legamento parodontale 7,8. Queste cellule rispondono dinamicamente agli stimoli meccanici e ai cambiamenti nell'ambiente locale, influenzando la composizione e l'architettura dell'osso circostante 7,8. Inoltre, innescano anche una risposta infiammatoria a livello cellulare, anche se non sono presenti agenti patogeni. Questa risposta infiammatoria svolge un ruolo nell'aumentare il turnover del tessuto osseo9.
Vari modelli animali, tra cui topi, ratti, conigli, cani e scimmie, sono stati utilizzati negli studi sperimentali di OTM 7,8,10. Tra questi, i roditori, in particolare i topi, sono favoriti per studiare le fasi iniziali del movimento dei denti e del rimodellamento osseo6. Ricerche precedenti hanno sottolineato i vantaggi dell'utilizzo di modelli murini rispetto ai modelli di ratto, principalmente a causa dell'ampia disponibilità di ceppi geneticamente modificati, che consentono un'esplorazione dettagliata delle influenze genetiche in OTM 7,11. Attualmente, due modelli principali sono impiegati per indurre il movimento dei denti nei topi. Il primo metodo prevede l'inserimento di una molla elicoidale in nichel-titanio (NiTi) tra il primo molare superiore e gli incisivi superiori 4,12. Il secondo approccio prevede il posizionamento di una fascia elastica all'interno dello spazio interdentale tra il primo e il secondo molare superiore13. Gli esiti primari analizzati includono tipicamente l'entità del movimento dei denti e la microarchitettura ossea, preferibilmente valutati utilizzando la micro-tomografia computerizzata (micro-CT)14. Idealmente, valutare l'integrità delle radici dentali è importante per garantire che vengano impiegate forze adeguate per produrre OTM4.
Sebbene la micro-CT sia ampiamente riconosciuta come il gold standard per la valutazione della microarchitettura dei tessuti mineralizzati14, l'assenza di metodologie e protocolli standardizzati per la scansione, l'analisi e la refertazione dei dati presenta spesso sfide nel discernere le procedure precise impiegate, nell'interpretare i risultati e nel facilitare il confronto tra diversi modelli OTM 14,15.
Qui presentiamo una guida passo passo al modello murino OTM, che include l'acquisizione e l'analisi micro-CT di OTM, microstruttura ossea e radici dentali. Questo metodo comporta l'applicazione di una forza meccanica controllata al primo molare per indurre il movimento all'interno dell'osso mascellare. La scelta di questo metodo deriva da diversi fattori, tra cui la fattibilità, la pertinenza e la precisione. Tale approccio consente un'analisi quantitativa dettagliata, fornendo preziose informazioni sui processi biologici alla base del movimento ortodontico dei denti e facilitando lo sviluppo di migliori strategie di trattamento ortodontico in futuro.
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Protocollo
Tutte le procedure hanno rispettato rigorosamente gli standard etici stabiliti dal Comitato Etico dell'Universidade Federal de Minas Gerais (n. 166/2022). Prima di ogni esperimento, è obbligatorio un calcolo della dimensione del campione. Utilizzare topi maschi di tipo selvatico C57BL6/J di 8-10 settimane del peso di circa 20-30 g. I topi devono essere alloggiati in una gabbia all'interno di una stanza mantenuta a 25 °C, rispettando un ciclo di 12 ore luce/12 ore buio. Dopo l'attacco della bobina, l'animale deve essere nutrito con una dieta morbida. Il monitoraggio quotidiano dovrebbe includere valutazioni del peso corporeo e della salute generale.
1. Rimodellamento osseo alveolare indotto meccanicamente
- Utilizzando una pinza a taglio distale, tagliare la molla a spirale aperta NiTi da 0,25 x 0,76 pollici alle seguenti dimensioni di sei anelli e due estremità a forma di anello posizionate perpendicolarmente alla molla utilizzando pinze ortodontiche Weingart.
- Modellare il filo rotondo di cromo-nichel (CrNi) da 0,20 mm di diametro nella configurazione desiderata con estremità a forma di anello utilizzando una pinzetta Mathieu e uno strumento di forma rotonda come riferimento dimensionale.
- Unisci le estremità a forma di anello della bobina e il filo CrNi rotondo da 0,20 mm.
- Anestetizzare l'animale con un'iniezione intraperitoneale di 0,2 mL di soluzione contenente xilazina (10 mg/Kg) e ketamina (100 mg/Kg). Prima di iniziare la procedura, valutare la profondità dell'anestesia utilizzando il riflesso del pedale. Pizzica con cura una delle dita dell'animale usando una pinzetta. L'assenza di un riflesso indica un adeguato piano di anestesia generale. Per evitare lesioni corneali e dolore post-operatorio, applicare un lubrificante oculare dopo che l'animale è stato anestetizzato.
- Posizionare l'animale in decubito dorsale su un tavolo chirurgico, immobilizzando gli arti per limitare il movimento e consentire l'accesso intraorale.
- Utilizza un apribocca, realizzato con un filo di 0,50 mm di diametro e fissato con un filo da 0,08 mm, per facilitare la visualizzazione completa impedendo il movimento della testa. Utilizzare il lato destro come lato sperimentale (lato OTM) e il lato sinistro come controllo senza bobina ortodontica (lato Control).
NOTA: La visualizzazione avanzata delle strutture intraorali deve essere ottenuta utilizzando uno stereomicroscopio e un sistema di luce ottica. - Pulire e mordenzare le superfici del primo molare e dell'incisivo destro utilizzando rispettivamente acetone e un primer automordenzante. Il sistema è automordenzante, il che significa che non richiede un precedente condizionamento acido.
- Applicare il primer in un unico passaggio, che funziona anche contemporaneamente come acido e adesivo. Utilizzando un micropennello, prelevare una piccola quantità di primer automordenzante e applicarlo sulla superficie occlusale del primo molare superiore e degli incisivi. In questa fase è necessario prestare attenzione per garantire che il primer automordenzante non raggiunga la superficie prossimale tra il primo e il secondo molare, poiché ciò potrebbe causare l'adesione degli elementi dentali, impedendo il movimento dei denti. Fotopolimerizzare il primer sulla superficie occlusale dei molari e degli incisivi per 30 s.
- Incollare l'estremità distale di una molla a spirale aperta in NiTi a sei anelli alla superficie occlusale del primo molare mascellare destro con resina fotopolimerizzabile e fotopolimerizzare per 30 s. Aggiungere un ulteriore incremento di resina sul bordo del filo per evitare danni ai topi e fotopolimerizzare per 30 s.
- Attivare la bobina utilizzando un apparecchio appositamente progettato costituito da un binario e un meccanismo a manovella fissati al tavolo operatorio. Ciò consente al movimento longitudinale di scorrere avanti e indietro.
- Collegare l'estremità libera a forma di anello del filo rotondo da 0,20 mm al gancio del misuratore di tensione.
- All'attivazione della manovella, spostare il tavolo operatorio lungo la guida fino a quando il dinamometro registra una forza di 0,35 N.
- Incollare il filo tondo da 0,20 mm a entrambi gli incisivi superiori per ancorare la bobina. Durante il periodo sperimentale non viene eseguita alcuna ulteriore riattivazione. Tagliare il filo per staccare l'animale dal dinamometro. Aggiungi un altro incremento di resina in modo che il bordo metallico del dispositivo non sia esposto e non danneggi l'animale. Fotopolimerizzare per 30 s. Smonta l'animale dal tavolo.
- Il primo molare superiore destro con un dispositivo che impone una forza di 0,35 N in direzione mesiale è costituito dal lato sperimentale. Utilizzare il lato sinistro della mascella (senza apparecchio ortodontico) come controllo 4,16.
- Mantenere questo dispositivo per un periodo di 12 giorni senza che sia necessaria alcuna attivazione. Non utilizzare alcun farmaco per il controllo del dolore. Il movimento ortodontico avviene attraverso un processo infiammatorio e i farmaci antidolorifici possono influenzare negativamente la cascata dell'acido arachidonico, influenzando il tasso di rimodellamento osseo e potenzialmente invalidando i risultati.
- Dopo la fine dell'intervento, trattare gli animali con un'iniezione sottocutanea di soluzione salina per evitare la disidratazione durante il periodo di adattamento con il dispositivo. Tenere l'animale in una gabbia individuale con riscaldamento fino a quando non si sarà completamente ripreso e solo dopo questo periodo posizionare l'animale in gabbie collettive.
- Eutanasia del topo il 12° giorno eseguita mediante sedazione con iniezione intraperitoneale di una soluzione da 0,2 mL contenente xilazina (10 mg/Kg) e ketamina (100 mg/Kg) seguita da decapitazione con forbici affilate.
2. Misure Micro-CT
- Prelevare l'osso mascellare con forbici affilate tagliando tutti i tessuti molli, l'osso zigomatico sul piano sagittale, la sutura frontonasale e la sincondrosi sfeno-occipitale sul piano coronale. Immergere l'osso mascellare in formalina tamponata neutra al 10% (pH=7,4) per un periodo di fissazione di 48 ore. Trascorso questo periodo, cambiare la soluzione di formaldeide al 70% di alcol.
- Eseguire la scansione micro-CT dell'osso mascellare con i seguenti parametri per le scansioni ad alta risoluzione: dimensione isotropa del voxel da 9 a 18 μm, impostazioni dei raggi X di 50 kV, filtro in alluminio da 0,5 mm e angolo di rotazione di 0,5°. Durante la scansione microCT è possibile inserire più di una ganascia.
- Ricostruire le immagini acquisite utilizzando il programma di ricostruzione microtomografica indicato dal produttore della microtomografia computerizzata (microCT) utilizzata17.
- Posizionare le immagini ricostruite utilizzando il programma di Ispezione 3D indicato dal produttore della microtomografia utilizzata.
- Quantificare l'OTM misurando la differenza di distanza lineare tra la giunzione cemento-smalto (CEJ) del primo e del secondo molare dell'emimascella destra (lato OTM) rispetto all'emimascella sinistra (lato di controllo). Utilizzare il software dell'analizzatore microCT appropriato con lo strumento di linea per questa misurazione 17,18,19,20.
- Controllare i campioni per la presenza di riassorbimento radicolare infiammatorio indotto dall'ortodonzia (OIIRR). Selezionare la regione di interesse (ROI) della radice disto-vestibolare del primo molare mascellare utilizzando un metodo di contorno della regione di interesse irregolare e anatomica disegnata manualmente. Misurare i seguenti parametri: densità minerale radicale (RMD; g/cm3) e percentuale del volume radicale per volume totale (RV/TV; %). Utilizzare il software dell'analizzatore microCT appropriato con lo strumento volumetrico 3D per questa misurazione 16,21.
- Condurre la ricostruzione del primo molare mascellare utilizzando il software Mimics e analizzare i dati ottenuti per trarre conclusioni su OTM e OIIRR nel modello sperimentale16,21.
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Risultati
Questo protocollo consente lo studio di un modello murino OTM utilizzando una molla elicoidale in NiTi. Con una forza di 0,35 N applicata, la distanza CEJ media sul lato di controllo tra il primo e il secondo molare era di 243,69 μm (Figura 1A, linea A), mentre sul lato OTM è stata misurata a 284,66 μm (Figura 1A, linea B). La differenza tra l'OTM e il lato di controllo era di 40,97 μm (Figura 1B). La distanza linea...
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Discussione
Qui, descriviamo un protocollo standardizzato progettato per chiarire i meccanismi cellulari e molecolari alla base del rimodellamento osseo durante l'OTM. Una comprensione approfondita di questi meccanismi nei topi richiede un protocollo meticolosamente pianificato per garantire accuratezza e affidabilità 7,11. Gli studi condotti dal nostro gruppo di ricerca hanno dimostrato che questo protocollo riduce efficacemente la variabilità dell'operatore incorporando un...
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Dichiarazioni
Gli autori non hanno conflitti di interesse da dichiarare.
Ringraziamenti
Desideriamo esprimere il nostro sincero apprezzamento alla signorina Beatriz M. Szawka per il suo contributo al diagramma schematico e alla signora Ilma Marçal de Souza per il suo supporto tecnico. J.A.A.A. è il destinatario di una borsa di studio concessa dalla Fundação Carlos Chagas Filho de Amparo à Pesquisa do Estado do Rio de Janeiro (FAPERJ, E-26/200.331/2024), Brasile. Questo studio è stato sostenuto dal Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico (406928/2023-1), dalla Fundação de Amparo a Pesquisa do Estado de Minas Gerais e dalla Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior (codice finanziario 001), Brasile. Gli autori ringraziano il Prof. Dr. Eduardo H. M. Nunes di LabBio/UFMG per l'analisi della microtomografia a raggi X.
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Materiali
| Nome | Azienda | Numero di catalogo | Commenti |
|---|---|---|---|
| Acetone | Sigma-Aldrich | 67-64-1 | |
| Pinza a taglio distale | Quinelato | QO.700.00 | |
| Dinamometro | SHIMPO | FGE-5XY | |
| Illuminatore a fibre ottiche | Cole-Parmer | N/A | |
| ketamina | Syntec | 100477-72-3 | |
| NiTi molla a spirale aperta 0,25 x 0,76 | Lancer Ortodonzia | ||
| Ø 0,20 mm tondo cromo-nichel (CrNi) | Morelli | 55.01.208 | |
| Filo ortodontico elastico duro rotondo CrNi Ø 0.50 mm (.020 poll.) | Morelli | 55.01.050 | |
| Filo per Fascette Rotonde CrNi & Oslash; 0.20 mm (.008 pollici) | Morelli | 55.01.208 | |
| Stereomicroscopio | Quimis | Q7740SZ | |
| Transbond Plus Primer automordenzante | 3M | LE-Q100-1004-7 | |
| Pinza Weingart | Quinelato | QO.120.00 | |
| Xilazina | Syntec | 23076-35-9 | |
| MicroCT Analisi | |||
| Skyscan 1174v2 | Bruker | 1174v2 | |
| Software | |||
| NRecon | Skyscan | N/A DataViewer | |
| Skyscan | N/A | ||
| CTAn | Skyscan | N/A | |
| Mimics | Materialise | N/A |
Riferimenti
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