Articolo metodologico

Applicazione del DNA Barcoding per identificare le piante medicinali

DOI:

10.3791/66925

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1 novembre 2024

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1School of Pharmacy, Guizhou University of Traditional Chinese Medicine, 2School of Pharmacy/School of Modern Chinese Medicine Industry, Chengdu University of Traditional Chinese Medicine, 3Institute of Herbgenomics, Chengdu University of Traditional Chinese Medicine

In questo articolo

Sommario

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Il presente protocollo descrive l'uso della tecnologia di codifica a barre del DNA per autenticare materiali medicinali di origine vegetale e la pianta medicinale Angelica sinensis (Oliv.) Diels è stato identificato come esempio.

Abstract

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Le piante medicinali sono risorse preziose a livello globale e vengono utilizzate in tutto il mondo per mantenere la salute e curare le malattie; Tuttavia, la presenza di adulterazione ne ostacola lo sviluppo. Il DNA barcoding, una tecnica per l'identificazione delle specie da parte di regioni standard del DNA, facilita l'identificazione rapida e accurata delle piante medicinali tradizionali. Il processo di codifica a barre del DNA prevede sei passaggi fondamentali: 1) elaborazione delle piante medicinali, 2) estrazione di DNA totale di alta qualità dalle piante medicinali utilizzando il metodo della colonna centrifuga, 3) amplificazione dello spaziatore trascritto interno 2 della regione del DNA bersaglio (ITS2) con primer universali di piante ed esecuzione del sequenziamento Sanger, 4) sequenza di splicing e allineamento per ottenere la sequenza target, 5) corrispondenza della sequenza del codice a barre con la libreria di codici a barre per l'identificazione, 6) allineamento della sequenza, confronto della variazione intraspecifica e interspecifica, costruzione di un albero filogenetico di giunzione dei vicini. Come mostrato nei risultati, il primer universale può amplificare la regione target. Lo strumento di ricerca dell'allineamento locale di base (BLAST) dimostra che la percentuale identificata era del 100% e l'albero di giunzione adiacente dimostra che le sequenze di splicing erano raggruppate con il clade A. sinensis OR879715.1 e il valore di supporto del clade è 100. Questo protocollo fornisce un riferimento per l'applicazione della tecnologia del DNA barcoding come metodo efficace per identificare piante medicinali e adulteranti.

Introduzione

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Le piante medicinali hanno una vasta gamma di effetti farmacologici e sono sostanze importanti per il trattamento e la prevenzione delle malattie. La domanda di mercato di piante medicinali in erboristeria e prodotti farmaceutici è enorme e ancora in crescita. Con l'aumento del mercato delle piante medicinali, il problema dell'adulterazione ha ostacolato lo sviluppo delle piante medicinali. Attualmente, l'adulterazione delle piante medicinali soffre di questi motivi: 1) la morfologia simile delle piante medicinali rende difficile identificarle e utilizzarle correttamente 1,2,3,4,5, 2) la crescente domanda di piante medicinali ha portato a un'offerta insufficiente sul mercato 6,7, 3) le piante medicinali sono costose e hanno prezzi fluttuanti, e l'uso di erbe economiche invece di materiali economicamente preziosi ha portato all'adulterazione e al profitto del mercato 8,9. Per risolvere i problemi della corretta identificazione e utilizzo delle piante medicinali, c'è bisogno di una tecnologia che consenta ai non specialisti di identificare la fonte10.

Ci sono limitazioni all'identificazione e all'uso corretto delle piante medicinali solo per l'aspetto e l'odore11. Per un'identificazione e un controllo di qualità più accurati, vengono impiegati metodi fisico-chimici12. La cromatografia su strato sottile (TLC), ad esempio, è un metodo rapido per identificare le erbe medicinali ed è inclusa nella Farmacopea cinese. Tuttavia, richiede norme di riferimento per identificare gli impianti13. La cromatografia liquida ad alte prestazioni (HPLC) può eseguire test sia qualitativi che quantitativi, il che la rende adatta per i test di qualità dei medicinali. Tuttavia, questo strumento è costoso e richiede conoscenze specialistiche per funzionare14,15. La tecnologia di codifica a barre del DNA è una tecnologia di identificazione delle specie rapida e accurata che identifica le specie utilizzando sequenze di DNA stabili per differenziare tra piante con morfologia simile. Hebert et al. hanno proposto la tecnologia di codifica a barre del DNA per identificare le specie, che utilizza una sequenza di DNA riconosciuta e relativamente breve all'interno del genoma16, Chen et al. hanno proposto ITS2 come sequenza universale per l'identificazione molecolare delle piante medicinali e hanno identificato più di 6600 piante e hanno trovato un'elevata capacità di identificazione17. Lo studio delle piante medicinali basato su ITS2 e frammenti genici di cloroplasti ha dimostrato la capacità di distinguere le specie a livello di specie, con applicazioni nei settori della protezione delle risorse, della regolamentazione del mercato e del commercio internazionale 17,18,19. L'applicazione del DNA barcoding può superare i limiti dei metodi di identificazione tradizionali, il che è utile per garantire la qualità e la sicurezza delle piante medicinali, prevenendo l'abuso di risorse e la confusione20. Si è dimostrato utile per lo studio delle piante medicinali, sostenendo la crescita dell'industria erboristica in modo sostenibile e fornendo la garanzia che il consumatore utilizzi il farmaco corretto 21,22,23,24.

Il documento delinea i protocolli su come applicare il codice a barre del DNA per identificare le piante medicinali utilizzando A. sinensis come esempio. Il DNA barcoding utilizza uno o più marcatori genetici corti standardizzati nel DNA di un organismo per riconoscerlo come appartenente a una particolare specie. I metodi attuali per identificare le piante medicinali hanno alcune limitazioni. L'identificazione morfologica tradizionale si basa in gran parte sulla vasta esperienza degli esperti, che può essere influenzata da fattori umani, mentre l'identificazione chimica è soggetta a problemi come l'adulterazione di composti chiave. Al contrario, il DNA barcoding fornisce un mezzo più accurato per l'identificazione delle specie, offrendo vantaggi come velocità, alta riproducibilità e stabilità. Inoltre, questa tecnologia consente la gestione centralizzata e la condivisione dei dati di sequenza delle specie esistenti attraverso Internet e piattaforme informative, migliorando significativamente l'efficienza e l'affidabilità dell'identificazione delle specie11,12. A causa della loro morfologia e delle parti medicinali simili, A. sinensis viene spesso confuso con altre specie ed è spesso utilizzato in modo improprio o intenzionalmente sostituito sul mercato25. Yang et al. hanno identificato A. anomala utilizzando il codice a barre del DNA per distinguerlo dai falsi farmaci26. Yuan et al. hanno raccolto 23 specie di Angelica e hanno utilizzato il DNA barcoding per distinguere tra le varie specie27. Seguendo le procedure descritte in questo protocollo, gli utenti saranno in grado di autenticare i materiali medicinali di origine vegetale dalla pre-elaborazione fino alla corrispondenza finale della sequenza di codici a barre con il database dei codici a barre (Figura 1).

Protocollo

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1. Preparazione del campione

  1. Il presente studio ha utilizzato A. sinensis di due anni con bassa temperatura e lungo sole ad un'altitudine di 2800 m dalla contea di Min, nella provincia di Gansu, come materiali sperimentali. Sono state selezionate tre piante da cui sono state selezionate più di tre radici per la sperimentazione. Sciacquare prima le radici con acqua sterilizzata e poi pulirle con uno spruzzatore di alcol o tamponi imbevuti di alcol per evitare contaminazioni che potrebbero influire sull'accuratezza dei risultati sperimentali. Tagliare le radici in pezzi più piccoli di 5 mm utilizzando un bisturi sterilizzato e mescolare per ulteriori analisi. (Figura 2).
    NOTA: In alternativa, metti le radici nell'azoto liquido per renderle croccanti, rendendole più facili da rompere. A seconda della forma, della durezza e di altre caratteristiche delle piante medicinali, usa gli strumenti per affrontarle.
  2. Preparare tre provette di campioni sperimentali per esperimenti paralleli. Etichettare ogni campione come AS-1, AS-2 e AS-3. Prelevare circa 100 mg di fazzoletto fresco o 20 mg di fazzoletto secco (essiccato all'aria) e metterlo in una provetta da centrifuga da 2 ml.
  3. Inserire due perline di acciaio inossidabile da 5 mm nelle provette da centrifuga da 2 mL. Trasferire le provette in un trituratore di tessuti ad alta produttività funzionante a 60 Hz per 60 s.

2 Estrazione del DNA dal campione

NOTA: Questo studio utilizza un kit di estrazione del DNA genomico vegetale, basato sul metodo CTAB. L'estrazione del DNA viene eseguita seguendo il manuale di istruzioni con alcune modifiche, tra cui l'aggiunta di un esclusivo tampone di isolamento nucleare (NIB). Il protocollo migliora la purezza del DNA separando prima i contaminanti dal tessuto e poi aggiungendo una fase iniziale di isolamento dei nuclei 28,29,30.

  1. Aggiungere 800 μl di NIB pre-raffreddato e posizionare il campione su un miscelatore a vortice, facendo vibrare per 5 minuti.
  2. Mettere in una centrifuga e lavorare a 13.780 x g per 10 min. Rimuovere il surnatante.
  3. Ripeti i passaggi 2.1-2.2 per altri 3 round.
    NOTA: Il NIB estrae DNA di qualità superiore e la sua preparazione contiene alcune sostanze chimiche pericolose che devono essere maneggiate in una cappa aspirante, rendendola più difficile da maneggiare per i principianti. Tuttavia, questo passaggio non è obbligatorio. Gli utenti possono scegliere di seguire questa raccomandazione o saltare questi passaggi. La sua formulazione dettagliata è nella Tabella 1.
  4. Aggiungere 600 μL di tampone P1 e 5 μL di RNasi A (10 mg/mL). Posizionare il campione su un miscelatore a vortice e mescolare a vortice. Incubare i campioni in un bagno d'acqua a 65 °C per 1,5 ore, capovolgendo le provette 2x-3x durante l'incubazione.
  5. Aggiungere 200 μl di tampone P2, mescolare accuratamente, mettere in ghiaccio per 15 minuti e centrifugare a 13.780 x g per 10 minuti.
  6. Aspirare con cautela il surnatante su una colonna filtrante AF, centrifugare a 13.780 x g per 2 minuti e trasferire il filtrato inferiore raccolto nella provetta di raccolta in una nuova provetta da centrifuga da 1,5 mL.
  7. Calcolare il volume del filtrato, aggiungere 1,5 volte il volume di P3 e agitare immediatamente per ottenere una soluzione miscelata.
  8. Aggiungere 650 μl della miscela preparata a una colonna adsorbente di adsorbimento (AC) e incubare per 5 minuti, quindi centrifugare a 13.780 x g per 30-60 s.
  9. Aggiungere nuovamente il filtrato ottenuto dal passaggio 2.8 all'AC, centrifugare ed eliminare il liquido di scarto. Ripetere la procedura con la restante soluzione miscelata del passaggio 2.7.
  10. Aggiungere 600 μl di soluzione di risciacquo WB, centrifugare a 13.780 x g per 30 s, scartare la soluzione di scarto e ripetere la procedura 1 volta.
  11. Riposizionare la colonna AC nella provetta di raccolta vuota, centrifugare a 13.780 x g per 2 minuti e lasciare a temperatura ambiente per rimuovere l'etanolo residuo.
  12. Prendere la colonna adsorbente AC e metterla in una provetta da centrifuga pulita da 1,5 mL. Aggiungere 45 μl di acqua deionizzata sterilizzata (ddH2O) al centro della membrana adsorbente, che è stata riscaldata a 65 °C. Lasciare a temperatura ambiente per 5 min. Centrifugare a 13.780 x g per 2 min.
  13. Aggiungere nuovamente la soluzione risultante alla colonna e centrifugare a 13.780 x g per 2 minuti a temperatura ambiente.
  14. Raccogli la soluzione filtrata. Utilizzare uno spettrofotometro per determinare la concentrazione di DNA; OD260 rappresenta l'assorbanza degli acidi nucleici. Utilizzare i seguenti criteri per lo standard di determinazione della qualità del DNA: OD260/OD280=1,80-2,00, l'intervallo normale; OD260/OD280>2.00; c'è una grande quantità di contaminazione da RNA; OD260/OD280<1.80, ci sono proteine, fenoli e altri contaminanti.

3 Amplificazione e rilevamento di frammenti target

NOTA: Selezionare i primer di amplificazione appropriati in base alle regioni di codifica a barre del DNA proposte dalla pianta; le condizioni di reazione sono mostrate nella Tabella 2.

  1. Impostare le condizioni di reazione corrispondenti all'amplificazione del primer. Utilizzare provette da centrifuga da 0,2 mL riempite con 9,5 μL di ddH2O, 12,5 μL di 2x PCR Master Mix e 1 μL di primer diretto, primer inverso e DNA stampo per un volume totale di 25 μL. Preparare un controllo negativo, sostituendo il modello con acqua.
  2. Aggiungere 20 ml di tampone 1x Tris Acetate-EDTA (TEA) e 0,2 g di agarosio per scaldare e preparare un gel di agarosio all'1%, quindi aggiungere 2 μl di colorante per gel di acido nucleico (10.000x) e mescolare accuratamente. Versare il composto in una vaschetta di colata di gel e lasciarlo solidificare per ottenere il gel di agarosio. Aggiungere al gel 3 μl del prodotto PCR e 2 μl di marcatore di DNA 5000 bp.
  3. Impostare la tensione a 120 V, la corrente a 400 mA e l'elettroforesi per 40 minuti. Utilizza un versatile sistema di analisi delle immagini su gel per visualizzare i gel e controllare i risultati.

4. Raccolta e analisi dei dati

NOTA: Esiste un'ampia gamma di software di assemblaggio e analisi delle sequenze; usiamo il codice Codone Aligner V11.0.1 e MEGA11 come esempi per l'illustrazione.

  1. Utilizzare l'allineatore per aprire il file di sequenziamento per osservare la mappa dei picchi e unire i file della mappa dei picchi di sequenziamento bidirezionale.
    1. Seleziona Crea un nuovo progetto e fai clic su OK per accedere alla home page del software. Selezionare Aggiungi campioni nel menu File, selezionare il file da elaborare come formato di traccia della sequenza e importarlo direttamente nel software come file importato in Campioni non assemblati.
    2. Selezionate Contig, quindi, nella sezione, selezionate Assemblaggio avanzato, quindi Assembla in gruppi (Assemble in Groups). I nuovi utenti, dopo aver selezionato Assembla in gruppi, vedranno questa finestra di dialogo: Scegliere Definisci nomi. Modificare le parti del nome del campione Define in base al nome del file e fare clic su Assembla. Verrà visualizzata la sequenza allineata.
    3. Recupera le sequenze ITS2 complete in base all'analisi del modello basato sul modello di Markov nascosto (HMM). Utilizzare le sequenze 5.8s (CGAGGGCACGCCTGCCTGGGCGTCA) e 28s (CGACCCCAGGTCAGGCGGGGCCCCACC)31 per cercare la sequenza allineata dall'inizio per rimuovere le regioni 5.8s e 28s.
    4. Seleziona Vai, quindi, nella sezione, seleziona Sequenza di ricerca e fai clic su OK per ottenere la sequenza corrispondente. Scegli Contig, scegli Elimina nella sezione per rimuovere le regioni 5.8s e 28s e le sequenze di bassa qualità, quindi il software emetterà le sequenze di giunzione per la corrispondenza.
  2. Utilizzare le sequenze di splicing ottenute dalle tre fasi sperimentali parallele per l'identificazione, selezionare la ricerca BLAST utilizzando il database nucleotidico presso il National Center for Biotechnology Information (NCBI) e selezionare lo strumento di identificazione delle specie e il primer specifico ITS2 corrispondenti nel database del database del genoma della farmacopea globale (GPGD).
    NOTA: NCBI32 e GPGD33 includono le sequenze nucleotidiche di piante medicinali e animali e sono riconosciuti come database autorevoli. I loro principali metodi di identificazione sono i metodi basati sul confronto di sequenze34 (BLAST). La percentuale di identità dei risultati dell'identità viene utilizzata per determinare se la specie con la maggiore somiglianza è il genere target.
  3. Utilizza MEGA11 per l'allineamento delle sequenze, analizza e confronta la variazione di sequenza intraspecifica e interspecifica e costruisci un albero filogenetico di unione dei vicini.
    1. Scarica le sequenze di tre specie di Angelica e una specie di Peucedanum praeruptorum come out-group da NCBI. Analizza queste sequenze insieme alla sequenza di risultati ottenuta.
    2. Fare clic su File, scegliere Apri un file/ sessione per importare il file e verrà visualizzata una finestra di dialogo. Scegliere Allinea > DNA e selezionare Allinea per clustalW per il confronto delle sequenze. Scegli Analisi filogenetica nei dati, quindi torna alla home page. Fare clic su Costruisci/Verifica albero di giunzione adiacente in FILOGENESI. Il software genera un albero filogenetico.

Risultati

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Qualità del DNA del campione

L'intervallo dei rapporti di assorbanza OD260/OD280 era 1,80-1,84. La quantità di DNA misurata dallo spettrofotometro per ciascun campione era superiore a 100 ng/μL (Tabella 3), indicando una buona qualità dell'estrazione del DNA del campione. Ciò indica che i campioni non sono stati contaminati da proteine, RNA o reagenti durante il processo di estrazione e che erano di buona qualità e adatti all'amplificazione PCR a valle.

Analisi PCR

L'elettroforesi su gel è stata eseguita sul prodotto PCR dei tre campioni sperimentali paralleli. La configurazione era: Marker, campioni 1-3 (AS-1, AS-2, AS-3) e controllo negativo (0), come mostrato nella Figura 3. Le dimensioni di AS-1, AS-2 e AS-3 sono tutte comprese tra 500 bp con bande singole, luminose e chiare, e non ci sono bande nello 0, indicando che il DNA estratto è stato amplificato a 500 bp utilizzando i primer ITS2.

Confronto del database dei risultati del sequenziamento

I risultati del sequenziamento hanno identificato A. sinensis con una somiglianza di sequenza del 100% combinando i risultati dell'identificazione BLAST del database NCBI, che è lo stesso dei risultati dell'identificazione delle specie del database GPGD (Tabella 4). Il risultato BLAST è stato determinato utilizzando il punteggio di identità percentuale più alto e il valore e più basso. L'identificazione delle specie è stata considerata di successo quando la percentuale massima di identità includeva una singola specie e ha ottenuto un punteggio del >99%. Se un punteggio è ≤ 99%, controlla la qualità del file di sequenziamento o se il prodotto PCR è contaminato.

Analisi filogenetica ad albero dell'identificazione delle specie

I risultati hanno mostrato che nell'albero filogenetico costruito del New Jersey, tutte e quattro le specie erano raggruppate in cladi separati, e il P. praeruptorum come outgroup era separato dai cladi di Angelica . Le sequenze di splicing sono state raggruppate con il clade di A. sinensis OR879715.1, e il valore di supporto del clade (bootstrap) era 100, e poi le altre due specie, A. dahurica e A. cartilaginomarginata sono state raggruppate in un clade separato, dimostrando così che le sequenze di splicing erano A. sinensis (Figura 4).

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Figura 1: Diagramma di flusso per l'identificazione delle specie di piante medicinali. (A) Lavorazione delle piante, estrazione del DNA e sequenziamento delle piante medicinali, (B) confronto della sequenza delle specie utilizzando database e (C) utilizzo di alberi filogenetici per la convalida tassonomica per confermare le relazioni filogenetiche tra le specie. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

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Figura 2: Flusso di lavoro per l'estrazione del DNA delle piante medicinali. (A) L'estrazione del DNA dalle piante medicinali prevede un totale di 6 passaggi. (B) Amplificazione dello strumento PCR e processo di ciclo PCR. (C) Elettroforesi. (D) Sequenziamento con metodo Sanger e cromatogramma di sequenziamento. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

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Figura 3: Elettroforesi su gel di Angelica sinensis (Oliv.) Diels. Utilizzando il marcatore di DNA DL5000 come marcatore molecolare, AS-1, AS-2 e AS-3 vengono utilizzati come campioni e 0 come gruppo di controllo. È stata condotta l'elettroforesi su gel e i risultati hanno mostrato che i campioni AS-1, AS-2 e AS-3 avevano tutti bande a 500 bp, mentre il controllo non mostrava bande. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

figure-results-4
Figura 4: Albero filogenetico di unione dei vicini creato da 13 sequenze. Un totale di 10 sequenze di quattro specie vegetali sono state scaricate dal database NCBI e le sequenze di splicing sono state confrontate per analizzare e confrontare la variazione di sequenza intraspecifica e interspecifica e per costruire alberi filogenetici di congiunzione. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Nome del materiale/attrezzaturadose
Polivinilpirrolidone10 g
Tris-HCl1 M 50 mL
Acido etilendiamminatetraacetico0,5 M 20 mL
NaCl20,45 grammi
β-mercaptoetanolo10 ml
acqua deionizzata sterilizzata500 ml

Tabella 1: Reagenti per la formulazione di tampone di isolamento nucleare.

Codice a barreAbbecedarioSequenza di primer (5'-3')Sequenziamento dell'amplificazione PCR
ITS2R:3RGACGCTTCTCCAGACTACAAT94°C5 minuti
94°CAnni '3040cicli
56°CAnni '30
F:2FATGCGATACTTGGTGTGAAT72°C45 secondi
72°C10 minuti

Tabella 2: Primer di codici a barre del DNA e condizioni di reazione alla PCR.

CampioniEstrazione del DNA (ng/μL)OD260/OD280
AS-11241.84
AS-21841.81
AS-31641.82

Tabella 3: Angelica sinensis (Oliv.) Diels ha estratto la qualità del DNA.

CampioniLunghezza sequenza allineata (bp)Lunghezza della sequenza di giunzione (bp)GC(%)NCBI:Percentuale BLAST(%)GPGD: Percentuale di identificazione delle specie (%)
AS-1500 punti base229 punti base55.50%100%100%
AS-2504 punti base229 punti base55.50%100%100%
AS-3499 punti base229 punti base55.50%100%100%

Tabella 4: Confronto tra database dei risultati del sequenziamento.

Discussione

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La tecnologia di identificazione molecolare è più facile da imparare e padroneggiare rispetto ai metodi di identificazione tradizionali. Supera i limiti dell'identificazione delle erbe medicinali tradizionali, in quanto non è influenzata dalla fase di crescita della pianta e non si basa sul giudizio soggettivo o sull'accumulo di competenze specialistiche35. Altre specie vengono confuse con A. sinensis a causa della sua morfologia simile e delle parti medicinali, ma con l'uso del DNA barcoding, può essere definitivamente identificato36.

I passaggi chiave di questo protocollo comportano diverse considerazioni critiche. Innanzitutto, evitare la contaminazione durante la manipolazione delle erbe e l'estrazione del DNA è essenziale per evitare che DNA estraneo o impurità compromettano i risultati. Un'adeguata pulizia dei campioni è necessaria per rimuovere i contaminanti esterni, mentre la polverizzazione accurata migliora l'estrazione del DNA aumentando la superficie per l'interazione con i reagenti. È anche importante utilizzare una quantità adeguata di campione per garantire una miscelazione efficiente con i reagenti, consentendo una migliore citolisi e rilascio di DNA. Infine, il controllo del tempo di bagno d'acqua è fondamentale, poiché un riscaldamento eccessivo può portare alla degradazione del DNA, compromettendo la qualità del DNA estratto. Insieme, questi passaggi garantiscono il successo dell'estrazione di DNA di alta qualità per l'analisi.

Le piante medicinali contengono polisaccaridi e polifenoli che influenzano l'estrazione e l'amplificazione del DNA. L'uso del tampone di isolamento nucleare riduce l'effetto di queste sostanze e consente la lisi dei nuclei, con conseguente migliore estrazione di gDNA 28,29,30 ad alta purezza. Attualmente, esistono tre metodi primari di estrazione del DNA: il metodo della colonna centrifuga, il metodo CTAB e il metodo SDS. Tuttavia, questo studio ha scelto il metodo della colonna centrifuga per gli esperimenti grazie alla sua stabilità, semplicità, efficienza e capacità di estrarre alte concentrazioni di DNA37 e il riscaldamento del tampone di eluizione può aiutare a eluire il DNA con una qualità migliore. Qui, questo studio ha scelto i primer specifici per ITS217,38, la sequenza corta di ITS2 funge da efficiente tag di sequenza tassonomica rispetto agli altri primer39, che hanno un'elevata variazione interspecifica e una gamma più ampia di identificazioni. La possibile ragione del fallimento dell'amplificazione è la degradazione del DNA in alcuni campioni; un'altra possibilità è che la coppia di primer universali ITS2 utilizzati possa non funzionare per alcune specie o che si utilizzi il set alternativo di primer universali40. Il risultato BLAST è stato determinato utilizzando il punteggio di identità percentuale più alto e il valore e più basso. L'identificazione della specie è stata considerata di successo quando la percentuale massima di identità più alta includeva una singola specie e ha ottenuto un punteggio >99%40,41, per il punteggio ≤99%, controllare la qualità del file di sequenziamento o se il prodotto PCR è contaminato.

In sintesi, il DNA barcoding dovrebbe svolgere un ruolo chiave nel controllo di qualità della fitoterapia tradizionale e del commercio internazionale di erbe. Questo documento fornisce alcune informazioni sull'estrazione del DNA vegetale e una guida dettagliata sull'utilizzo della tecnologia di codifica a barre del DNA per identificare le piante medicinali. Evidenzia i punti chiave da notare durante il processo sperimentale. Pertanto, questo documento fornisce riferimenti per l'identificazione di base delle erbe e aiuta più persone a padroneggiare rapidamente la tecnologia. Tuttavia, in casi speciali in cui l'efficienza dell'identificazione del codice a barre con un singolo locus è insufficiente, dipende dalla libreria di riferimento. La costruzione di una libreria di riferimento con un'elevata copertura delle specie sarebbe un passo importante verso l'identificazione delle specie utilizzando i codici a barre del DNA42 e molti ricercatori hanno proposto che la tecnologia dei codici a barre multi-locus possa migliorare l'efficienza43,44. Inoltre, con lo sviluppo della tecnologia molecolare, Zheng et al. hanno combinato la tecnologia del DNA barcoding con la tecnologia di amplificazione isotermica del DNA e il rilevamento RPA-LFD per autenticare rapidamente le piante velenose45 e sono stati sviluppati anche alcuni kit standard46. Il database dei codici a barre del DNA è in costante miglioramento, il che svolge un ruolo importante nel promuovere la generalizzazione, la standardizzazione e l'internazionalizzazione dei metodi di identificazione dell'erboristeria.

Dichiarazioni

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Gli autori dichiarano che la ricerca è stata condotta in assenza di relazioni commerciali o finanziarie che possano essere interpretate come un potenziale conflitto di interessi.

Ringraziamenti

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Questo lavoro è stato supportato da introduce la persona di talento la ricerca scientifica start funds sovvenzionamento progetto di sovvenzione dell'Università di Chengdu di Medicina Tradizionale Cinese (030040015).

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Kit di estrazione rapida del DNA genomico delle piante CTABShanghai Huiling Biotechnology Co.NG411MAdatto per l'estrazione rapida di DNA genomico di alta qualità da diversi tessuti di un'ampia gamma di piante
DL5000 Marcatore DNANanjing vazyme Bio-technology Co.MD102-02Prodotto pronto all'uso, prelevare una quantità appropriata di questo prodotto direttamente per l'elettroforesi durante l'esecuzione del gel.
ElettroforesiBeijing Liuyi Biotechnology Co.DYY-6CAdotta il design del touch screen, può visualizzare la tensione impostata, impostare la corrente allo stesso tempo, l'uscita parallela
Acido etilendiammintetraaceticoBeijingpsaitongBiotechnologyCo., LtdE70015-100GReagenti per formulazione tampone di isolamento nucleare.
Colorazione in gel di acido nucleico Goldview (10.000 volte)Yisheng Biotechnology (Shanghai) Co., Ltd10201ES03Quando si utilizza l'elettroforesi su gel di agarosio per rilevare il DNA, si lega al DNA e produce un forte segnale fluorescente.
Centrifuga da tavolo ad alta velocitàChangsha Zona di sviluppo industriale ad alta tecnologia Xiangyi Centrifuga Instrument Co.H1650Per una separazione rapida ed efficiente dei campioni, questa centrifuga compatta e leggera offre una sicurezza affidabile
Macinatore di tessuti ad alta produttivitàShanghai Jingxin Industrial Development Co.Tiss-48Uno strumento di vibrazione ad alta frequenza per la macinazione di campioni
http://www.gpgenome.com/Institute of Chinese Materia Medica, China Academy of Chinese Medical Sciences-HerbGenomicsdatabase include sequenze genomiche, set di geni, genomi di organelli, dati genomici a bassa copertura e sequenze di codici a barre del DNA.
https://www.ncbi.nlm.nih.gov/U.S. National Library ofMedicine-IlNational Center for Biotechnology Information fa progredire la scienza e la salute fornendo l'accesso alle informazioni biomediche e genomiche.
Kylin-BellHaimen Qilinbel Instrument Manufacturing Co.VORTEX-5Miscelazione rapida sotto forma di vortice ad alta velocità, velocità di miscelazione, uniformità, completezza
LifeTouchHangzhou BORI Technology Co.TC-96/G/H(b)BAdozione di una tecnologia di refrigerazione termoelettrica avanzata e di una tecnologia TAS di nuova creazione per migliorare le sue prestazioni complessive
Sistema di analisi delle immagini su gelmultifunzionale Centro operativo sud-ovest di Shanghai Tianneng Life Science Co.Tanon-Mini Space 2000Esegue esperimenti di amplificazione genica rapida con una funzione di gradiente per la mappatura delle condizioni di amplificazione e un intervallo di temperatura del gradiente fino a 30 gradi; C
NaClPechino Solarbio Science& Fornitore verificato - Technology Co., Ltd.S8210-100Reagenti per formulazione tampone di isolamento nucleare.
Nanodrop OneGenes Ltd.ND ONEQuantifica campioni di DNA, RNA e proteine in pochi secondi con solo 1-2 µ L del campione
PolivinilpirrolidoneShanghai yuanye Bio-Technology Co., LtdS30268-500gReagenti per formulazione tampone di isolamento nucleare.
Fabbricatore di ghiaccio a fiocco di neveShanghai Zhixin Experimental Instrument Technology Co.ZX-60XAdottando il metodo di produzione del ghiaccio per estrusione rotativa, la velocità di produzione del ghiaccio veloce e l'alta efficienza della produzione di ghiaccio
Perline in acciaio inossidabile per omogeneizzatore di tessutiBeyotime Biotechnology.F6623Apparecchiatura per la macinazione e la miscelazione di tessuti e altri campioni mediante vibrazione
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Riferimenti

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