Method Article

Costruzione di un olfattometro per studi sul comportamento olfattivo dei roditori

DOI:

10.3791/67049

April 11th, 2025

In This Article

Summary

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Questo protocollo descrive la costruzione di un olfattometro per esperimenti di comportamento olfattivo go/no-go. Vengono fornite istruzioni dettagliate, insieme alle immagini, per garantire il successo della costruzione dell'olfattometro. Sono incluse anche informazioni per la risoluzione dei problemi riscontrati durante il processo.

Abstract

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L'uso di olfattometri per studiare il comportamento dei roditori e l'attività cerebrale durante le attività olfattive è fondamentale per comprendere i circuiti cerebrali. Questi sofisticati dispositivi consentono ai ricercatori di controllare e fornire con precisione gli stimoli olfattivi, consentendo lo studio di complessi processi olfattivi nei roditori. Sebbene gli olfattometri disponibili in commercio siano convenienti, presentano sfide quando sorgono problemi tecnici, spesso richiedendo un'assistenza costosa e potenzialmente interrompendo le tempistiche di ricerca. Questo articolo descrive in dettaglio la costruzione di un olfattometro personalizzato specificamente progettato per esperimenti sul comportamento olfattivo del topo, fornendo un elenco completo di parti e istruzioni dettagliate. L'olfattometro è controllato tramite MATLAB, che offre un'interfaccia user-friendly per i ricercatori. È importante sottolineare che il codice open source consente agli utenti di modificare e adattare il sistema, adattando le attività comportamentali per soddisfare specifiche esigenze sperimentali. La creazione di un olfattometro personalizzato offre agli utenti le conoscenze e le capacità di eseguire la progettazione sperimentale personalizzata e la risoluzione dei problemi in modo indipendente, risparmiando tempo e risorse. Questo approccio non solo migliora la flessibilità della ricerca, ma favorisce anche una comprensione più profonda della funzionalità dell'apparecchiatura, portando in ultima analisi a studi olfattivi più robusti e affidabili nei roditori.

Introduction

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Gli intricati meccanismi alla base del processo decisionale olfattivo offrono spunti affascinanti sulla notevole complessità del sistema di elaborazione sensoriale del cervello 1,2,3. All'interno del bulbo olfattivo dei topi, una vasta gamma di neuroni sensoriali olfattivi converge su circa 2.200 glomeruli, ciascuno innervato da neuroni che esprimono lo stesso recettore olfattivo4. Sorprendentemente, anche singoli odori sintetici possono stimolare una parte sostanziale dei circa 1.100 recettori olfattivi nei topi 5,6. Tuttavia, la sfida va oltre il rilevamento iniziale degli odori. Le dinamiche temporali dell'arrivo dell'odore, influenzate dall'atto ritmico di annusare, arricchiscono ulteriormente il paesaggio sensoriale, aggiungendo strati di informazioni che il cervello può decifrare. Aggravato dalla complessità degli stimoli naturali, come l'urina conspecifica, che contiene centinaia di odoranti, il sistema olfattivo affronta il formidabile compito di districare gli intricati schemi di attivazione glomerulare per differenziare tra i vari profumi 7,8.

Per affrontare questa sfida, il cervello orchestra l'attività neurale in più regioni, tra cui la corteccia piriforme, la corteccia entorinale laterale, l'ippocampo, il tubercolo olfattivo, la corteccia prefrontale e persino il cervelletto 9,10,11,12,13,14. All'interno di questi circuiti, le cellule piramidali nella corteccia piriforme integrano e modulano le informazioni trasmesse dalle cellule mitrali, mentre altre aree cerebrali contribuiscono a un ruolo unico nel plasmare la percezione olfattiva 15,16,17. Inoltre, l'elaborazione degli stimoli olfattivi da parte del cervello è influenzata dinamicamente da fattori contestuali, sottolineando l'adattabilità e la sofisticazione del processo decisionale olfattivo.

Questo articolo descrive la costruzione di un olfattometro personalizzato che consente la valutazione controllata da computer delle prestazioni comportamentali di topi che si muovono liberamente impegnati in un compito go/no-go. In questo compito di apprendimento associativo, il topo privato dell'acqua inizia una prova leccando un beccuccio di erogazione dell'acqua situato all'interno di un cono di erogazione dell'odore. Uno dei due odoranti viene erogato 1-1,5 secondi dopo che l'animale ha iniziato la prova. Se l'odorante è l'odorante ricompensato (S+), il topo riceve una ricompensa in acqua se lecca almeno una volta in ciascuna delle quattro finestre temporali di 0,5 s (un colpo). In caso contrario, il mouse non riceve alcuna ricompensa (Miss). Se l'animale riceve l'odorante non ricompensato (S-), non viene consegnata alcuna ricompensa e se il topo lecca in ciascuna delle quattro finestre temporali (Falso allarme, FA), viene imposto un ritardo prima dell'inizio della prova successiva. Se l'animale non riesce a leccare in una delle finestre temporali, la prova viene conteggiata come un rifiuto corretto (CR) e non viene applicato alcun ritardo. La percentuale di prestazioni corrette è calcolata come la percentuale di prove in cui il mouse ottiene un Hit o un CR in una finestra di venti prove:

Percentuale corretta = 100 ((Hit + CR) / 20)

Ci sono due questioni chiave per garantire il corretto funzionamento degli olfattometri progettati per valutare il comportamento olfattivo go/no-go. In primo luogo, l'olfattometro deve monitorare le risposte del topo in tempo reale per fornire di conseguenza ricompense odorizzanti e acquatiche. Questo olfattometro si ottiene monitorando le leccate misurando la resistenza tra la tromba d'acqua e il pavimento della camera o rilevando la capacità18. Un programma MATLAB utilizza quindi queste informazioni per prendere decisioni sull'erogazione di odorizzanti e sulla ricompensa dell'acqua. Il secondo problema è la necessità di un'erogazione affidabile e riproducibile di odorizzanti. Questo olfattometro si ottiene azionando valvole che bilanciano l'aria satura di odori con l'aria vettore, che viene poi erogata a un cono anteriore. L'aria viene bilanciata con l'odorizzante facendolo gorgogliare attraverso una soluzione odorizzante diluita con olio minerale. La concentrazione dell'odorizzante viene misurata con un rivelatore a fotoionizzazione e può essere calcolata in base alla pressione di vapore e al coefficiente di attività, seguendo le procedure descritte da Williams e Dewan18,19.

Protocol

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Tutti gli esperimenti sono stati condotti secondo i protocolli approvati dal Comitato Istituzionale per la Cura e l'Uso degli Animali dell'Università del Colorado Anschutz Medical Campus. Gli animali utilizzati in questo studio erano topi maschi CaMKIIα WT, di età pari a due mesi al momento dell'impianto del tetrodo. I dettagli dei reagenti e delle attrezzature utilizzate in questo studio sono forniti nella Tabella dei materiali.

1. Scheda e saldatura di pulsanti momentanei unipolari a corsa singola (SPST)

  1. Procurarsi il battiscopa bianco su misura con fori per fissare i rack per valvole per odori, flussometri, scheda SSR48 e altri componenti mostrati nella Figura 1A.
    NOTA: Il battiscopa bianco utilizzato in questo studio è stato prodotto dall'officina meccanica del Neurotechnology Center presso il CU Anschutz Medical Campus (Figura 1A). I file di disegno sono disponibili all'indirizzo
  2. Aggiungere viti da 1 pollice e distanziatori da 3/4 di pollice per il posizionamento dell'SSR48-RACK. Le viti si trovano in alto a destra sul retro della lavagna (Figura 1A).
  3. Montare l'SSR48-RACK. L'SSR48-RACK sarà posizionato sul lato superiore sinistro del retro della lavagna (Figura 1C).
  4. Praticare dei fori (0,4 cm) per posizionare i blocchi morsettiera a vite sul retro della lavagna. Le morsettiere a vite si trovano al centro a destra del retro della lavagna (Figura 1D).
  5. Dall'alto verso il basso: la prima morsettiera a 4 viti verrà utilizzata per collegare i cavi per 24 V. La prossima morsettiera a vite verrà utilizzata per i cavi da 5 V. Lasciare vuota una morsettiera a vite e le ultime 4 morsettiere a vite verranno utilizzate per collegare i fili di terra.
  6. Praticare dei fori (0,8 cm) nella scatola di controllo per il posizionamento degli interruttori a pulsante momentanei SPST. La scatola di controllo si troverà nella parte inferiore anteriore della lavagna (Figura 1E).
  7. Impostare gli interruttori a pulsante momentanei SPST. Saldare due fili all'interruttore a pulsante momentaneo SPST. È preferibile utilizzare due colori diversi, come il rosso e il nero o il verde (Figura 1F).
  8. Collegare l'interruttore a pulsante momentaneo SPST alla scatola di controllo. I pulsanti sono dotati di un dado che viene utilizzato per essere fissato alla scatola nera di controllo (Figura 1G).
  9. Fissare i fili attorcigliandoli o fissandoli con del nastro adesivo per tenerli insieme e organizzati.
    NOTA: L'alimentazione a 24 V viene utilizzata per alimentare le valvole a manicotto e le valvole per gli odori, mentre l'alimentazione a 5 V viene utilizzata per il circuito di leccatura.
  10. Posizionare le valvole degli odori nelle fessure del rack delle valvole degli odori situato al centro della lavagna (Figura 2A).
    1. Staccare i fili che escono dalle valvole e saldare un filo da ciascuna valvola su un filo più spesso. Posizionare un filo a terra sulle morsettiere a vite sul retro della lavagna e un secondo filo nel pin corrispondente nell'SSR48-RACK. Ad esempio, la valvola degli odori 1 va al pin 1, la valvola degli odori 2 va al pin 2, ecc. (Figura 2B).
    2. Collegare i pin da 1 a 8 dell'SSR48-RACK a due valvole a manicotto ciascuna (valvole di ingresso e di uscita per le fiale di equilibratura dell'olio minerale). Per ogni valvola, collegare un filo da un pulsante all'alimentazione a 24 V e l'altro filo al pin dell'SSR48-RACK che è collegato alla valvola. L'altro filo va dalla valvola a terra. Fare riferimento alla Figura 2B, C per posizionare i fili al loro posto.
    3. Posizionare la valvola dell'acqua e la valvola finale nelle fessure corrispondenti della piastra della valvola. Lo slot si trova al centro della lavagna. Vedere la piastra delle valvole nella Figura 1 e il posizionamento delle valvole nella Figura 3A.
    4. Collegare la valvola dell'acqua e la valvola finale a terra e ai pin 17 e 18, rispettivamente, nell'SSR48-RACK. Collegare i pulsanti a 24 V e ai pin 17 e 18 (Figura 2B).

2. Alimentazione

  1. Acquista un alimentatore e una prolunga. Le informazioni relative al tipo specifico di alimentazione sono disponibili nella tabella dei materiali. L'alimentatore fornirà uscite a 24 V (V3) e 5 V (V1) e messa a terra all'olfattometro.
  2. Tagliare la spina del cavo di alimentazione per l'alimentatore. In particolare, la parte femmina della prolunga. Una volta tagliato, si possono vedere tre fili. Il filo verde è collegato a G (massa) sull'alimentatore e gli altri due fili (bianco e nero) sono collegati rispettivamente a L e N dell'ingresso a 120 V CA all'alimentatore (Figura 3B).
    ATTENZIONE: I cavi di alimentazione a 120 V sono esposti e sussiste il rischio di lesioni dovute a scosse elettriche. È meglio coprirlo con un isolante.
  3. Tagliare un'estremità del cavo che alimenta l'SSR48-RACK. Collegare uno dei fili alla vite G dell'alimentatore e il secondo al V1 dell'alimentatore (Figura 3C).
  4. Sull'alimentatore, collegare un filo da G2 a terra sulle morsettiere a vite (Figura 2C).
  5. Sull'alimentatore, collegare un filo da V1 alle morsettiere a vite da 5 V (Figura 2C).
  6. Sull'alimentatore, collegare un filo da V3 alle morsettiere a vite da 24 V (Figura 2C).

3. Scheda sensore Lick

  1. Procuratevi una breadboard da 400 punti di collegamento e fate passare un filo che si colleghi dai punti di collegamento B7 a B15 (Figura 3D).
  2. Collegare un'estremità di un filo al punto di legatura 6+ e l'altra estremità al punto di legatura C22 della breadboard (Figura 3D).
  3. Collegare un'estremità a D16 e la seconda estremità a G22 della breadboard (Figura 3D).
  4. Collegare un'estremità di un cavo allo slot I22 e la seconda estremità al 29- della breadboard (Figura 3D).
  5. Collegare un'estremità di un cavo allo slot 20A e la seconda estremità a 29A della breadboard (Figura 3D).
  6. Collegare un'estremità di un cavo a 21B e la seconda estremità a 28B della breadboard (Figura 3D).
  7. Collegare un'estremità di un filo allo slot 1+ della breadboard e la seconda estremità ai 5 V delle morsettiere a vite (Figura 3D).
  8. Collegare un'estremità di un cavo alla fessura 1- della breadboard e la seconda estremità alla massa delle morsettiere a vite (Figura 3D).
  9. Collegare un'estremità di un cavo allo slot C7 della breadboard e la seconda estremità al pin 27 dell'SSR-48RACK (Figura 3D).
  10. Collegare un'estremità di un filo allo slot 28C della breadboard e la seconda estremità avrà una clip a coccodrillo attaccata che si collegherà alla parte metallica della tromba d'acqua (Figura 3D).
  11. Collegare un'estremità di un cavo allo slot 20B della breadboard e l'altra estremità al terminale centrale del potenziometro (Figura 3D). I due terminali collegati agli elementi di resistenza del potenziometro sono collegati a massa e a 5 V. Il terminale centrale è collegato alla breadboard.
  12. Ottenere resistori da 21 mΩ. Per il primo, collegare un'estremità a 19A e la seconda estremità a 20D. Per il secondo, collegare un'estremità a 22C e l'altra estremità a 21D. Collegare al potenziometro (Figura 3D).
  13. Ottenere un resistore da un kΩ. Collegare un'estremità a 14C e la seconda estremità a 19C. Collegare al potenziometro (Figura 3D).
  14. Procurarsi una resistenza da 120 Ω. Collegare un'estremità a 7D e la seconda estremità a 7H (Figura 3D).
  15. Procurati una luce LED. Il colore non ha importanza. Collegare un cavo LED a 7J e il secondo filo a 6- (Figura 3D).
  16. Procurati due amplificatori operazionali (amplificatori operazionali). I collegamenti per il primo sono da E10 a E16, F10-F16 (Figura 3D).

4. Approvvigionamento di aria e acqua

  1. Posizionare due flussometri (uno da 2 L/min e uno da 50 cc/min) nei supporti dei flussometri. La Figura 4A mostra il sistema di flusso d'aria complessivo e la Figura 4B mostra la vista ingrandita dei misuratori di portata.
  2. Procurarsi una pompa per acquario per fornire un flusso d'aria di 2 L/min. Il modello di pompa per acquari qui utilizzato ha due uscite (vedi Tabella dei materiali). Collegare un piccolo pezzo di tubo da ciascuna delle due uscite della pompa dell'acquario ai due ingressi di un connettore a T (Figura 4B).
  3. Collegare un pezzo di tubo dall'uscita del connettore a T all'ingresso di un filtro a carboni attivi (Figura 4B).
  4. Collegare il tubo dall'uscita del filtro a carbone a un connettore a T e collegare le due uscite del connettore a una valvola a sfera per regolare la portata d'aria (Figura 4C).
  5. Collegare l'uscita di ciascuna valvola a sfera all'ingresso dei misuratori di portata (Figura 4D).
  6. Collegare l'uscita del flussometro da 50 cm/min al collettore superiore, fornendo aria alle fiale di equilibrazione degli odori da 40 mL con odoranti diluiti in olio minerale (Figura 4E).
  7. Collegare l'uscita di ciascuna fiala di odore all'ingresso corrispondente nel collettore inferiore.
  8. I tubi che collegano le fiale degli odori ai collettori sono tubi con valvola a manicotto che vengono aperti dalle due valvole a manicotto separate. Posizionare il tubo nelle valvole a manicotto.
  9. Collegare l'uscita del flussometro da 2 L/min all'ingresso dell'ingresso laterale del collettore inferiore.
  10. Collegare l'uscita del collettore inferiore all'ingresso della valvola finale (deviatrice) (Figura 4F).
    1. Collegare l'uscita di default della valvola finale al tubo di erogazione degli odori nella camera passa/non passa. Collegare l'uscita di spegnimento predefinita della valvola finale a un tubo di scarico (Figura 4G). Ciò si traduce in un flusso d'aria continuo non odorizzato di 2 L/min quando la valvola finale è spenta.
    2. Per ogni prova, assicurati che la valvola finale si apra quando l'animale lecca, portando l'aria allo scarico, e contemporaneamente si accenda la valvola degli odori. Ciò si traduce nell'equilibrio dell'odore nel flusso d'aria di fondo.
    3. Dopo 1-1,5 s, assicurarsi che la valvola finale si spenga, deviando l'aria nella camera. Ciò si traduce in un forte aumento della concentrazione di odorizzanti. Dopo 2,5 s, la valvola degli odori si spegne e la concentrazione degli odori torna a 0.
    4. Collegare un ago da 18 G alla punta della siringa da 5 ml che verrà utilizzata per erogare la ricompensa in acqua (Figura 4H).
    5. Collegare un tubo (2 mm di diametro) alla punta dell'ago (Figura 4H).
    6. Collegare l'altra estremità del tubo all'ingresso della valvola dell'acqua. Potrebbe essere necessario tagliare un tubo di diametro diverso per adattarsi all'ingresso della valvola dell'acqua (Figura 4I).
    7. Collegare il tubo dall'uscita della valvola dell'acqua al beccuccio (Figura 5A).

5. Collegamento dell'olfattometro al computer e installazione del software

  1. Collegare l'SSR48-RACK al DIO96H/50 con un connettore femmina-femmina a 100 pin. Collegare il cavo USB dal DIO96/H50 al computer (Figura 5B).
  2. Scarica l'ultima versione del software e dei driver mccdaq e InstaCal.
    NOTA: InstaCal è il programma che verifica la comunicazione tra il computer e DIO96/H50. Scarica il software e i driver più recenti qui: https://www.mccdaq.com/software-downloads.aspx.
  3. Esegui InstaCal. Assicurati che l'"Universal Serial Bus" indichi la scheda # come numero corretto, di solito #1 = scheda #1 USB-DIO96H/50.
  4. Scarica MATLAB.
  5. Scarica i programmi MATLAB per eseguire l'olfattometro da https://github.com/restrepd/dropc.
  6. Apri MATLAB come amministratore e imposta il percorso in modo che MATLAB riconosca i programmi. Nella scheda Home dell'ambiente MATLAB, fare clic su Imposta percorso nella sezione Ambiente. Si apre una finestra di dialogo in cui è possibile aggiungere cartelle nel percorso di ricerca.
  7. Eseguire daqregister('mcc'). Modificare il numero della scheda in dropcInitializePortsNow.m.
    NOTA: handles.dio = digitalio('mcc',1); %(1 o 0 a seconda del computer).
  8. Testare dropcspm.m eseguendo una prova a secco in cui l'utente "risponde" ad ogni prova collegando il circuito elettrico tra il beccuccio da leccare e il pavimento metallico della camera che è collegata a terra.
    NOTA: L'olfattometro è ora pronto per l'uso. Informazioni su come addestrare il topo si trovano in Nicole Arevalo et al.20.

6. Esperimenti sugli animali

  1. Preparare con cura i soggetti animali per iniziare il processo sperimentale. Pesare ogni topo individualmente utilizzando una bilancia calibrata e registrare il peso in un registro di laboratorio. Monitora questi dati cruciali durante lo studio per monitorare la salute degli animali e affrontare tempestivamente eventuali variazioni di peso.
  2. Posizionare delicatamente i mouse nella camera del mouse appositamente progettata dopo la pesatura. Attivare i sensori e i sistemi di erogazione degli stimoli per l'attività di discriminazione olfattiva. Assicurarsi che la camera riduca al minimo lo stress sugli animali, mantenendo un controllo preciso delle condizioni sperimentali.
  3. Assicurarsi che l'animale sia a suo agio nella camera. Avviare il programma MATLAB per controllare i parametri sperimentali come l'erogazione di stimoli olfattivi (2,5 s), l'erogazione di acqua e la registrazione delle risposte. Analizza i dati in tempo reale per ottenere un feedback immediato sulle prestazioni dell'animale.
  4. Monitora e analizza continuamente le prestazioni dell'animale. Guarda il punteggio di competenza calcolato in base alla percentuale di risposte corrette. Cerca di fare in modo che ogni animale raggiunga un punteggio di prestazione di 80 o superiore, che segna la soglia per la competenza nel compito.
  5. Inizia la nuova fase dell'esperimento una volta che l'animale raggiunge costantemente un punteggio di competenza di 80 o superiore, indicando la padronanza della discriminazione iniziale della coppia di odori. Inverti la coppia di odori, lasciando il profumo precedentemente premiato e viceversa.
    1. Testare la flessibilità cognitiva dell'animale e la capacità di disimparare e riapprendere le associazioni, ottenendo così preziose informazioni sulla plasticità dell'apprendimento olfattivo nei topi.

Results

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Seguendo il protocollo qui descritto, è possibile impostare un olfattometro per testare il comportamento go/no-go dei topi differenziando tra gli odori. La Figura 6A mostra il comportamento di un topo durante il primo giorno di addestramento nell'attività go/no-go, utilizzando l'acetato di etile come odorante S+ e una combinazione di acetato di etile e acetato di propile come S-. La percentuale di correttezza è calcolata come la percentuale di prove in cui il topo ottiene un successo o un rifiuto corretto. Inizialmente, il topo ha iniziato al 50% corretto perché leccava in risposta a entrambi gli odori. Tuttavia, dopo diverse prove, ha imparato a leccare solo per l'S+ e ha smesso di leccare per l'S-. La Figura 6B mostra la percentuale corretta per l'ultimo giorno dell'attività go/no-go nella direzione in avanti, dove l'animale ha raggiunto la competenza con prestazioni pari o superiori all'80%. A questo punto, gli odorizzanti sono stati invertiti (REV), con l'acetato di etile come odorante S- e la combinazione di acetato di etile e acetato di propile come S+. La Figura 6C mostra la percentuale corretta il primo giorno dell'attività go/no-go nella direzione inversa, dove le prestazioni del mouse sono scese al 10%. F mostra le prestazioni del mouse nell'ultimo giorno di inversione, dove ha nuovamente raggiunto la competenza.

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Figura 1: Lato anteriore della lavagna bianca dell'olfattometro e del cablaggio. (A) Le dimensioni dell'olfattometro sono 22" L x 16" A x 8,5" P, mostrate senza cablaggio o schede di interfaccia/lick, come consegnate dall'officina meccanica. I fori sono preforati per valvole per odori, termometri, valvole dell'acqua e finali, siringa dell'acqua, rastrelliera per bottiglie di odori, rastrelliera per valvole di odori e camera del mouse. (B) L'olfattometro preparato con gli 8 bulloni necessari per montare l'SSR48-RACK sul lato posteriore sinistro. (C) Olfattometro con SSR48-RACK montato, compresi i relè collegati. (D) Morsettiere a vite aggiunte all'olfattometro, con sezioni designate per 12 V, 5 V e terra. (E) Scatola nera di controllo con fori praticati per interruttori a pulsante momentanei SPST, con nastro adesivo che etichetta ciascun pulsante tramite il controllo della valvola. (F) Interruttore a pulsante momentaneo SPST con due fili termoretraibili con codice colore saldati per proteggere le aree esposte. (G) Interruttore a pulsante momentaneo SPST montato sulla scatola nera di controllo e fissato con il dado esagonale incluso. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

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Figura 2: Valvole e schemi degli odori. (A) Valvole degli odori montate saldamente nelle fessure e fissate con viti. (B) Schema del cablaggio della valvola degli odori all'SSR48-RACK e alle morsettiere a vite. (C) Schema di cablaggio della scatola nera di controllo, dell'alimentatore, dell'SSR48-RACK e delle morsettiere a vite. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

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Figura 3: Impostazione dell'acqua e della valvola finale con alimentazione. (A) Valvole dell'acqua e finali aggiunte alle apposite fessure dell'olfattometro e fissate con viti. (B) Cablaggio di alimentazione collegato per alimentare l'olfattometro. (C) Cablaggio di alimentazione per SSR48-RACK. (D) Sensore lick con i componenti collegati, inclusi resistori, cavi, LED e amplificatore operazionale. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

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Figura 4: Sistema di alimentazione dell'aria con flussometri e tubi. (A) Flussometri fissati alla cremagliera con viti. (B) Pompa dell'acquario collegata a un tubo, unita con un giunto a T. (C) Un filtro a carbone con tubo collegato all'uscita, con collegamenti ai singoli regolatori. (D) Tubi dai regolatori collegati agli ingressi del flussometro. (E) Tubo collegato alle uscite del flussometro. (F) Tubo dal collettore all'ingresso finale della valvola. (G) Valvola finale con tubo collegato alla porta dell'odore dell'olfattometro. (H) Siringa da 5 ml riempita d'acqua, tubo collegato a un ago da 18 G. (I) Tubo collegato all'ingresso della valvola dell'acqua. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

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Figura 5: Collegamenti finali delle valvole dell'acqua e panoramica del sistema. (A) Tubo dall'uscita della valvola dell'acqua al litimetro nell'olfattometro. (B) Collegamento dell'olfattometro al DIO96H/50 utilizzando un cavo femmina-femmina. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

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Figura 6: Esempio di prestazioni comportamentali in un'attività go/no go per un mouse. Le percentuali di risposte corrette in ogni sessione vengono visualizzate per: (A) Il primo giorno di condizionamento in avanti (S+: 1% acetato di isoamile, S-: olio minerale). (B) L'ultimo giorno di condizionamento in avanti. (C) Il primo giorno dopo l'inversione (S+: olio minerale, S-: 1% di acetato di isoamile). (D) L'ultimo giorno di condizionamento inverso. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

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Figura 7: Andamento del tempo di concentrazione dell'acetato di isoamile nella porta dell'odore. Concentrazione misurata del 10% di acetato di isoamile (diluito in olio minerale) nella porta dell'odore, utilizzando un dispositivo di fotoionizzazione (PID). Le linee verticali indicano l'inizio e la fine dell'erogazione degli odori. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Discussion

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In letteratura è disponibile una guida completa passo passo per la costruzione di un olfattometro progettato per compiti di associazione degli odori. I ricercatori possono incontrare varie sfide durante l'assemblaggio e il funzionamento del dispositivo, ma fortunatamente esistono metodi di risoluzione dei problemi consolidati per risolvere questi problemi. Una volta costruito e calibrato correttamente, l'olfattometro funge da strumento inestimabile per gli scienziati che conducono esperimenti relativi all'olfatto, consentendo un controllo e un'erogazione precisi degli stimoli olfattivi.

Passaggi critici
La versione di MATLAB scaricata dovrebbe essere la 2015, poiché il codice scritto è compatibile con questa versione e l'utilizzo di qualsiasi altra versione potrebbe causare problemi. È importante verificare che la scheda corretta sia selezionata in instacall. L'installazione di mcc.dill può essere eseguita eseguendo daqregister('mcc') mentre si è connessi come amministratore MATLAB.

Risoluzione dei problemi
All'inizio di ogni settimana di formazione, eseguire il software di calibrazione (InstaCal) per assicurarsi che il PC e l'olfattometro si interfaccino correttamente. Apri questo programma, fai clic sulla scheda e fai clic su Calibrazione digitale. La portata d'aria deve essere controllata. Il flusso d'aria di fondo deve essere di 2 L/min e il flusso alle fiale di equilibratura degli odori deve essere di 50 mL/min. È estremamente importante controllare regolarmente la portata d'aria all'uscita dell'olfattometro.

Prima di posizionare un mouse, è importante assicurarsi che vengano testati i seguenti parametri: (1) Valvole degli odori: le valvole degli odori devono essere cliccate quando si preme il pulsante sulla scatola nera. Il tubo dell'aria deve bollire nell'olio minerale, senza olio minerale intrappolato nel tubo. (2) Tubo degli odori: se gli odori non producono bolle, il tubo potrebbe essere ostruito nel punto in cui in genere pizzica vicino alla valvola. Potrebbe essere necessaria la sostituzione del tubo. (3) Valvola finale e valvola dell'acqua: la valvola finale deve aprirsi correttamente, con il tubo controllato per il corretto funzionamento. Per la valvola dell'acqua, l'aria che blocca il flusso d'acqua deve essere eliminata, consentendo all'acqua di fluire nel litorale. (4) Flusso d'aria: i misuratori di portata devono apparire calibrati e posizionati in modo appropriato. (5) Luci relè: assicurarsi che le "luci" sui relè si attivino correttamente durante l'esperimento. (6) Relè di ricompensa dell'acqua: Quando viene erogata una ricompensa in acqua, il relè sopra l'acqua dovrebbe lampeggiare mentre eroga la ricompensa. (7) Relè di ricompensa per odori e acqua: quando un odore è abbinato a una ricompensa per l'acqua, il relè rosso sopra il numero di valvola corrispondente dovrebbe lampeggiare in rosso durante la ricompensa.

Limitazioni
L'attività go/no-go verifica la capacità del mouse di testare 2 odori. Per eseguire l'attività, l'animale deve essere sottoposto a diverse sessioni. Questa non è una tecnica ad alto rendimento per testare la discriminazione degli odori. L'olfattometro è progettato per testare gli stimoli olfattivi. Non è un apparecchio di test multisensoriale. Tuttavia, è possibile apportare modifiche per testare altri input sensoriali.

Questo articolo descrive un olfattometro a diluizione liquida in cui l'aria che gorgoglia attraverso l'odorizzante diluito in olio minerale a una velocità di 50 mL/min è pre-bilanciata con il flusso d'aria di fondo a 2 L/min. Per questo design di erogazione dell'odore, la cinetica di diluizione dell'odore nel flusso d'aria del vettore determina la velocità dell'aumento della concentrazione dell'odore nel flusso d'aria di fondo. Come mostrato nella Figura 7, mentre la concentrazione aumenta entro 200 ms fino alla metà della concentrazione finale, la velocità di variazione della concentrazione rallenta oltre il mezzo secondo. Sebbene questa configurazione non produca una variazione a passo quadrato nella concentrazione dell'odore, è stata utilizzata con successo per studiare la discriminazione e il rilevamento degli odori21. Se il protocollo sperimentale richiede un cambiamento graduale nella concentrazione dell'odore, il progetto per l'erogazione dell'odorizzante deve essere modificato in tre canali di flusso d'aria di fondo continui da 2 L/min in cui gli odorizzanti vengono erogati continuamente nel flusso d'aria di fondo di due dei canali del flusso d'aria di fondo. Il terzo canale di mandata fornirebbe aria bilanciata con olio minerale. In questo caso, le valvole deviatrici verrebbero utilizzate per deviare uno dei due odorizzanti o l'aria priva di odori nella porta degli odori. Ciò comporterebbe un aumento graduale della concentrazione di odorizzante alla porta dell'odore (anche rapporti precedenti19,22). Indipendentemente da ciò, è fondamentale documentare il corso temporale per la variazione della concentrazione di odore utilizzando un rivelatore a fotoionizzazione.

L'olfattometro qui descritto è progettato per esperimenti comportamentali sui topi, tuttavia questo design è stato utilizzato in passato per i ratti. La differenza principale è che è necessario aumentare le dimensioni della camera per gli studi con i ratti23. Infine, questo olfattometro valuta il comportamento olfattivo di un singolo topo. È stato descritto un olfattometro automatizzato ad alta produttività per testare più topi24.

Significato
Questo protocollo descrive un olfattometro su misura, che riduce i costi rispetto ad altri metodi disponibili.

Applicazioni future
L'olfattometro è progettato specificamente per l'uso con i topi e richiede modifiche per l'uso con altri animali, come i ratti. È possibile incorporare anche funzionalità aggiuntive, come un sistema di registrazione multi-elettrodo (ad esempio, una scheda di registrazione multi-elettrodo), una scheda Arduino Uno o una fotocamera.

Disclosures

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Gli autori non hanno nulla da rivelare e non ci sono interessi finanziari concorrenti.

Acknowledgements

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Questa ricerca è stata supportata da sovvenzioni NIH K01 NS127850-01, R25 NS080685, R01 NS081248 e DC000566. Vorremmo ringraziare tutti i membri del laboratorio di Restrepo e Ramirez-Gordillo per il loro sostegno.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
2 1/8' ’ Presa per breadboard IC modulareTrovato il: amazon.comASIN ‏: B004MCSOQYAlimenta le luci e lecca la censura
500 pezzi assortiti resistori a film di carbonio 1/4 wattTrovato su amazon.com
marchio:bojack
I resistenti andranno sulla presa BreadBoard
Potenziometro conico lineare da 50k-ohmMarca:TWTADE
Trovato su: Amazon.com
Consente di collegare i componenti dell'olfattometro

Alimentazione: Ac 220v-6A
Diametro di spostamento: 6mm/0.2"
Lunghezza dell'albero: 15 mm/0,59" filettatura di montaggio.

Dimensioni manopola 15/17mm/0.6 x 0.67" (d*H)
la regolazione della potenza 
LED rosso da 5 mmTrovato su: Amazon.com
Marchio:EDGELEC
Precablato con resistenza incorporata; Lampadina superiore rotonda da 5 mm e LED cablati-Connessione facile con 3-6 V CC Drive, fili lunghi 7,9 pollici.

Potenza: 1 Watt
Striscia di bracci a doppia fila a 6 posizioniTrovato il: Digikey.comCodice prodotto base
1546306
Utilizzato per l'alimentazione e la terra a seconda di come è collegato
Tensione nominale: 300v
Corrente nominale (ampere): 20A
Diametro del filo: 12-22 AWG
96 Connettore a 50 pin ad alta corrente da femmina a femminaTrovato su: Amazon.com
marchio: ‎ IIVVERR
Numero di parte:‎ F5C953EE65A980DPeso: 109 g
Passo: 2,54 mm
Dimensioni totali: 50x6,4 cm/2x2,5 pollici
Pompa per acquario -AAPA7.8L 125 GPH, 2 USCITE 3WTrovato on:Amazon.com
Marchio: Hydrofarm store
Questo si collegherà all'alloggiamento dell'acqua fredda a doppia estremità aperta e verrà utilizzato per alimentare l'aria sulla macchina
Connettore a T spinato in polietilene 1/4"Trovato il: Uplastic.comNumero dell'articolo:62200Collega tra loro diversi tubi dell'aria
Connettore a T spinato in polietilene 3/16"Trovato il: Uplastic.comNumero articolo:62063Collega tra loro diversi tubi dell'aria
Ago ipodermico di precisione scorrevole di precisione BD per uso generale 18 G ½Trovato il: Medneedles.comArtNr.: BD 305195Utilizzato per l'impianto idrico
Scatola nera/scatola di controllo manualeMarca:Otdorpatio
Trovato su: Amazon
n/aUtilizzato come scatola di controllo
Dimensioni: 3,94x2,68x1,97
Cavo, alimentazione pc connessioni interne 10ftTrovato il: Amazon.comSi collega all'alimentatore

40 watt
Tubo Cflex, bianco ¼ ” ID x 3/8" OD Trovato on:uplastic.comNumero articolo:54033Tubi utilizzati nel sistema dell'aria
base bianca su misura con fori per il fissaggio delle cremagliere per valvole odori, flussometri, scheda SSR48L'officina meccanica del Centro di Neurotecnologia nel CU Anschutz Medical Campus.
Valvola deviatrice valvola per liquidi inerti miniaturizzata, a 3 vieTrovato on:Radwell.comNumero di parte: 003-0258-9001/8 BARB
24VDC
FINO A 1500 SCCM
4,2W
Doppia custodia per acqua fredda aperta con pozzetto bluTrovato on:GRAINGER.COM
BrandPENTAIR/PENTEK
Numero di modello Mfr. compatibile150295; 150578; 151117; 151118; 151120; 155003; 244043; 244686; 244687
Fiale EPA in vetro FisherbrandTrovato il: fishersci.comN. catalogo 02-912-379Utilizzato per gli odori
Raccordo riduttore 1/4" x 1/8"Trovato il: uplastic.comNumero articolo: 64370Adattatore utilizzato nei tubi flessibili del sistema dell'aria.
Tubi rigidi, polietilene intramedico,  0,045 (ID) 1 x 100
LED ad alto infrarossoTrovato su amazon.com
marchio: gikfun
Velocità di clock della memoria 1mhz
Ic opamp gp 4 circuito 14dipTrovato su: Amazon.com
Marca:BOJACK
Tensione di esercizio 50 Volt
Tensione massima 50 Volt
Kit cavo di collegamentoTrovato su: Amazon.com
Marchio:Elegoo
Dimensioni articolo LxPxA: 0.04 x 8.27 x 0.04 pollici
Interruttore momentaneo mini spstMarca:Radioshack
Trovato su: Amazon.com
B000TLWZM6Utilizzato per le valvole degli odori
Portata operativa: 250V
Corrente nominale: 1 Ampere
MultimetroTrovato su Amazon.com
marchio:AstroAl
Misura con precisione la corrente CA/CC, la tensione CA/CC, la capacità, la frequenza, il ciclo di lavoro, la resistenza, il diodo, la continuità e la temperatura
Naso ad agoTrovato on:amazon.com
Marca:WorkPro
Verrà utilizzato per piegare i fili
Valvole per odoriTrovato on:Radwell.comCodice SKU: 192833415
Numero parte:225T031
Pompa gli odori dalle fiale.
30 PSIG
12 VDC
FototransistorTrovato su: Amazon.com
Marchio:HILETGO
Tensione: 1,3-1,5 V
Gamma di ricezione: (NM) 400-1000
Dimensioni della testa: 5 mm x 5 mm / 0,2" x 0,2" (D*L)
Fototransistor e LED in coppia
Adattatore per tubo 3/4" x 1/4"Trovato il: uplastic.comNumero di articolo: 64807Adattatore utilizzato nei tubi flessibili del sistema dell'aria.
Adattatore per tubo per pompa alloggiamento acqua - m ¾ x1/4"Usplastic.comNumero di articolo: 64807Intervallo di temperatura da -50F a 275F
Pressione massima: 150psi
Peso 0,0015 libbre
Alimentazione 12v 30A 360WTrovato su: Amazon.com
Marca:ALITOVE
la principale fonte di alimentazione della macchina.
  Tensione di ingresso: 220 Volts
Uscita: DC 12V 30A max.
Tubi in PTFETrovato su Amazon.com
RITEFLUSSIMETRI FLOW CON ESTREMITÀ PIATTE (NON MONTATI)Trovato on:Globalindustrial.com
Numero di modello: t9FB3075514
ArtNr.: H40407-0075Monitora il flusso d'aria nell'olfattometro
scala da 150 mm, dimensioni 2
Numero di parte del produttore: H40407-0075
CacciaviteTrovato su: Amazon.com
Marchio:Sharden
Utilizzato per viti su olfattometro
Shrimk involucro/tubo (varie dimensioni per filo di calibro 18-22Trovato su: Amazon.com
Marchio:eventronic
Materiale: realizzato in poliolefina, rapporto di restringimento: 2: 1 (si restringerà a 1/2 del diametro fornito)
Tubo in silicone 0,030 x 0,065Trovato on:Amazon.com
Marca:Materie prime scientifiche
Tubo per le fiale degli odori
Saldatura con piomboTrovato on:Uline.comS-25294Verrà utilizzato con il saldatore
SaldatoreTrovato on:Uline.comModello H-10799Verrà utilizzato per saldare i bottoni sulla scatola di controllo e altre connessioni
Modulo relè a stato solido Quad Output – RossoTrovato il: https://www.sealevel.com/Parte: OB5Q    Modello: Modulo QSSR con uscita CCCapacità: 8 pF
Dimensioni: 2,4" (L) x 1,1" (L) x 3,1" (H)
# di I/O: 4 uscite
Tensione massima di linea: 60 VDC
Corrente massima in stato ON: 3A
Tensione minima di linea: 3 VDC
Temperatura di funzionamento: -30° C a 80 gradi C (-22° F a 176° F)
Isolamento dell'uscita: 4000 Vrms
Temperatura di stoccaggio: -40° C a 100 gradi C (-40° F a 212° F)
Interruttore a pulsante SPSTMarca:Apiele
Trovato su: Amazon.com
n/aUtilizzato all'interno della valvola dell'acqua di controllo della scatola di controllo e della valvola finale.
Tensione di esercizio 250v
Corrente nominale: 1 Ampere, 3 Ampere
Ssr-rack 48Trovato on:Radwell.comCodice SKU: 83105002Elabora tutte le connessioni dell'olfattometro e funziona con relè a stato sooide di tipo quad.
Tubi di alimentazione in acciaio inossidabile
Puntale più tinner e più pulitoTrovato su: Amazon.com
Marca:Thermaltronics
Numero di modello: FBA-TMT-TC-2
Valvola a sfera PVC 1/4" Barb BunaTrovato il: uplastic.comNumero dell'articolo:62281
valvola dell'acquaTrovato il: Ph.parker.com# parte: 003-0257-900Pompa l'acqua nella camera
Portata massima: 1500 sccm
Tensione (VDC): 24
Pressione massima di esercizio: 50 psi, 3,44 bar
Filo 22awgMarca:tuofeng
Trovato su: Amazon.com
N/aUtilizzato per cablare diversi componenti dell'olfattometro
Materiale: rame
Calibro 30.0
Cesoie per filiTrovato on:Amazon.com
marchio:Billbotk
Verrà utilizzato per tagliare i fili
Come marca: PTFEParte #036663601452Utilizzare per l'erogazione di odoranti.
https://medschool.cuanschutz.edu/neurotechnologycenter/Cores/machine-shop

References

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. An odor is not worth a thousand words: from multidimensional odors to unidimensional odor objects. Annu Rev Psychol. 61, 219-241 (2010).">Yeshurun, Y., Sobel, N. An odor is not worth a thousand words: from multidimensional odors to unidimensional odor objects. Annu Rev Psychol. 61, 219-241 (2010).
  2. Unraveling the sense of smell (Nobel lecture). Angew Chem Int Ed Engl. 44, 6128-6140 (2005).">Buck, L. B. Unraveling the sense of smell (Nobel lecture). Angew Chem Int Ed Engl. 44, 6128-6140 (2005).
  3. Temporal dynamics and latency patterns of receptor neuron input to the olfactory bulb. J Neurosci. 26 (4), 1247-1259 (2006).">Spors, H., Wachowiak, M., Cohen, L. B., Friedrich, R. W. Temporal dynamics and latency patterns of receptor neuron input to the olfactory bulb. J Neurosci. 26 (4), 1247-1259 (2006).
  4. Axon guidance of mouse olfactory sensory neurons by odorant receptors and the beta2 adrenergic receptor. Cell. 117 (6), 833-846 (2004).">Feinstein, P., Bozza, T., Rodriguez, I., Vassalli, A., Mombaerts, P. Axon guidance of mouse olfactory sensory neurons by odorant receptors and the beta2 adrenergic receptor. Cell. 117 (6), 833-846 (2004).
  5. Precision and diversity in an odor map on the olfactory bulb. Nat Neurosci. 12, 210-220 (2009).">Soucy, E. R., Albeanu, D. F., Fantana, A. L., Murthy, V. N., Meister, M. Precision and diversity in an odor map on the olfactory bulb. Nat Neurosci. 12, 210-220 (2009).
  6. Illuminating vertebrate olfactory processing. J Neurosci. 32, 14102-14108 (2012).">Spors, H., et al. Illuminating vertebrate olfactory processing. J Neurosci. 32, 14102-14108 (2012).
  7. In search of the chemical basis for MHC odourtypes. Proc Biol Sci. 277 (1693), 2417-2425 (2010).">Kwak, J., Willse, A., Preti, G., Yamazaki, K., Beauchamp, G. K. In search of the chemical basis for MHC odourtypes. Proc Biol Sci. 277 (1693), 2417-2425 (2010).
  8. Olfactory fingerprints for major histocompatibility complex-determined body odors II: relationship among odor maps, genetics, odor composition, and behavior. J Neurosci. 22 (21), 9513-9521 (2002).">Schaefer, M. L., Yamazaki, K., Osada, K., Restrepo, D., Beauchamp, G. K. Olfactory fingerprints for major histocompatibility complex-determined body odors II: relationship among odor maps, genetics, odor composition, and behavior. J Neurosci. 22 (21), 9513-9521 (2002).
  9. A distinct entorhinal cortex to hippocampal CA1 direct circuit for olfactory associative learning. Nat Neurosci. 20 (4), 559-570 (2017).">Li, Y., et al. A distinct entorhinal cortex to hippocampal CA1 direct circuit for olfactory associative learning. Nat Neurosci. 20 (4), 559-570 (2017).
  10. A neural system that represents the association of odors with rewarded outcomes and promotes behavioral engagement. Cell Rep. 32 (3), 107919(2020).">Gadziola, M. A., et al. A neural system that represents the association of odors with rewarded outcomes and promotes behavioral engagement. Cell Rep. 32 (3), 107919(2020).
  11. Selective attention controls olfactory decisions and the neural encoding of odors. Curr Biol. 28 (14), 2195-2205.e4 (2018).">Carlson, K. S., Gadziola, M. A., Dauster, E. S., Wesson, D. W. Selective attention controls olfactory decisions and the neural encoding of odors. Curr Biol. 28 (14), 2195-2205.e4 (2018).
  12. Olfactory inputs modulate respiration-related rhythmic activity in the prefrontal cortex and freezing behavior. Nat Commun. 9, 1528(2018).">Moberly, A. H., et al. Olfactory inputs modulate respiration-related rhythmic activity in the prefrontal cortex and freezing behavior. Nat Commun. 9, 1528(2018).
  13. Information for decision-making and stimulus identification is multiplexed in sensory cortex. Nat Neurosci. 16 (8), 991-993 (2013).">Gire, D. H., et al. Information for decision-making and stimulus identification is multiplexed in sensory cortex. Nat Neurosci. 16 (8), 991-993 (2013).
  14. Molecular layer interneurons in the cerebellum encode for valence in associative learning. Nat Commun. 11 (1), 4217(2020).">Ma, M., et al. Molecular layer interneurons in the cerebellum encode for valence in associative learning. Nat Commun. 11 (1), 4217(2020).
  15. Robust odor coding across states in piriform cortex requires recurrent circuitry: evidence for pattern completion in an associative network. bioRxiv. , 694331(2019).">Bolding, K. A., et al. Robust odor coding across states in piriform cortex requires recurrent circuitry: evidence for pattern completion in an associative network. bioRxiv. , 694331(2019).
  16. Recurrent cortical circuits implement concentration-invariant odor coding. Science. 361 (6407), eaat6904(2018).">Bolding, K. A., Franks, K. M. Recurrent cortical circuits implement concentration-invariant odor coding. Science. 361 (6407), eaat6904(2018).
  17. Complementary codes for odor identity and intensity in olfactory cortex. Elife. 6, e22630(2017).">Bolding, K. A., Franks, K. M. Complementary codes for odor identity and intensity in olfactory cortex. Elife. 6, e22630(2017).
  18. Performance of mice in an automated olfactometer: odor detection, discrimination and odor memory. Chem Senses. 24 (6), 637-645 (1999).">Bodyak, N., Slotnick, B. Performance of mice in an automated olfactometer: odor detection, discrimination and odor memory. Chem Senses. 24 (6), 637-645 (1999).
  19. Olfactometry with mice. Curr Protoc Neurosci. Chapter 8 (Unit 8.20), (2005).">Slotnick, B., Restrepo, D. Olfactometry with mice. Curr Protoc Neurosci. Chapter 8 (Unit 8.20), (2005).
  20. Olfactory detection thresholds for primary aliphatic alcohols in mice. Chem Senses. 45 (7), 513-521 (2020).">Williams, E., Dewan, A. Olfactory detection thresholds for primary aliphatic alcohols in mice. Chem Senses. 45 (7), 513-521 (2020).
  21. Closed-Loop Optogenetic Stimulation of the Olfactory Circuit at Different Phases of Theta Oscillations of the Local Field Potential. Methods Mol Biol. 2915, 179-187 (2025).">Villanueva, J. A., Restrepo, D., Ramirez-Gordillo, D. Closed-Loop Optogenetic Stimulation of the Olfactory Circuit at Different Phases of Theta Oscillations of the Local Field Potential. Methods Mol Biol. 2915, 179-187 (2025).
  22. Animal Models of Reproductive Behavior. Neuromethods. 200, (2023).">Arevalo, N., et al. Open-source JL olfactometer for awake behaving recording of brain activity for mice engaged in olfactory tasks. Animal Models of Reproductive Behavior. Neuromethods. 200, (2023).
  23. Odor discrimination and odor quality perception in rats with disruption of connections between the olfactory epithelium and olfactory bulbs. J Neurosci. 22 (10), 4205-4216 (2002).">Slotnick, B., Bodyak, N. Odor discrimination and odor quality perception in rats with disruption of connections between the olfactory epithelium and olfactory bulbs. J Neurosci. 22 (10), 4205-4216 (2002).
  24. A novel olfactometer for efficient and flexible odorant delivery. Chem Senses. 44 (3), 173-188 (2019).">Burton, S. D., et al. A novel olfactometer for efficient and flexible odorant delivery. Chem Senses. 44 (3), 173-188 (2019).
  25. Olfaction in olfactory bulbectomized rats. J Neurosci. 24 (41), 9195-9200 (2004).">Slotnick, B., Cockerham, R., Pickett, E. Olfaction in olfactory bulbectomized rats. J Neurosci. 24 (41), 9195-9200 (2004).
  26. High-throughput automated olfactory phenotyping of group-housed mice. Front Behav Neurosci. 13, 267(2019).">Reinert, J. K., Schaefer, A. T., Kuner, T. High-throughput automated olfactory phenotyping of group-housed mice. Front Behav Neurosci. 13, 267(2019).

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