Le proteine secrete del Mycobacterium tuberculosis (M. tuberculosis) svolgono un ruolo cruciale nella patogenesi della tubercolosi, nella modulazione immunitaria e nella progressione della malattia. Comprendere la loro composizione e funzione è essenziale per identificare nuovi biomarcatori che possono aiutare nella diagnosi della tubercolosi, nello sviluppo di vaccini e negli interventi terapeutici. Questo studio si concentra sull'isolamento, il frazionamento e la caratterizzazione sistematici delle proteine filtrate di coltura (CFP) per consentire analisi immunologiche e proteomiche complete. Le CFP sono state ottenute da colture H37Rv di M. tuberculosis coltivate in condizioni chimicamente definite per garantire un'espressione proteica controllata. Il surnatante di coltura è stato purificato mediante filtrazione e concentrato utilizzando un sistema a fibre cave per trattenere le proteine superiori a 10 kDa. Il frazionamento è stato ottenuto attraverso la focalizzazione isoelettrica in fase liquida, separando le proteine in base ai loro punti isoelettrici in 20 frazioni distinte. Un'ulteriore risoluzione è stata eseguita utilizzando l'elettroforesi preparativa su gel di sodio dodecil solfato-poliacrilammide (SDS-PAGE), seguita da elettroeluizione, ottenendo 30 frazioni proteiche. Le proteine frazionate ottenute attraverso questo approccio forniscono una risorsa preziosa per la profilazione immunologica e le analisi proteomiche basate sulla spettrometria di massa. Isolando e caratterizzando sistematicamente le proteine secrete, questo studio contribuisce all'identificazione di biomarcatori proteici specifici per la tubercolosi, che potrebbero migliorare l'accuratezza diagnostica e far progredire la nostra comprensione della patogenesi di M. tuberculosis .