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Articolo metodologico

Consegna efficace e sicura del gene al rene di topo tramite iniezione lenta retrograda della pelvi renale di vettori virali adeno-associati

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DOI:

10.3791/67716

1 agosto 2025

In questo articolo

Sommario

Questo rapporto descrive in dettaglio il metodo di iniezione localizzato dei vettori AAV attraverso la pelvi renale per un trasferimento genico efficace e sicuro nel rene di topo.

Abstract

Lo sviluppo di strumenti e metodi efficaci in vivo per la consegna genica al rene è fondamentale per far progredire la ricerca renale di base e la terapia genica per le malattie renali. Inoltre, la crescente consapevolezza delle malattie renali monogeniche, guidata da test genetici avanzati, sottolinea il potenziale della terapia genica per trattare e persino curare malattie renali genetiche difficili da trattare. A questo proposito, i vettori di virus adeno-associati (AAV) hanno attirato una crescente attenzione come solida piattaforma per la consegna genica in vivo ; tuttavia, il metodo più efficace e sicuro per la somministrazione genica mediata da vettore AAV a ciascun tipo di cellula terapeuticamente rilevante nel rene non è stato ancora completamente stabilito. Qui, viene descritto in dettaglio il metodo di iniezione lenta della pelvi renale retrograda (RP) di vettori AAV e viene dimostrato il suo alto potenziale di trasduzione dei reni di topo quando utilizzato con capsidi AAV opportunamente selezionati. Inoltre, questo metodo si è dimostrato efficace non solo con i vettori AAV (CsCl AAV) purificati con ultracentrifugazione al cloruro di cesio standard, ma anche con i miniprep di vettori AAV (CU AAV) ultrafiltrati centrifugamente, che possono essere preparati rapidamente e semplicemente utilizzando tecniche che non richiedono competenze specialistiche sui vettori AAV. Ad esempio, questo studio dimostra che l'iniezione lenta di RP di entrambi i vettori CsCl e CU AAV-KP3 provoca una robusta trasduzione dei tubuli prossimali nel rene di topo senza danni tissutali apparenti, a differenza degli approcci idrodinamici precedentemente riportati che portano inevitabilmente a danni tissutali. Pertanto, questo studio evidenzia che l'iniezione lenta di RP retrograda di vettori selezionati derivati dal capside AAV è un metodo efficace e sicuro per la consegna genica al rene. Questo metodo sarà applicabile a un ampio spettro di ricerche sui reni, compresi gli studi di terapia genica. L'uso di miniprep vettoriali CU AAV aumenterà significativamente la produttività e migliorerà l'efficienza in termini di tempo e costi necessari per generare dati preliminari e ottenere informazioni cruciali.

Introduzione

Metodi efficaci e sicuri per la consegna di geni al rene in piccoli e grandi animali da esperimento offrono opportunità cruciali per far progredire la ricerca renale di base ed esplorare approcci terapeutici innovativi. L'istituzione di tali metodi è particolarmente rilevante per la terapia genica per varie malattie renali. I recenti progressi nei test genetici clinici hanno rivelato una prevalenza di malattie renali monogeniche più elevata di quanto stimato in precedenza, che colpisce circa il 30% dei pazienti con malattie renali croniche (CKD)1. La CKD è caratterizzata da un danno renale progressivo, che port....

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Protocollo

Tutti gli esperimenti sugli animali qui descritti sono stati approvati dall'Institutional Animal Care and Use Committee dell'Oregon Health & Science University (OHSU) e sono stati eseguiti in conformità con le linee guida per la cura degli animali dell'OHSU. In questo studio sono stati utilizzati topi maschi C57BL/6J di otto settimane. I reagenti e le attrezzature utilizzate in questo studio sono elencati nella Tabella dei materiali.

1. Produzione di vettori AAV mediante trasfezione plasmidica priva di adenovirus

  1. Coltura di 293 cellule di rene embrionale umano (....

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Risultati

Uno studio recente ha identificato un piccolo sottogruppo di capsidi AAV che mostra un notevole aumento della trasduzione renale rispetto ad AAV9 dopo l'iniezione di RP38. Il sottogruppo identificato include AAV-KP3, un capside chimerico di AAV generato dal rimescolamento del DNA41. Pertanto, AAV-KP3 è stato scelto per l'iniezione di RP in questo studio, insieme ad AAV9 come punto di riferimento. Il vettore AAV9-CAG-tdTomato (AAV9) e il vet.......

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Discussione

Questo rapporto ha dettagliato l'iniezione lenta di RP retrograda di vettori AAV come metodo di somministrazione locale per la consegna genica al rene di topo. Un passaggio fondamentale per eseguire in sicurezza l'iniezione di RP è la regolazione della velocità di iniezione dei vettori AAV per evitare danni parenchimali ai reni iniettati. In un precedente rapporto sull'iniezione idrodinamica della pelvi renale, 100 μL di soluzione di DNA plasmidico sono stati iniettati nel rene di topo i.......

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Dichiarazioni

H.N. riceve una royalty sulle tecnologie relative all'AAV concesse in licenza da Takara Bio Inc. e Capsigen Inc., funge da consulente per aziende biotecnologiche, è co-fondatore di Capsigen Inc. e detiene azioni di Capsigen Inc. e Sphere Gene Therapeutics.

Ringraziamenti

Ringraziamo Guangping Gao e James M. Wilson per averci fornito il plasmide helper di AAV9 e Katja Pekrun e Mark A. Kay per il plasmide helper di AAV-KP3.

....

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
0,45 μm PVDF syringe filterMilliporeSigmaSLHVR33RS
1,5 mL microcentrifuge tubeFisher Scientific05-408-129
15 mL polypropylene tubeCorning352097
16% paraformaldeide (PFA)Electron Microscopy Sciences15710
250 mL centrifuge bottleFisher Scientific055641S24
2F Silicone tubingSai Infusion TechnologiesSIL-2-50
25G butterfly needleMedex Supply26708
2-metilbutaneMilliporeSigmaMX0760
2x qPCR reaction bufferFisher Scientific43-676-59Power SYBR Green PCR Master Mix
30G needleBecton-Dickinson & Co305106
50 mL polypropylene tubeCorning430291
5-0 monofilament sutureEthiconY463G
5 M NaClLonza51202
6-0 absorbable sutureEthiconJ489G
7,5% Mini-PROTEAN TGX Precast
Protein Gels, 10-well, 30 μL
Bio-Rad4561023
Amersham ImageQuant 800 Western
Blot Imaging System (Cytiva)
Cytiva29459405
Amicon 100 kDa MWCO, 15 mL tubeMillipore SigmaUFC910024
Anti-aquaporin 2 (AQP2) antibodyAbcamab199975A marker for collecting duct cells
Anti-Na-K-2Cl cotransporter 2
(NKCC2) antibody
StressMarq BiosciencesSPC-401A marker for thick ascending limb
cells
Anti-rabbit IgG Alexa Fluor 647
antibody
Jackson ImmunoResearch111-605-144
Anti-Wilms Tumor 1 (WT1) antibodyAbcamab89901A marker for podocytes
Beckman Coulter OptiSeal Tube,
Polypropylene, 29,9 mL
Fisher ScientificNC9691210
Beckman Coulter OPTISEAL TUBESFisher ScientificNC9611575
BenzonaseSigma-Aldrich1016970001
Bovine serum albumin (BSA)Sigma-Aldrich5470
Centrifugal ultrafiltration tubeMilliporeSigmaUFC9100Amicon 100 kDa MWCO, 15 mL
Ceramic bead tubeFisher Scientific15-340-154
Cesium chlorideSigma-AldrichC3032-1KG
Clamp applying forcepsFine Science Tools00071-14
Closed-loop heat padStryker Medical8002-062-012
Cotton-tipped applicatorPuritan806-WC
Cover glassFisher Scientific12-541B
Cryostat microtomeTanner ScientificTN50
Curved forcepsFine Science Tools11052-10
Curved-type micro vessel clipKleinert-Kutz65145Clamp for the renal artery and renal
vein
Dialysis cassetteFisher ScientificPIA52976
DNA extraction kitQiagen57704QIAamp MinElute Virus Spin Kit
D-SorbitolSigma-AldrichS6021-1KG
Dulbecco's Modified Eagle Medium-
high glucose
Corning15-013-CVDMEM-high glucose (4,5 g/L)
EDTAFisher Scientific15-575-020
EthanolDecon Laboratories2716GEA
Fetal bovine serum (FBS)VWR89510-186
Gas-tight glass syringeHamilton1710 TLL
Glutaraldehyde solutionSigma-AldrichG6257
Heat therapy pumpKent ScientificHTP-1500
HEPESSigma AldrichH4034-100G
Hoechst 33342InvitrogenH3570
HomogenizerFisher Scientific15-340-163
Human embryonic kidney (HEK) 293
cells
Agilent240073
Ice bucketFisher Scientific07-210-104
Infusion syringe pumpHarvard Apparatus70-4507
IsofluranePiramal Critical CareNDC 66794-017-10
L-glutamineFisher Scientific25030-081
Liquid blocker penTed Pella22309
Lotus tetragonolobus lectin (LTL)-
Fluorescein
Vector LaboratoriesFL-1321-2A marker for proximal tubules
Magnesium chloride (MgCl2)MilliporeSigmaM1028
MeloxicamVetOneNDC 86136-012-10Analgesic
Microscope glass slideFisher Scientific12-550-15
Mounting mediumSouthernBiotech0100-01
Needle holderFine Science Tools12501-13
OCT compoundSakura Finetek4583
Ophthalmic ointmentBausch & LombNDC 24208-313-34
PE-10 polyethylene tubeBD427401Inner diameter: 0,28 mm
Penicillin & Streptomycin MixFisher Scientific15140-122
Phosphate-buffered saline (PBS)Fisher Scientific10010-049
Plastic cryomoldSakura Finetek4566
Poloxamer 188 Non-ionic Surfactant
(10%)
Fisher Scientific24-040-032
Polyethylene Glycol 8000Fisher ScientificBP233-1
Polyethylenimine (PEI)Polysciences23966
Povidone iodineRicca

Riferimenti

  1. Groopman, E. E., et al. Diagnostic utility of exome sequencing for kidney disease. N Engl J Med. 380 (2), 142-151 (2019).
  2. Hussien, H., Apetrii, M., Covic, A. Health-related quality of life in patients with chronic kidney disease. Expert Rev Pharmaco....

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Ristampe e permessi

Tag

Vettori AAViniezione renale retrogradaterapia genica renaletrasduzione del tubulo prossimaleAAV CsClAAV CUmodelli di malattia renaletrasduzione in vivo