Questo rapporto descrive in dettaglio il metodo di iniezione localizzato dei vettori AAV attraverso la pelvi renale per un trasferimento genico efficace e sicuro nel rene di topo.
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Articolo metodologico
Questo rapporto descrive in dettaglio il metodo di iniezione localizzato dei vettori AAV attraverso la pelvi renale per un trasferimento genico efficace e sicuro nel rene di topo.
Lo sviluppo di strumenti e metodi efficaci in vivo per la consegna genica al rene è fondamentale per far progredire la ricerca renale di base e la terapia genica per le malattie renali. Inoltre, la crescente consapevolezza delle malattie renali monogeniche, guidata da test genetici avanzati, sottolinea il potenziale della terapia genica per trattare e persino curare malattie renali genetiche difficili da trattare. A questo proposito, i vettori di virus adeno-associati (AAV) hanno attirato una crescente attenzione come solida piattaforma per la consegna genica in vivo ; tuttavia, il metodo più efficace e sicuro per la somministrazione genica mediata da vettore AAV a ciascun tipo di cellula terapeuticamente rilevante nel rene non è stato ancora completamente stabilito. Qui, viene descritto in dettaglio il metodo di iniezione lenta della pelvi renale retrograda (RP) di vettori AAV e viene dimostrato il suo alto potenziale di trasduzione dei reni di topo quando utilizzato con capsidi AAV opportunamente selezionati. Inoltre, questo metodo si è dimostrato efficace non solo con i vettori AAV (CsCl AAV) purificati con ultracentrifugazione al cloruro di cesio standard, ma anche con i miniprep di vettori AAV (CU AAV) ultrafiltrati centrifugamente, che possono essere preparati rapidamente e semplicemente utilizzando tecniche che non richiedono competenze specialistiche sui vettori AAV. Ad esempio, questo studio dimostra che l'iniezione lenta di RP di entrambi i vettori CsCl e CU AAV-KP3 provoca una robusta trasduzione dei tubuli prossimali nel rene di topo senza danni tissutali apparenti, a differenza degli approcci idrodinamici precedentemente riportati che portano inevitabilmente a danni tissutali. Pertanto, questo studio evidenzia che l'iniezione lenta di RP retrograda di vettori selezionati derivati dal capside AAV è un metodo efficace e sicuro per la consegna genica al rene. Questo metodo sarà applicabile a un ampio spettro di ricerche sui reni, compresi gli studi di terapia genica. L'uso di miniprep vettoriali CU AAV aumenterà significativamente la produttività e migliorerà l'efficienza in termini di tempo e costi necessari per generare dati preliminari e ottenere informazioni cruciali.
Metodi efficaci e sicuri per la consegna di geni al rene in piccoli e grandi animali da esperimento offrono opportunità cruciali per far progredire la ricerca renale di base ed esplorare approcci terapeutici innovativi. L'istituzione di tali metodi è particolarmente rilevante per la terapia genica per varie malattie renali. I recenti progressi nei test genetici clinici hanno rivelato una prevalenza di malattie renali monogeniche più elevata di quanto stimato in precedenza, che colpisce circa il 30% dei pazienti con malattie renali croniche (CKD)1. La CKD è caratterizzata da un danno renale progressivo, che port....
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Tutti gli esperimenti sugli animali qui descritti sono stati approvati dall'Institutional Animal Care and Use Committee dell'Oregon Health & Science University (OHSU) e sono stati eseguiti in conformità con le linee guida per la cura degli animali dell'OHSU. In questo studio sono stati utilizzati topi maschi C57BL/6J di otto settimane. I reagenti e le attrezzature utilizzate in questo studio sono elencati nella Tabella dei materiali.
1. Produzione di vettori AAV mediante trasfezione plasmidica priva di adenovirus
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Uno studio recente ha identificato un piccolo sottogruppo di capsidi AAV che mostra un notevole aumento della trasduzione renale rispetto ad AAV9 dopo l'iniezione di RP38. Il sottogruppo identificato include AAV-KP3, un capside chimerico di AAV generato dal rimescolamento del DNA41. Pertanto, AAV-KP3 è stato scelto per l'iniezione di RP in questo studio, insieme ad AAV9 come punto di riferimento. Il vettore AAV9-CAG-tdTomato (AAV9) e il vet.......
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Questo rapporto ha dettagliato l'iniezione lenta di RP retrograda di vettori AAV come metodo di somministrazione locale per la consegna genica al rene di topo. Un passaggio fondamentale per eseguire in sicurezza l'iniezione di RP è la regolazione della velocità di iniezione dei vettori AAV per evitare danni parenchimali ai reni iniettati. In un precedente rapporto sull'iniezione idrodinamica della pelvi renale, 100 μL di soluzione di DNA plasmidico sono stati iniettati nel rene di topo i.......
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H.N. riceve una royalty sulle tecnologie relative all'AAV concesse in licenza da Takara Bio Inc. e Capsigen Inc., funge da consulente per aziende biotecnologiche, è co-fondatore di Capsigen Inc. e detiene azioni di Capsigen Inc. e Sphere Gene Therapeutics.
Ringraziamo Guangping Gao e James M. Wilson per averci fornito il plasmide helper di AAV9 e Katja Pekrun e Mark A. Kay per il plasmide helper di AAV-KP3.
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| Nome | Azienda | Numero di catalogo | Commenti |
|---|---|---|---|
| 0,45 μm PVDF syringe filter | MilliporeSigma | SLHVR33RS | |
| 1,5 mL microcentrifuge tube | Fisher Scientific | 05-408-129 | |
| 15 mL polypropylene tube | Corning | 352097 | |
| 16% paraformaldeide (PFA) | Electron Microscopy Sciences | 15710 | |
| 250 mL centrifuge bottle | Fisher Scientific | 055641S24 | |
| 2F Silicone tubing | Sai Infusion Technologies | SIL-2-50 | |
| 25G butterfly needle | Medex Supply | 26708 | |
| 2-metilbutane | MilliporeSigma | MX0760 | |
| 2x qPCR reaction buffer | Fisher Scientific | 43-676-59 | Power SYBR Green PCR Master Mix |
| 30G needle | Becton-Dickinson & Co | 305106 | |
| 50 mL polypropylene tube | Corning | 430291 | |
| 5-0 monofilament suture | Ethicon | Y463G | |
| 5 M NaCl | Lonza | 51202 | |
| 6-0 absorbable suture | Ethicon | J489G | |
| 7,5% Mini-PROTEAN TGX Precast Protein Gels, 10-well, 30 μL | Bio-Rad | 4561023 | |
| Amersham ImageQuant 800 Western Blot Imaging System (Cytiva) | Cytiva | 29459405 | |
| Amicon 100 kDa MWCO, 15 mL tube | Millipore Sigma | UFC910024 | |
| Anti-aquaporin 2 (AQP2) antibody | Abcam | ab199975 | A marker for collecting duct cells |
| Anti-Na-K-2Cl cotransporter 2 (NKCC2) antibody | StressMarq Biosciences | SPC-401 | A marker for thick ascending limb cells |
| Anti-rabbit IgG Alexa Fluor 647 antibody | Jackson ImmunoResearch | 111-605-144 | |
| Anti-Wilms Tumor 1 (WT1) antibody | Abcam | ab89901 | A marker for podocytes |
| Beckman Coulter OptiSeal Tube, Polypropylene, 29,9 mL | Fisher Scientific | NC9691210 | |
| Beckman Coulter OPTISEAL TUBES | Fisher Scientific | NC9611575 | |
| Benzonase | Sigma-Aldrich | 1016970001 | |
| Bovine serum albumin (BSA) | Sigma-Aldrich | 5470 | |
| Centrifugal ultrafiltration tube | MilliporeSigma | UFC9100 | Amicon 100 kDa MWCO, 15 mL |
| Ceramic bead tube | Fisher Scientific | 15-340-154 | |
| Cesium chloride | Sigma-Aldrich | C3032-1KG | |
| Clamp applying forceps | Fine Science Tools | 00071-14 | |
| Closed-loop heat pad | Stryker Medical | 8002-062-012 | |
| Cotton-tipped applicator | Puritan | 806-WC | |
| Cover glass | Fisher Scientific | 12-541B | |
| Cryostat microtome | Tanner Scientific | TN50 | |
| Curved forceps | Fine Science Tools | 11052-10 | |
| Curved-type micro vessel clip | Kleinert-Kutz | 65145 | Clamp for the renal artery and renal vein |
| Dialysis cassette | Fisher Scientific | PIA52976 | |
| DNA extraction kit | Qiagen | 57704 | QIAamp MinElute Virus Spin Kit |
| D-Sorbitol | Sigma-Aldrich | S6021-1KG | |
| Dulbecco's Modified Eagle Medium- high glucose | Corning | 15-013-CV | DMEM-high glucose (4,5 g/L) |
| EDTA | Fisher Scientific | 15-575-020 | |
| Ethanol | Decon Laboratories | 2716GEA | |
| Fetal bovine serum (FBS) | VWR | 89510-186 | |
| Gas-tight glass syringe | Hamilton | 1710 TLL | |
| Glutaraldehyde solution | Sigma-Aldrich | G6257 | |
| Heat therapy pump | Kent Scientific | HTP-1500 | |
| HEPES | Sigma Aldrich | H4034-100G | |
| Hoechst 33342 | Invitrogen | H3570 | |
| Homogenizer | Fisher Scientific | 15-340-163 | |
| Human embryonic kidney (HEK) 293 cells | Agilent | 240073 | |
| Ice bucket | Fisher Scientific | 07-210-104 | |
| Infusion syringe pump | Harvard Apparatus | 70-4507 | |
| Isoflurane | Piramal Critical Care | NDC 66794-017-10 | |
| L-glutamine | Fisher Scientific | 25030-081 | |
| Liquid blocker pen | Ted Pella | 22309 | |
| Lotus tetragonolobus lectin (LTL)- Fluorescein | Vector Laboratories | FL-1321-2 | A marker for proximal tubules |
| Magnesium chloride (MgCl2) | MilliporeSigma | M1028 | |
| Meloxicam | VetOne | NDC 86136-012-10 | Analgesic |
| Microscope glass slide | Fisher Scientific | 12-550-15 | |
| Mounting medium | SouthernBiotech | 0100-01 | |
| Needle holder | Fine Science Tools | 12501-13 | |
| OCT compound | Sakura Finetek | 4583 | |
| Ophthalmic ointment | Bausch & Lomb | NDC 24208-313-34 | |
| PE-10 polyethylene tube | BD | 427401 | Inner diameter: 0,28 mm |
| Penicillin & Streptomycin Mix | Fisher Scientific | 15140-122 | |
| Phosphate-buffered saline (PBS) | Fisher Scientific | 10010-049 | |
| Plastic cryomold | Sakura Finetek | 4566 | |
| Poloxamer 188 Non-ionic Surfactant (10%) | Fisher Scientific | 24-040-032 | |
| Polyethylene Glycol 8000 | Fisher Scientific | BP233-1 | |
| Polyethylenimine (PEI) | Polysciences | 23966 | |
| Povidone iodine | Ricca |
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