Articolo metodologico

Preparazione del tessuto intatto per l'analisi microscopica dello strato cellulare dell'endosperma nei semi di Arabidopsis in via di sviluppo e maturi

DOI:

10.3791/68217

⸱

16 maggio 2025

 ,  , 
1Department of Life Sciences, School of Agriculture, Meiji University, 2Organization for the Strategic Coordination of Research and Intellectual Properties, Meiji University, 3Plant Functional Biotechnology, Agro-Biotechnology Research Center, Graduate School of Agricultural and Life Sciences, The University of Tokyo

In questo articolo

Sommario

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Questo protocollo descrive la preparazione di campioni intatti dello strato cellulare dell'endosperma nei semi di Arabidopsis thaliana . Il metodo richiede solo le comuni attrezzature di laboratorio, come un ago per iniezione e una pinza di precisione, e consente l'imaging fluorescente ad alta risoluzione delle cellule dell'endosperma sia nei semi in via di sviluppo che in quelli maturi.

Abstract

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Nei semi di Arabidopsis , l'endosperma, un singolo strato di cellule viventi situato tra l'embrione e la testa, svolge un ruolo fondamentale nella regolazione della maturazione, della dormienza e della germinazione dei semi. L'analisi microscopica delle cellule dell'endosperma intatte è essenziale per comprendere le funzioni fisiologiche dell'endosperma a livello cellulare e molecolare. Tuttavia, la preparazione del campione è stata difficile a causa delle piccole dimensioni dei semi di Arabidopsis e della posizione dello strato cellulare dell'endosperma sotto la testa. Questo articolo descrive in dettaglio la preparazione di campioni di strato di cellule dell'endosperma intatto adatti per l'osservazione e l'analisi microscopica sia in semi in via di sviluppo che maturi. Questo metodo consente l'osservazione di ampie aree e di numerose cellule endospermatiche intatte senza richiedere fissazione o sezionamento. Inoltre, il protocollo utilizza solo apparecchiature di laboratorio standard, come aghi per iniezione, pinze di precisione e stereomicroscopi. Questo approccio consente con successo l'imaging di cellule vive ad alta risoluzione di segnali fluorescenti, come la proteina fluorescente verde (GFP), in cellule endospermatiche intatte. Questo metodo consente l'osservazione della localizzazione intracellulare e del movimento di varie proteine, nonché della morfologia degli organelli, nelle cellule endospermatiche di diversi mutanti di Arabidopsis . Questo protocollo contribuisce a chiarire le nuove funzioni dell'endosperma e amplia il potenziale per gli studi cellulari e molecolari di questo tessuto essenziale.

Introduzione

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Poiché le piante sono organismi sessili, la germinazione dei semi è un evento cruciale che determina il loro destino. La decisione di germinare è strettamente regolata da fattori interni e ambientali, come i livelli di dormienza del seme primario, la temperatura, l'intensità e la lunghezza d'onda della luce e la concentrazione di azoto 1,2,3,4,5,6. I semi hanno strutture complesse costituite da più tipi di tessuto7. Nei semi secchi di Arabidopsis, l'embrione, che si sviluppa in una piantina, è circondato da un singolo strato di endosperma e dagli strati più esterni, la testa. La testa è composta da più strati di cellule morte, mentre l'embrione e l'endosperma rimangono in vita anche nei semi secchi. L'endosperma è comunemente considerato come un tessuto di riserva che fornisce nutrienti per la crescita dell'embrione e, insieme alla testa, conferisce resistenza meccanica alla protrusione della radichetta 8,9,10,11,12,13.

Diversi studi recenti hanno dimostrato che l'endosperma svolge un ruolo essenziale nella regolazione della germinazione ottimale dei semi 14,15,16,17. Ad esempio, il fotorecettore fitocromo B (PHYB) nelle cellule dell'endosperma rileva la luce rossa (R) o la luce rossa lontana (FR), regolando le risposte di germinazione15. L'endosperma funziona anche come tessuto sensibile alla temperatura, sopprimendo le risposte di germinazione ad alte temperature16. Il controllo di qualità dell'endosperma è fondamentale per una germinazione ottimale dei semi, in particolare nei semi conservati a lungo termine17.

L'imaging di cellule vive è ora necessario per chiarire ulteriormente le funzioni fisiologiche dell'endosperma. L'analisi microscopica di cellule endosperme intatte che esprimono proteine marcate con fluorescenza consente lo studio dei meccanismi molecolari con cui l'endosperma regola la germinazione dei semi. Tuttavia, la preparazione di cellule endospermatiche intatte per l'osservazione microscopica è impegnativa, in particolare nei semi di Arabidopsis . I semi hanno un diametro di circa 0,4 mm e l'endosperma è uno strato unicellulare situato tra l'embrione e la testa, il che rende difficile una manipolazione precisa. Di conseguenza, nonostante i suoi importanti ruoli fisiologici, l'endosperma è stato raramente osservato utilizzando l'imaging di cellule vive.

Questo articolo presenta un protocollo per la preparazione rapida di campioni di strato di cellule endospermatiche intatte adatto per l'imaging di cellule vive sia in semi in via di sviluppo che maturi.

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Protocollo

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In questo studio, sono state stabilite due diverse procedure per la preparazione di campioni di strato di cellule di endosperma viventi: una per lo sviluppo dei semi e una per i semi maturi. Sono necessari approcci leggermente diversi a seconda della solidità della testa. I dettagli dei reagenti e delle attrezzature utilizzate sono elencati nella Tabella dei Materiali.

1. Preparazione di campioni di endosperma intatti da semi in via di sviluppo

  1. Collezione di silique
    1. Coltiva le piante di Arabidopsis sul terreno o sulla lana di roccia fino alla fioritura.
    2. Segna i fiori completamente aperti con fili colorati (0 giorni dopo la fioritura, 0 DAF).
      NOTA: Evita di usare fili verdi, gialli o marroni per contrassegnare i fiori, poiché questi colori sono difficili da distinguere dalle piante in crescita o mature e dalle silique.
    3. Tagliare le silique marcate in via di sviluppo sul pedicello (indicato nella Figura 1(1)) e raccoglierle in provette da 1,5 mL.
      NOTA: Le silique in via di sviluppo da 12-16 DAF sono adatte per la preparazione utilizzando questo protocollo.
  2. Dissezione dei semi in via di sviluppo
    NOTA: I seguenti passaggi devono essere eseguiti su carta da filtro bagnata per proteggere i campioni dall'essiccazione. Le manipolazioni devono essere eseguite sotto uno stereomicroscopio.
    1. Separare una valvola (indicata nella figura 1.2)) dal replum (indicato nella figura 1.1)) utilizzando due pinze: una con punte spesse per la tenuta e l'altra con punte affilate per lo strappo).
    2. Raccogliere delicatamente i semi in via di sviluppo dalle silique usando una pinza con le punte chiuse per evitare di danneggiare i semi (Figura 1(2)).
    3. Tenendo il seme con una pinza senza schiacciare il seme, praticare una cicatrice di circa 0,2 mm sulla testa e sull'endosperma che circonda l'embrione utilizzando un ago per iniezione (27 G, 0,40 mm × 19 mm) (Figura 1(3)).
      NOTA: La posizione ottimale per realizzare la cicatrice è all'incrocio tra i cotiledoni e la radichetta.
    4. Spingere fuori l'embrione pizzicando il seme con una pinza (Figura 1(4)). Non schiacciare l'involucro del seme vuoto, che consiste nella testa e nell'endosperma, e cerca di mantenere la sua forma rotonda.
    5. Inserire l'ago per iniezione nell'involucro vuoto del seme in corrispondenza della cicatrice, perforandola dall'interno verso l'esterno (Figura 1(5)).
    6. Tenere l'ago in posizione, grattare la superficie della testa con una pinza con le punte chiuse e tagliare un lato dell'involucro del seme vuoto per consentirne l'apertura (Figura 1(6)).
    7. Aprire la busta vuota del seme in un foglio utilizzando una pinza con punte affilate (Figura 1(7)). Il campione dovrebbe ora essere isolato come un foglio a doppio strato costituito dagli strati dell'endosperma e della testa (Figura 1(8)).
      NOTA: Se il campione tende ad arricciarsi quando si utilizza l'acqua come mezzo di montaggio al punto 3 di seguito, dividere il campione in due pezzi. Anche i semi raccolti dalle silique a circa 18 DAF (in questa fase, la testa è marrone ma non ancora completamente secca) possono essere lavorati utilizzando questo protocollo, anche se i semi devono essere assorbiti per diversi minuti prima della preparazione.

2. Preparazione di campioni di endosperma intatti da semi maturi

  1. Iniezione di semi maturi
    1. Aggiungere 1 ml di acqua distillata doppia in una provetta da 1,5 ml contenente semi secchi di Arabidopsis .
    2. Conservare i semi imbevuti per almeno 40 minuti a temperatura ambiente (Figura 2(1)).
      NOTA: I semi secchi e i semi entro 40 minuti dall'imbibizione sono difficili da cicatrizzare sulla testa e sull'endosperma e rimuovere l'embrione dall'interno del seme senza danneggiare l'involucro vuoto del seme nei passaggi 2.2.1 e 2.2.2, mentre un tempo di imbibizione più lungo facilita la manipolazione.
    3. Utilizzare una micropipetta da 1000 μl per trasferire i semi imbevuti su carta da filtro bagnata.
  2. Dissezione di semi maturi
    NOTA: I seguenti passaggi devono essere eseguiti su carta da filtro bagnata per proteggere i campioni dall'essiccazione. Le manipolazioni devono essere condotte sotto uno stereomicroscopio.
    1. Tenendo il seme con una pinza senza schiacciare il seme, fare una cicatrice di circa 0,2 mm sulla testa e sull'endosperma che circonda l'embrione usando un ago per iniezione (Figura 2(2)).
    2. Spingere fuori l'embrione pizzicando il seme con una pinza (Figura 2(3)). Non schiacciare l'involucro vuoto del seme, che include la testa e l'endosperma. Cerca di mantenere la sua forma rotonda.
    3. Tagliare i lati superiore e inferiore dell'involucro di semi vuoto con un ago per iniezione per modellarlo in un cilindro (Figura 2(4)).
    4. Tagliare l'involucro di semi vuoti di forma cilindrica lungo il suo asse centrale per separarlo in due pezzi (Figura 2(5)). I campioni devono essere isolati come fogli a doppio strato costituiti dallo strato dell'endosperma e dallo strato della testa (Figura 2(6)).

3. Osservazione microscopica

  1. Posizionare i campioni di endosperma in forma di foglio su un vetrino e montarli in acqua o perfluorodecalina (PFD).
    NOTA: Se rimangono bolle d'aria tra il campione e il vetrino coprioggetti, la perfluorodecalina (PFD), che è stata segnalata come particolarmente utile per l'imaging di campioni contenenti sacche d'aria, come le foglie18,19, sarebbe utile. Il PFD è noto per avere la tensione superficiale più bassa, che gli consente di riempire facilmente gli spazi d'aria sulla superficie del campione. Per l'imaging time-lapse, tuttavia, si raccomanda l'uso di acqua come mezzo di montaggio, poiché il contenuto di acqua nei semi maturi dovrebbe essere abbondante per mantenere la liquidità cellulare.
  2. Posizionare delicatamente un vetrino coprioggetti sul campione. Assicurarsi che lo strato di endosperma sia rivolto verso il vetrino coprioggetti.
    NOTA: È possibile utilizzare smalto per unghie o grasso per sigillare i bordi del vetrino coprioggetti per evitare l'essiccazione del campione e del mezzo di montaggio.

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Risultati

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Utilizzando il protocollo mostrato nella Figura 1, sono stati preparati campioni di endosperma da semi in via di sviluppo raccolti da silique a 14 DAF (in questa fase, la testa è ancora verde). Sono state osservate numerose cellule endospermatiche in un'ampia area e le loro strutture intracellulari (Figura 3A). In questo esperimento, sono stati utilizzati semi che esprimono PHYB fusi con GFP al C-terminale (PHYB-GFP). È noto che il PHYB trasloca nel nucleo dopo ...

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Discussione

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I ruoli dell'endosperma nella germinazione dei semi sono stati rivelati attraverso analisi genetiche e biochimiche utilizzando tessuti separati del seme, come l'analisi dell'espressione genica e la quantificazione di lipidi e fitormoni 9,14,25,26,27. Un saggio in vitro sulla lettiera del rivestimento del seme, combina...

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Dichiarazioni

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Gli autori dichiarano di non avere interessi finanziari concorrenti.

Ringraziamenti

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Ringraziamo i dottori Matsushita e Oka dell'Università di Kyoto per aver fornito il mutante phyB che esprime PHYB-GFP guidato dal promotore 35S. Questo studio è stato in parte sostenuto da una sovvenzione per la ricerca scientifica su aree innovative, ricerca in un'area di ricerca proposta (19H05713 a K.Y.).

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Provette per microcentrifuga da 1,5 mLWatoson Bio Lab131-815C
Vetrino coprioggetti (18 x 18 mm)Matsunami Glass Ind.,Ltd.
DDWAcqua per il montaggio
Carta da filtro n. 526 (400 x 400 mm)ADVANTEC VIETNAM CO., LTD.02453400 
Genki-kun Seru Senyo yodo kopu N-150 (55 L)Katakura & Co-op Agri CorporationSuoli per la crescita delle piante Scivolo
in vetro (26 mm x 76 mm)Matsunami Glass Ind., Ltd.S1215
Grodan AO 36 x 36 x 40 mm CubiGrodanRockwools per la crescita delle piante
Iris  ForbiciPremium Plus  Fornitore verificato - Giappone, Ltd.FC-0212
Pinze per gioiellieri, Dumont n. 5 (4 1/4 pollici)Pinza DumontF6521per la suite
di applicazioni Leica a strappo X (LAS X) Leicaper Sterallis 8
Leica Microsystems  Olio da immersione per microscopiOlio da immersione in autofluorescenza molto bassaTHMOIL-10LF
LIOR pinza di precisione 110 mm  SL-14KENIS Ltd.KN33450438pinze per la tenuta 
NAIL HOLICKOSESmalto per unghie
Needls 27G 3/4 (19 mm) RB Fornitore verificato - Misawa Medical Industry Co., Ltd.Un ago di iniezione per il taglio
Nichipet Air 1000 uLNichiryo00-NAR-1000A 1000 µ L Micropipetta
PerfluorodecalinaAPOLLO SCIENTIFICPC5960Reagenti per il montaggio
del pannello LED a luce rossa/luce rossa lontanaTOKYO RIKAKIKAI CO., LTD.
Schappe filato #60Fujix Co., Ltd.Filettatura
SPINKOTE Lubrificante 2 ozBECKMAN COULTER306812Grasso
Sterallis 8LeicaConfocale Laser Scansione Microscopia
Stereomicroscopio Stemi 305 cam WCarl Zeiss NTS Ltd.491903-0017-000
LED a luce biancaPANASONICFL40SSW/37
C218181Software di 10147599

Riferimenti

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