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Questa ricerca sperimentale è stata condotta con l'approvazione del Comitato Istituzionale per la Cura e l'Uso degli Animali (Numero di approvazione: LL-240077).
Coltura cellulare e intervento farmacologico
Le cellule di Schwann di ratto (SC) sono state coltivate nel terreno cellulare di Schwann, costituito da terreno basale, 5% siero bovino fetale, 1% integratore per la crescita delle cellule di Schwann, 1% penicillina e 1% streptomicina. Tutte le celle sono state mantenute in un'atmosfera di CO2 al 5% a 37 °C. Quando è stato lasciato crescere fino a una densità del 70-80%, gli SC sono stati divisi in quattro gruppi (n = 5 per gruppo): (1) gruppo NC; (2) gruppo NC+CoCl2 ; (3) Gruppo NC+CoCl2+Mus; (4) Gruppo NC+CoCl2+siIL-1R1+Mus.
Il cloruro di cobalto (CoCl2), un agente frequentemente impiegato per imitare l'ipossia, è noto per innescare risposte simili a quelle dell'ipossia, come l'impedimento della degradazione e della stabilizzazione dei fattori inducibili dall'ipossia e l'accumulo della proteina HIF-1α15. Secondo il metodo modificato basato su Osuru et al.17, nel gruppo NC+CoCl2 e nel gruppo NC+CoCl2+Mus, le SC sono state coltivate in terreno cellulare di Schwann integrato con 240 μM di CoCl2 per 8 ore, in condizioni atmosferiche del 95% di aria e del 5% di CO2 a 37 °C in un incubatore umidificato (21% O2). Quindi, nei gruppi Mus, è stato applicato l'intervento di 1,25 μg/mL Mus per ulteriori 24 ore. Nel frattempo, nel gruppo NC+CoCl2+siIL-1R1+Mus, le SC sono state prima trattate con 24 ore di infezione da siRNA, quindi coltivate continuamente con 240 μM di CoCl2 per 8 ore, seguite dall'intervento di 1,25 μg/mL Mus per ulteriori 24 ore, come nei primi gruppi. Il diagramma di flusso del processo sperimentale è mostrato in Figura 1.
Saggio di vitalità cellulare
La vitalità delle SC è stata determinata utilizzando il reagente per il test di conteggio delle cellule (CCK-8) secondo le istruzioni del produttore. Le SC coltivate a una densità di 5 × 105 cellule/pozzetto sono state seminate in una piastra di coltura cellulare a 96 pozzetti con 100 μL di terreno di crescita completo a 37 °C in un'atmosfera umidificata al 5% di CO2 . Quando la confluenza ha raggiunto il 70-80%, sono stati aggiunti 10 μL di soluzione CCK-8 a ciascun pozzetto e le piastre sono state incubate per 1 ora a 37 °C. La densità ottica (OD) delle piastre a 96 pozzetti è stata misurata a 450 nm utilizzando un lettore di micropiastre ed è stata calcolata la vitalità cellulare. Le cellule sono state divise in quattro gruppi: gruppo NC, gruppo NC+CoCl2 , gruppo NC+CoCl2+Mus e gruppo NC+CoCl2+siIL-1R1+Mus. I risultati sperimentali sono stati corretti utilizzando un pozzetto in bianco (soluzione medium+CCK8). Tasso di sopravvivenza cellulare = [(gruppo sperimentale - pozzetto bianco)/(gruppo NC - pozzetto bianco)] × 100%.
Trasfezione di siRNA
La trasfezione è stata condotta secondo le istruzioni del produttore di un reagente di trasfezione commerciale in vitro siRNA/miRNA utilizzando duplex sintetici di siRNA di siIL-1R1 (AUAGUCUUGGAUUUUCUCCAA, GGAGAAAAUCCAAGACUAUGA) con una concentrazione di 100 ng/μL per 24 ore. Dopo la trasfezione di siIL-1R1, le espressioni di siIL-1R1 sono state valutate eseguendo l'analisi RT-qPCR dopo 24 ore di trasfezione18 e l'efficienza deve essere garantita per essere superiore all'80%
Saggio di immunoassorbimento enzimatico (ELISA)
I surnatanti post-coltura sono stati raccolti e centrifugati in condizioni specifiche del gruppo (2950 g, 20 min, 25 °C). I livelli extracellulari di IL-1β, TNF-α, ROS e SOD sono stati dosati tramite ELISA seguendo le istruzioni del kit. Le letture finali dell'assorbanza a 450 nm sono state ottenute utilizzando un lettore di micropiastre.
Isolamento dell'RNA e PCR quantitativa in tempo reale (RT-qPCR)
Seguendo le istruzioni del produttore, l'RNA totale è stato estratto dalle cellule in coltura utilizzando il reagente TRizol. I geni bersaglio (IL-1β, TNF-α, S-100b, IL-1R1) sono stati amplificati in 20 μL di reazioni di miscelazione SYBR qPCR per 40 cicli su uno strumento PCR. Normalizzazione dei dati utilizzata β-actina, con specificità PCR verificata mediante analisi della curva di fusione. Il metodo 2−ΔΔCt ha quantificato l'espressione relativa da cinque campioni indipendenti analizzati in triplicato. I primer sono elencati nella Tabella 1.
Western blot
Dopo il trattamento, le SC di tutti i gruppi sperimentali sono state incubate per 24 ore e raccolte. Le proteine totali sono state estratte utilizzando un kit di estrazione delle proteine totali. I lisati proteici sono stati combinati con un tampone di caricamento per elettroforesi su gel di poliacrilammide dodecil-solfato di sodio (SDS-PAGE) denaturato a 98 °C per 5 minuti e separato (20 μg per corsia) su gel di poliacrilammide SDS al 10-12%. Le proteine risolte sono state trasferite elettroforeticamente alle membrane del fluoruro di polivinilidene (PVDF). Le membrane sono state bloccate con latte in polvere scremato al 5% per 60 minuti a temperatura ambiente, quindi incubate per una notte a 4 °C in un volume di 6 mL con i seguenti anticorpi primari: anticorpo anti-HIF-1α (1:1000), anticorpo anti-GAPDH (1:1000), anticorpo anti-IL-1R1 (1:1000), anticorpo anti-C-JUN (1:1000), anticorpo anti-GDNF (1:1000), anticorpo anti-IRAK1 (1:1000), anticorpo anti-IKK (1:1000), anticorpo anti-p65 (1:800), anticorpo anti-p50 (1:900), anticorpo anti-IκB-α (1:900) e anticorpo anti-β-actina (1:1000). Dopo il lavaggio, le membrane sono state sondate con anticorpi secondari coniugati con perossidasi di rafano (HRP) per 60 minuti a 25 °C. I segnali proteici sono stati rilevati utilizzando Image Studio Digits Ver 4.0. Le intensità di banda sono state quantificate con il software ImageJ e normalizzate all'espressione di β-actina e GAPDH. Sono stati eseguiti tre esperimenti indipendenti.
Immunofluorescenza
La localizzazione di IL-1R1 nelle SC è stata valutata seguendo Zhao et al.19. Raccogliere le cellule durante la fase di crescita logaritmica mediante tripsinizzazione, risospenderle in un terreno completo fresco e triturare accuratamente per ottenere una sospensione uniforme di una singola cellula. Seminare le cellule su piastre di coltura contenenti vetrini di copertura sterili. Una volta che le cellule hanno raggiunto la completa confluenza, sciacquarle 1-2 volte con soluzione salina tamponata con fosfato (PBS), rimuovere con cura i vetrini coprienti e fissare le cellule aderenti con paraformaldeide al 4% in PBS per 10 minuti, permeabilizzare con Triton X-100 allo 0,05% (10 minuti) e bloccare con siero di capra al 5% (1 ora). L'incubazione primaria ha utilizzato un mAb di coniglio anti-ratto IL-1R1. Dopo i lavaggi PBS, i campioni sono stati incubati con IgG di capra anti-coniglio coniugata con FITC per 2 ore a temperatura ambiente. Aggiungere agenti di montaggio idrosolubili al vetrino coprioggetti per il montaggio. Le cellule immunomarcate sono state visualizzate e quantificate utilizzando un microscopio a fluorescenza con lunghezza d'onda di eccitazione 492 nm e lunghezza d'onda di emissione 520 nm.
Analisi delle ultrastrutture
Seguendo il protocollo19 di Zhao et al., le SC sono state fissate in glutaraldeide al 2,5% e post-fissate per una notte a 4°C in tetrossido di osmio all'1%. I campioni sono stati sottoposti a una serie di disidratazione con etanolo/acetone. Le sezioni ultrasottili (80 nm) sono state colorate con acetato di uranile e citrato di piombo prima dell'esame ultrastrutturale utilizzando un microscopio elettronico a trasmissione.
Smaltimento di reagenti chimici pericolosi
Il terreno e le soluzioni contenenti CoCl2 vengono raccolti in un apposito contenitore per rifiuti di metalli pesanti. Tutti i materiali monouso che sono entrati in contatto con i suddetti liquidi, inclusi puntali per pipette, provette da centrifuga e guanti, sono classificati come rifiuti pericolosi di metalli pesanti e vengono trasferiti a una società di gestione dei rifiuti pericolosi autorizzata e approvata dalle autorità competenti per il corretto smaltimento. Gettare la soluzione di paraformaldeide di scarto in un contenitore di scarto di aldeidi dedicato. I materiali di consumo usati devono essere raccolti come rifiuti aldeidici e trattati dalla stessa società di gestione dei rifiuti pericolosi autorizzata.
Analisi statistica
I confronti multi-gruppo sono stati analizzati mediante ANOVA unidirezionale con il test post-hoc di Tukey in GraphPad Prism 8.0. La significatività statistica è stata definita come P < 0,05. I dati sono presentati come media ±± deviazione standard (SD).