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Lo studio è stato condotto in conformità con la Dichiarazione di Helsinki ed è stato approvato dal Comitato Etico Istituzionale dell'Ospedale Popolare Centrale di Huizhou (Approvazione n. 2022-015). Questo studio non è stato registrato come studio clinico a causa del suo disegno retrospettivo. Il consenso informato è stato rinunciato a causa della natura retrospettiva dell'analisi e tutti i dati dei pazienti sono stati deidentificati. I regenti e le attrezzature utilizzate sono elencati nella Tabella dei Materiali.
1. Disegno dello studio e selezione dei pazienti
Come studio retrospettivo multicentrico, riconosciamo il potenziale bias di selezione. Per mitigare ciò, l'identificazione dei pazienti ha seguito un protocollo di iscrizione consecutiva dai registri prospettici di ictus di ciascun centro partecipante. Tutti i pazienti che si sono presentati con infarto cerebrale acuto durante il periodo dello studio (gennaio 2022-gennaio 2025) sono stati selezionati per l'idoneità, e coloro che soddisfacevano i criteri di inclusione sono stati arruolati in sequenza. I dati sono stati raccolti da tre istituzioni: Shaoxin Shangyu People's Hospital, Run Run Shaw Hospital e Huizhou Central People's Hospital. Sono stati stipulati accordi di condivisione dei dati tra tutti i centri partecipanti per garantire una corretta supervisione e accesso ai dati.
Per gestire i dati mancanti, è stato implementato un approccio di imputazione multipla utilizzando equazioni concatenate per variabili con <5% di mancanza di dati. Per le variabili con >5% di dati mancanti, è stata utilizzata un'analisi completa del caso, con una segnalazione trasparente dei modelli di mancanza. Variabili critiche, tra cui CYP2C19 genotipo, NIHSS di base e mRS a 3 mesi, hanno fornito dati completi per tutti i partecipanti. I potenziali elementi di confusione sono stati affrontati tramite aggiustamenti multivariati nei nostri modelli statistici, inclusi fattori prognostici noti come età, gravità basale dell'ictus, fattori di rischio vascolari e farmaci concomitanti. In particolare, sono stati raccolti e aggiustati dati sui farmaci concomitanti (antipiastrine, statine, antiipertensivi) nelle analisi.
- Criteri di inclusione
I criteri di inclusione erano i seguenti: (1) Diagnosi di infarto cerebrale acuto confermata da criteri di imaging e clinici secondo le Linee guida cinesi per la diagnosi e il trattamento dell'ictus ischemico acuto; (2) Primo ictus di sempre con tempo da inizio a ammissione <72 h; (3) Trattamento con butilftalide (0,1 g per capsula) a una dose di 0,2 g tre volte al giorno a stomaco vuoto, iniziato entro 24 ore dall'ammissione; (4) Nessuna terapia trombolitica o anticoagulante precedente.
- Criteri di esclusione
I criteri di esclusione erano i seguenti: (1) disturbi psichiatrici comorbidi o deficit cognitivo; (2) Grave disfunzione epatica, renale o cardiaca; (3) Ipersensibilità al farmaco di studio; (4) Malattie infiammatorie o autoimmuni sistemiche. I pazienti sono stati stratificati in gruppi a buona prognosi (mRS ≤2) e a prognosi sfavorevole (mRS ≥3) basati su punteggi modificati della Scala diRankin a 3 mesi 7. Il processo di inclusione del paziente è mostrato nella Figura 1.
L'aderenza del paziente alla terapia con butiltalide è stata monitorata attraverso l'osservazione diretta della somministrazione dei farmaci durante il ricovero, la contabilità delle pillole e la revisione del diario dei farmaci durante le visite di follow-up, interviste telefoniche strutturate a intervalli di 2 settimane per valutare l'adevolenza e gli effetti avversi, e la revisione dei registri di rinnovo della farmacia per i pazienti ambulatoriali. I pazienti con <80% di aderenza sono stati esclusi dall'analisi (n=7). L'endpoint di follow-up a 3 mesi è stato selezionato sulla base degli standard consolidati sulla ricerca sugli esiti dell'ictus, poiché la mRS a 90 giorni dall'ictus è ampiamente accettata come endpoint primario che racchiude il periodo critico di recupero.
2. Raccolta dei dati clinici
I dati sono stati raccolti sistematicamente utilizzando moduli elettronici di report di caso che coprono cinque ambiti: caratteristiche demografiche (età, genere, indice di massa corporea, Tabella 1), fattori di rischio vascolari (ipertensione, diabete mellito, storia del fumo, storia del bere), presentazione clinica (sito dell'infarcto, punteggio NIHSS di base), parametri di laboratorio e dettagli del trattamento. I biomarcatori ematici sono stati misurati come segue:
- Profilo lipidico (TC, TG, LDL-C, HDL-C)
Analizzato utilizzando un analizzatore biochimico automatizzato, con intervalli di saggio 0–20 mmol/L per TC, 0–10 mmol/L per TG, 0–15 mmol/L per LDL-C e 0,5–2,0 mmol/L per HDL-C.
- Omocisteina sierica (Hcy)
Misurato tramite ELISA (intervallo di rilevamento 5–50 μmol/L, coefficiente di variazione <5%). I campioni sono stati conservati a -80 °C entro 2 ore dalla raccolta per evitare il degrado.
3. CYP2C19 genotipizzazione
- Raccolta di campioni ed estrazione del DNA
Il sangue venoso a digiuno (5 mL) è stato raccolto dalla vena cubitale mediana al mattino. Dopo 30 minuti di coagulazione a temperatura ambiente, i campioni sono stati centrifugati a 1.600 × g per 10 minuti a 4 °C utilizzando una centrifuga ad alta velocità per isolare il siero. Il DNA genomico è stato estratto da 300 μL di siero seguendo il protocollo del produttore. Per un breve periodo, i campioni sono stati incubati con un buffer di lisi da 300 μL a 56 °C per 10 minuti, seguiti dall'aggiunta di etanolo assoluto da 100 μL. La miscela veniva trasferita in colonne di purificazione e centrifugata a 12.000 × g per 1 minuto a temperatura ambiente. Il DNA è stato eluzionato con un tampone di eluzione preriscaldato da 50 μL (70 °C) dopo due passaggi di lavaggio ciascuno con tampone da 500 μL, con centrifugazione a 12.000 × g per 1 minuto dopo ogni lavaggio. La concentrazione finale di DNA veniva regolata a 50–100 ng/μL usando uno spettrofotometro e conservata a -20 °C.
- Genotipizzazione PCR in tempo reale
CYP2C19 genotipizzazione è stata eseguita tramite PCR in tempo reale. La miscela di reazione da 20 μL era composta da 10 μL di 2× TaqMan Master Mix, 1 μL di miscela innesta, 2 μL di DNA e 7 μL di acqua priva di nucleasi. Le condizioni di ciclo termico erano stabilite come segue: denaturazione iniziale a 95 °C per 30 secondi, seguita da 40 cicli di denaturazione a 95 °C per 5 secondi e ricottura/estensione combinata a 60 °C per 34 secondi. I dati di fluorescenza sono stati raccolti durante la fase di ricottezza/estensione.
- Conferma del genotipo e controllo di qualità
Le chiamate di genotipo sono state confermate utilizzando sequenziamento Hi-SNP di seconda generazione con copertura del 100×. Per risultati discordanti (n=3), è stata impiegata come metodo di riserva l'analisi del polimorfismo della lunghezza dei frammenti di restrizione: un prodotto PCR da 20 μL è stato incubato con 1 μL di enzima di restrizione HpyCH4V e 4 μL di corrispondente tampone a 37 °C per 1 ora, seguito da una separazione tramite elettroforesi in gel di agarosio al 2% a 100 V per 45 minuti.
Sono state implementate rigorose misure di controllo qualità. Tutti i campioni sono stati processati in duplicata con test di replicazione cieco; controlli interni (genotipi noti) erano inclusi in ogni esecuzione PCR; la concordanza tra i risultati di PCR in tempo reale e sequenziamento Hi-SNP era del 100%; Campioni selezionati casualmente (10%) sono stati inviati a un laboratorio indipendente per la validazione, raggiungendo una concordanza del 100%; i tassi di chiamata hanno superato il 99,5% con un punteggio minimo di qualità genotipica di Q30.
- Classificazione dei fenotipi metabolici
I fenotipi metabolici sono stati categorizzati in base al genotipo CYP2C19 come segue: metabolizzatori scarsi (*2/*2, *2/*3, *3/3); Metabolizzatori intermedi (*3/*17, *2/*17, *1/*2, *1/*3); Metabolizzatori rapidi (*1/*1). Questo schema di classificazione a tre livelli è stato utilizzato per garantire la coerenza con le pratiche dei laboratori clinici regionali. La frequenza dell'allele *17 e la distribuzione dei genotipi all'interno del gruppo IM sono dettagliate nella sezione Risultati.
4. Analisi statistica
Le analisi statistiche sono state effettuate utilizzando SPSS versione 25.0. I dati categorici sono stati espressi come [n (%)] e confrontati tramite test χ2 (con correzione di Yates per campioni piccoli). Le variabili continue sono state testate per la normalità utilizzando il test di Shapiro-Wilk; I dati normalmente distribuiti sono stati presentati come deviazione media ± standard e analizzati con test t indipendenti, mentre i dati non normali sono stati analizzati con i test Mann-Whitney U.
La multicollinearità è stata valutata utilizzando tolleranza (≥0,1) e fattore di inflazione della varianza (VIF <10). L'analisi di regressione logistica (utilizzando il percorso di menu Analyze → Regression → Binary Logistic in SPSS) è stata utilizzata per identificare fattori prognostici indipendenti, con criteri di ingresso e uscita stabiliti rispettivamente a P <0,05 e P >0,10. Le variabili inserite nel modello includevano i livelli di Hcy (continuo), il punteggio NIHSS di base (continuo), l'ipertensione (categorica) e CYP2C19 fenotipo metabolico (categorico, con il metabolizzatore rapido come riferimento). Il test di bontà di adattamento Hosmer-Lemeshow è stato eseguito per valutare la calibrazione del modello. Un P a due code <0,05 è stato considerato statisticamente significativo.
Le dimensioni degli effetti sono state calcolate come segue: per le variabili continue, la d di Cohen è stata calcolata utilizzando la funzione Analyze < Compare MeansIndependent-Sample-Independent T Test con il calcolo aggiuntivo della dimensione dell'effetto abilitato; per variabili categoriche, il coefficiente phi è stato ottenuto dall'output del test χ2 sotto Analizza Tabelle Incrociate di Statistiche Descrittive con Phi e V di Cramer selezionati nelle opzioni Statistiche.