Tutte le procedure sugli animali sono state condotte secondo le linee guida istituzionali e approvate dal Comitato Etico Animale dell'Università di Medicina Cinese di Nanchino (Approvazione Etica n. 202108A006). Tutti i rifiuti generati durante le procedure di coltura cellulare e colorazione venivano raccolti in contenitori sigillati e sacchetti per i rischi biologici e smaltiti da un servizio autorizzato di gestione dei rifiuti medici.
Modelli animali e interventi terapeutici
Per minimizzare la variazione interindividuale, 40 topi sono stati assegnati casualmente a cinque gruppi (n = 8 per gruppo) e sottoposti ai seguenti interventi: (1) Gruppo di controllo: somministrazione intragastrica di 0,2 mL di soluzione salina per topo; (2) Gruppo modello: Ricevette iniezioni sottocutanee giornaliere di D-galattosio (250 mg/kg), somministrate con 0,2 mL di una soluzione da 25 mg/mL per topo; (3) Gruppo CCP a basso dosaggio: Ricevuto iniezioni di D-galattosio combinate con somministrazione intragastrica di CCP a 50 mg/kg (0,2 mL di una soluzione da 5 mg/mL per topo); (4) Gruppo CCP ad alta dose: Ricevuto iniezioni di D-galattosio combinate con somministrazione intragastrica di CCP a 100 mg/kg (0,2 mL di una soluzione da 10 mg/mL per topo); (5) Gruppo vitamina E: Ricevuto iniezioni di D-galattosio combinate con somministrazione intragastrica di vitamina E a 100 mg/kg (0,2 mL di una soluzione da 10 mg/mL per topo). Dopo 8 settimane di trattamento, i topi sono stati soppressi e sono stati raccolti campioni di siero, urina e tessuto renale per analisi successive.
Analisi della funzione renale
La funzione renale è stata valutata utilizzando kit di test commerciali per misurare creatinina, acido urico e proteine urinarie secondo le istruzioni dei produttori. I valori di assorbanza sono stati misurati a 505 nm per la creatinina, 510 nm per l'acido urico e 585 nm per la proteina urinaria utilizzando un lettore multifunzione di microplacche.
Colorazione a sezioni di tessuto
I tessuti renali immersi in paraffina sono stati sezionati a uno spessore di 4 μm. Le sezioni sono state deparafinizzate, incubate con ematossilina per 5 minuti, risciacquate con acqua corrente, differenziate usando alcol acido all'1% per 5 secondi e poi risciacquate nuovamente. Dopo un lavaggio con soluzione salina tamponata con fosfato (PBS) di 1 minuto, le sezioni sono state controcolorate con eosina per 3 minuti, disidratate e montate. Per la colorazione tricroma di Masson, le sezioni sono state deparafinizzate e colorate con ematossilina come descritto sopra, seguite da Ponceau S per 5 minuti e blu anilina per 5 minuti. Le sezioni venivano poi disidratate e montate.
Saggio di viabilità cellulare
Le cellule HK-2 sono state seminate in piastre a 12 pozzi a 1 × 10⁵ cellule per pozzo. Dopo 24 ore di esposizione a D-galattosio e polisaccaridi di Cordyceps, è stata aggiunta una soluzione del 10% di CCK-8 a ciascunpozzo 14. Dopo l'incubazione a 37 °C per 30 minuti, l'assorbanza è stata registrata a 450 nm utilizzando un lettore di microplacche. La documentazione di controllo qualità per i polisaccaridi di Cordyceps e l'autenticazione STR delle celle HK-2 sono fornite nel File Supplementare 1.
Trascrizione inversa reazione a catena quantitativa della polimerasi
Dopo 24 ore di coltura cellulare, il mezzo di coltura è stato rimosso e l'RNA totale è stato estratto utilizzando il reagente di estrazione. La concentrazione di RNA è stata determinata utilizzando uno spettrofotometro a microplacche, e l'integrità dell'RNA è stata verificata tramite elettroforesi su gel di agarosio al 2%. Il DNA genomico veniva rimosso e il cDNA veniva sintetizzato tramite trascrizione inversa. Le sequenze di primer sono elencate nella Tabella dei Materiali.
Misurazione dei livelli intracellulari di ROS
Le cellule HK-2 sono state seminate in piastre a 12 pozzi a 1 × 10⁵ cellule per pozzo. Al raggiungimento del 60-70% di confluenza, le cellule hanno subito un pretrattamento con D-galattosio per 12 ore. Dopo 24 ore di esposizione al farmaco, il substrato è stato scartato e le cellule sono state risciacquate una volta con PBS. La ROS intracellulare è stata rilevata per incubazione con una sonda fluorescente sensibile alla ROS a 37 °C per 20 minuti, e sono state catturate immagini di fluorescenza a lunghezze d'onda di eccitazione/emissione di 488/525nm 15.
Tachia occidentale
Le proteine cellulari sono state lisate utilizzando il tampone RIPA e chiarite tramite centrifugazione a 13.000 × g per 15 minuti a 4 °C. Le proteine sono state denaturate bollendo per 10 minuti e quantità uguali di proteine (20 μg per campione) sono state sottoposte a separazione elettroforetica e trasferite nelle membrane PVDF. Dopo un blocco per 1 ora, le membrane venivano incubate durante la notte con anticorpi primari. I successivi lavaggi PBST sono stati seguiti da incubazioni con anticorpi secondari coniugati con HRP, e la rilevazione è stata effettuata utilizzando un substrato a chemiluminescenza potenziata (ECL) 16. I dettagli degli anticorpi e gli identificatori dei reagenti sono elencati nella Tabella dei Materiali.
Colorazione di senescenza SA-β-gal
Le celle HK-2 sono state placcate in piastre da 12 pozzi a una densità di 1 × 10⁵ celle per pozzo. Quando le cellule hanno raggiunto il 60-70% di confluenza, sono state pretrattate con D-galattosio per 12 ore. La colorazione con SA-β-gal è stata effettuata secondo il protocollo del produttore e le cellule colorate sono state osservate con un microscopioottico 17.
Misurazione del potenziale della membrana mitocondriale
Il potenziale della membrana mitocondriale è stato valutato utilizzando la sonda fluorescente JC-1 in conformità con le istruzioni del fornitore. I monomeri di JC-1 sono stati rilevati a lunghezze d'onda di eccitazione/emissione di 490/530 nm, mentre gli aggregati di JC-1 sono stati rilevati a 525/590 nm. Le immagini sono state acquisite osservando segnali di fluorescenza chiari rossi o verdi.
Analisi statistica
I dati venivano presentati come diagrammi a barre o puntini e analizzati utilizzando il software di riferimento. Le intensità delle bande western blot sono state quantificate utilizzando ImageJ. I dati sono stati analizzati tramite analisi della varianza (ANOVA) con test t successivi per confronti tra gruppi. La significatività statistica è stata definita come un valore P < 0,05. I simboli indicano confronti con il gruppo di controllo (*) o il gruppo D-gal (#) (*P < 0,05, **P < 0,01, ***P < 0,001).