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Questo studio ha incluso 30 pazienti parzialmente edentuli che hanno cercato cure protesistiche presso la Clinic of Dental Protetics del University Dentistry Clinical Center of Kosovo, tra settembre 2021 e marzo 2022. L'approvazione etica è stata ottenuta dal comitato di revisione istituzionale (Approvazione n. 378/19) e tutte le procedure hanno rispettato i principi della Dichiarazione di Helsinki. È stato ottenuto il consenso informato scritto da tutti i partecipanti.
La dimensione del campione è stata determinata sulla base di ricerche precedenti, che indicano che da 11 a 30 partecipanti sono sufficienti per ottenere risultati significativi nei parametri microbici e parodontali tra i portatori diRPD 21,23. Assumendo un test t accoppiato a due code con un livello alfa di 0,05, l'analisi di potenza ha indicato che un campione di 28 partecipanti fornirebbe l'80% di potenza per rilevare una differenza statisticamente significativa di questa magnitudine. Per tenere conto dei potenziali abbandoni, abbiamo iscritto 30 partecipanti. Inoltre, un periodo di follow-up di tre mesi è stato sufficiente per osservare un aumento del carico batterico in questipazienti 24.
I pazienti idonei erano i primi utilizzatori di protesi, presentandosi sia con dentizione naturale adiacente che antagonista. I criteri di esclusione includevano: profondità di sondaggio >4 mm, stato immunodepresso (ad esempio, chemioterapia), uso di antibiotici negli ultimi 90 giorni, fumo pesante (>25 sigarette al giorno) e deficit cognitivo che ostacolano la comprensione delle procedure RPD.
Tutti i partecipanti hanno ricevuto RPD a fermaglio con fermaglio realizzati con una struttura in metallo cobalto-cromo e resina acrilica (polimetilmetacrilato). Il design di ogni RPD è stato personalizzato in base alla classificazione dell'edentulismo, alla qualità della cresta residua e a considerazioni biomeccaniche.
Procedura di raccolta del campione
La raccolta del campione è stata effettuata esclusivamente sui denti di spalle delle dentiere parziali rimovibili (RPD) tra i punti temporali T0 e T3. Ai partecipanti è stato inizialmente chiesto di fare gargarismi accurati con acqua per eliminare eventuali residui alimentari. Prima della raccolta del campione, il dente del pilone selezionato veniva isolato utilizzando rotoli di cotone per mantenere un ambiente di lavoro asciutto. Due punte sterili di carta (n. 35; 04 affusolate) sono state inserite nel solco gengivale sulle parti mesiale e distale della superficie buccale del dente e lasciate in posizione per 1 minuto. I punti di carta venivano poi trasferiti in un microtubo sterile contenente 1,5 mL di soluzione salina normale e trasportati in un laboratorio microbiologico designato. I campioni venivano conservati a -20°C fino al processo di isolamento del DNA.
Preparazione e amplificazione del DNA batterico:
Il test Parodontoscreen (Tabella dei Materiali) è stato utilizzato per identificare T. denticola, T. forsythia e P. gingivalis utilizzandoRT-PCR 26. Il test consiste in: preparazione del DNA; amplificazione PCR in tempo reale usando reagenti specifici (una miscela per l'amplificazione batterica universale, una miscela per l'amplificazione batterica opportunistica e una miscela per l'amplificazione genomica del DNA umano); e la registrazione e interpretazione dei risultati dell'amplificazione.
L'estrazione del DNA è stata effettuata utilizzando un kit di estrazione del DNA (Tabella dei Materiali), seguendo le linee guida del produttore per garantire la massima qualità del DNA. Il test utilizza analisi qualitativa PCR in tempo reale con una miscela PCR sigillata in paraffina. Questa combinazione include un Controllo Interno per verificare la validità dell'esecuzione PCR e un Controllo di Assunzione del Campione (SIC) per valutare la qualità dell'estrazione e confermare DNA sufficiente per un'amplificazione accurata.
L'amplificazione PCR è stata eseguita utilizzando strisce e condensatori specializzati, con reagenti che includevano soluzione di Taq-polimerasi, miscela master sotto strato di paraffina, campione di DNA e olio minerale. Il programma PCR è il seguente: (i) denaturazione iniziale a 80 °C per 30 secondi, (ii) denaturazione a 94 °C per 1 min 30 s, (iii) 5 cicli da 30 s a 94 °C (denaturazione), 15 s a 64 °C (legame e allungamento del primer per rilevamento), (iv) 45 cicli di 10 s a 94 °C (denaturazione), 15 s a 64°C (legame e allungamento dell'innesco, rilevamento della fluorescenza), (v) 5 s a 94 °C (denaturazione finale).
La rilevazione della fluorescenza veniva effettuata sui canali di rilevamento Fam e Hex, ad eccezione del tubo n. 5, che conteneva il marcatore (dove la fluorescenza veniva rilevata sui canali Fam e Rox). Il processo di amplificazione è stato condotto utilizzando ciclatori termici in tempo reale (Tabella dei Materiali). Il Software RealTime dello strumento (versione 7.9) è stato utilizzato per la registrazione automatica, l'interpretazione e l'analisi quantitativa dei dati di amplificazione PCR, consentendo una stima precisa del carico patogeno.
I carichi microbici erano rappresentati come "Lg (equivalenti genomici/campione)". I risultati sono stati presentati in tre intervalli nel referto del test Parodontoscreen per ciascun paziente, basati sui livelli di carico batterico come segue: P. gingivalis (normale <5,0; moderato ≥5,0; grave >6,0); T. forsizia (normale <5,0; moderata ≥5,0; grave >5,5); e T. denticola (normale <3,5; moderata ≥3,5; grave >5,0).
Esame clinico
L'esame clinico includeva un esame dettagliato delle condizioni parodontali dei denti a sostegno e non a spalla a T0 e T3. L'indice della placca (PI) è stato valutato utilizzando una sonda dentale secondo i criteri Silness-Loe (0-3)27. La condizione gengivale è stata valutata in sei punti sulla superficie del dente utilizzando l'indice gengivale (IG) secondo i seguenti criteri: 0, nessuna infiammazione; 1, lieve infiammazione; 2, infiammazione con sanguinamento gengivale durante il sondaggio; 3, infiammazione grave con possibile sanguinamento gengivalespontaneo 28.
La profondità di sondaggio (PD) è stata misurata utilizzando la sonda Williams dal margine gengivale fino all'estremità della profondità clinicadella tasca 29. La mobilità dentale (TM) è stata determinata dalla palpazione bimanuale nelle direzioni orizzontale e verticale, secondo il criterio30 di Miller.
Tutti i partecipanti allo studio hanno ricevuto un adeguato trattamento parodontale non chirurgico prima dell'esame clinico, inclusa la rimozione della placca dentale e del calcolo attraverso la decalcazione a ultrasuoni. I soggetti sono stati inoltre istruiti nelle procedure di igiene orale, come lavarsi i denti e pulire le dentiere, oltre a ricevere consigli sulla rimozione delle dentiere durante la notte.
Analisi statistica
I dati sono stati analizzati utilizzando Microsoft Excel e IBM SPSS Statistics for Windows. Sono state calcolate statistiche descrittive (media, deviazione standard e intervallo) per età, carichi microbici e indici parodontali, inclusi PI, GI, PD e TM. Le variazioni nei parametri clinici e microbiologici tra prima di (T0) e 3 mesi dopo l'inserimento (T3) sono state valutate utilizzando il test Wilcoxon con rango segnato per dati non parametrici accoppiati. Il test esatto di Fisher (simulazione di Monte Carlo, a due lati) è stato utilizzato per valutare dati categorici relativi alla classificazione del carico microbico. Il coefficiente di correlazione di rango (ρ) di Spearman è stato utilizzato per valutare le associazioni tra carichi microbici e parametri parodontali. Un valore p < 0,05 è stato considerato statisticamente significativo per tutte le analisi.