Articolo metodologico

Un modello di aterosclerosi nei topi indotto sia dalla legatura parziale della carotide sia dalla sovraespressione di PCSK9

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DOI:

10.3791/69862

27 febbraio 2026

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In questo articolo

Sommario

Un modello murino riproducibile induce l'aterosclerosi carotide combinando il virus adenomoassociato PCSK9 (PCSK9-AAV) - ipercolesterolemia mediata da dieta ad alto contenuto di grassi e la legatura parziale della carotide sinistra (PCL), ricapitolando la fisiopatologia umana. Ciò consente l'induzione rapida di lesioni carotidee aterosclerotiche simili a quelle umane nei topi selvatici senza modifica genomica, fornendo uno strumento standardizzato per facilitare la ricerca sull'aterosclerosi carotide.

Abstract

La mancanza di modelli rapidi e riproducibili specifici di aterosclerosi per carotide nei topi selvatici limita gli studi traslazionali sulla biologia e le terapie della placca. Questo protocollo descrive un metodo non genomico e efficiente in termini di tempo per indurre l'aterosclerosi carotide riproducibile nei topi C57BL/6 combinando la sovraespressione di PCSK9 mediata dal virus adenoassociato (AAV), una dieta aterogenica ricca di grassi e la legatura parziale della carotide sinistra (PCL). L'obiettivo è fornire un flusso di lavoro standardizzato che riproduca le principali caratteristiche fisiopatologiche chiave della malattia carotide umana—iperlipidemia più flusso disturbato—senza richiedere animali geneticamente modificati. I metodi includono dosaggio e somministrazione di PCSK9-AAV, preparazione perioperatoria, legatura chirurgica passo dopo passo della carotide sinistra, cure post-operatorie, regime alimentare, raccolta dei tessuti e valutazione istologica inclusa la colorazione con Oil Red O e Verhoeff-Van Gieson. I risultati indicano livelli elevati di colesterolo circolante e lipoproteine a bassa densità rispetto ai valori di riferimento. Placche aterosclerotiche pronunciate si sviluppano nell'arteria carotide sinistra legata, con un aumento significativo dell'accumulo lipidico e un significativo ispessimento arterioso-intima-media rispetto all'arteria di controllo destra non legata. Questo protocollo standardizzato migliora la riproducibilità e l'accessibilità per i ricercatori che studiano la formazione, la progressione, le strategie di intervento della placca carotide e facilita confronti tra laboratori di terapie sperimentali.

Introduzione

Le malattie cardiovascolari (CVD) rimangono la principale causa di mortalità globale, con l'aterosclerosi che rappresenta la loro base patologicacomune 1. L'arteria carotide è un sito critico per le lesioni aterosclerotiche; Studiare l'aterosclerosi carotide è essenziale per comprendere la patogenesi delle CVD e sviluppare strategieterapeutiche 2. I modelli animali sono strumenti indispensabili per la ricerca sull'aterosclerosi in vivo , eppure i modelli esistenti spesso presentano limitazioni in termini di comodità e capacità di ricapitolare le caratteristiche fisiopatologiche umane.

Rispetto all'aterosclerosi in altri siti arteriosi (ad esempio, aorta, arteria femorale), la formazione dell'aterosclerosi carotide è più fortemente influenzata dall'emodinamica. L'arteria carotide subisce un elevato stress di taglio (10-15 dyn/cm², dynes per centimetro quadrato), seconda solo all'arteria coronarica (6-45 dyn/cm²)3. In particolare nella biforcazione carotide si verifica un flusso vortice, caratterizzato da una tensione di taglio oscillatoria disturbata. Questo ambiente emodinamico anomalo innesca un'attivazione pro-infiammatoria sostenuta delle cellule endoteliali locali, caratterizzata da un'espressione aumentata di molecole di adesione e chemiocine che facilitano il reclutamento dei monociti e l'inizio dell'aterosclerosi3. Inoltre, le lesioni aterosclerotiche carotidee umane ad alto rischio spesso mostrano un grado di stenosi superiore al 70%, definito come la riduzione percentuale del diametro luminale causata dallaplacca 4. Pertanto, sono importanti modelli animali in grado di indurre una grave stenosi aterosclerotica.

Il modello di legatura parziale della carotide (PCL) è un modello di aterosclerosi indotto da disturbi persistenti del flusso sanguigno, che presenta i vantaggi di tempi di modellazione brevi e lesionigravi 5. L'Apolipoproteina E (ApoE) è una proteina chiave coinvolta nel metabolismo e nella rimozione delle lipoproteine ricche di colesterolo e trigliceridi circolanti, svolgendo un ruolo fondamentale nel mantenimento dell'omeostasi lipidica plasmatica. Tuttavia, il modello tradizionale PCL che utilizza topi ApoE-knockout (ApoE⁻/⁻) è difficile e costoso darealizzare 5. Quando è necessario un knockout del gene bersaglio, è necessario il knockout del doppio gene (sia del gene target che del gene ApoE), complicando ulteriormente il processo di modellazione. Al contrario, quando per PCL si usano solo topi selvatici di tipo C57BL/6, il modello non presenta ipercolesterolemia, fattore di rischio centrale per l'aterosclerosi umana, e raramente presenta lesioni aterosclerotiche ricche di lipidiprominenti 6,7. Altri modelli, come i topi ApoE⁻/⁻ o LDLR-knockout (LDLR⁻/⁻) alimentati con una dieta ad alto contenuto di grassi (HFD), sono ampiamente utilizzati nella ricerca sull'aterosclerosi per studiare l'aterosclerosi aortica. Tuttavia, questi modelli non riescono a incorporare l'effetto del flusso sanguigno disturbato e non possono formare aterosclerosi grave in un breve periodo di tempo. Studi precedenti hanno dimostrato che dopo 3 mesi di alimentazione con HFD, i topi ApoE⁻/⁻ o LDLR⁻/⁻ sviluppano solo placche aterosclerotiche lievi nelle regioni aortiche o brachiocefale, mentre non si formano lesioni evidenti nelle arteriecarotidi.

La proproteina convertasi subtilisina/kexina tipo 9 (PCSK9) è un regolatore chiave del metabolismo del colesterolo lipoproteico a bassa densità (LDL-C): promuove la degradazione dei recettori LDL, aumentando così i livelli sierici di LDL-C10. Il virus adenoassociato ricombinante che esprime PCSK9 (PCSK9-AAV) consente l'ipercolesterolemia a dosaggio controllabile nei topi WT senza la necessità di modifichegenetiche 11. Combinando l'ipercolesterolemia indotta da PCSK9-AAV, l'HFD (che aggrava ulteriormente i disturbi del metabolismo lipidico) e la PCL (che induce disturbi emodinamici locali) permette la costruzione di un modello animale che incorpora due fattori di rischio chiave per l'aterosclerosi umana: ipercolesterolemia e disturbo del flusso.

Basandosi sui progressi precedentidella ricerca 12, questo protocollo stabilisce un metodo standardizzato per indurre l'aterosclerosi carotide nei topi C57BL/6. Rispetto ai protocolli modello esistenti, offre tre vantaggi chiave: (1) Rilevanza fisiopatologica: riproduce contemporaneamente l'ipercolesterolemia e il disturbo del flusso, causando lesioni carotide che mostrano caratteristiche simili all'aterosclerosi umana di fase medio-avanzata; (2) Riproducibilità: la parametrizzazione dettagliata del dosaggio di AAV, delle procedure chirurgiche e del controllo dietetico riduce la variabilità inter-laboratorio; (3) Tempestività: Il periodo totale di modellizzazione è di 5 settimane, riducendo significativamente il tempo necessario per l'istituzione del modello.

Questo protocollo è adatto ai ricercatori che studiano la biologia della parete vascolare, valutano l'efficacia di farmaci antiaterosclerotici ed esplorano l'interazione tra emodinamica e metabolismo lipidico nell'aterosclerosi. In particolare, questo protocollo è un modello focalizzato sulla carotide, che non può replicare completamente tutti gli aspetti dei fattori di rischio sistemici umani per l'aterosclerosi, inclusi ma non limitati a fumo, diabete mellito, ipertensione e obesità. Di seguito è riportata una guida passo dopo passo per l'istituzione del modello e la valutazione delle lesioni.

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Protocollo

Tutte le procedure sono state approvate dal Comitato Etico Animale del Comitato Etico sugli Esperimenti Animali presso il Peking Union Medical College (ACUC-A02-2024-006) e sono conformi alla Guida per la Cura e l'Uso degli Animali da Laboratorio.

1. Preparazione sperimentale degli animali

  1. Acquista maschi C57BL/6 topi di età 6-8 settimane (peso corporeo: 22-25 g).
  2. Topolini domestici in un ambiente specifico privo di patogeni (SPF) in condizioni rigorosamente controllate: temperatura (23 ± 1°C), umidità (50 ± 5%) e ciclo di 12 ore luce/scure (illuminazione: 07:00-19:00).
  3. Prima dell'esperimento, fornire ai topi una dieta standard per il cibo (rapporto energetico del 10% di grassi) e acqua sterile, con libero accesso a cibo e acqua, per un periodo di acclimatazione di 1 settimana.

2. Preparazione e somministrazione del PCSK9 - AAV

ATTENZIONE: Considerare l'AAV come un pericolo per la biosicurezza e eseguire tutte le procedure secondo il livello di biosicurezza istituzionale appropriato (tipicamente BSL-2). Indossa doppi guanti, protezione per gli occhi e indumenti protettivi. Evita la generazione di aerosol durante la manovrazione. Decontaminare i materiali contaminati da AAV con disinfettanti appropriati (ad esempio, candeggina al 10%) e seguire protocolli di responsabilità e risposta agli incidenti ben definiti. Tutti i rifiuti contaminati da virus devono essere inattivati per immersione in disinfettanti contenenti cloro.

  1. Acquista PCSK9-AAV ricombinante (rAAV8-HCRApoE/hAAT-D377Y-mPCSK9).
  2. Verifica il titolo AAV tramite PCR quantitativa in tempo reale mirando al promotore CMV: il titolo finale era 6,10×10¹³ vg/mL (genomi vettoriali per millilitro). Conservare l'AAV a -80°C ed evitare cicli ripetuti di congelamento-disgelo (≤3 cicli di congelamento-discongelamento).
  3. Scongelare l'AAV sul ghiaccio per 15-20 minuti, poi inverti delicatamente il tubo della centrifuga 3-5 volte per mescolare (evitando vortici).
  4. Diluire PCSK9-AAV con soluzione salina sterile tamponata con fosfato (PBS) a una concentrazione finale di 2×10¹¹ vg/200 μL per topo.
  5. Somministrare tramite iniezione nella vena caudale (i.v.): fissare il topo usando un portainiezioni per la coda del topo che visualizza le vene e iniettare lentamente 200 μL di AAV diluito usando una siringa di insulina (tasso di iniezione: 10 μL/s). Il momento dell'iniezione è 1 settimana prima della PCL (Figura 1A).

3. Preparazione preoperatoria per la legatura parziale della carotide

ATTENZIONE: Il tribromoetanolo è un reagente controllato con rischio di overdose. Somministra rigorosamente in base al peso corporeo, evita iniezioni ripetute e documenta accuratamente il tempo e il volume di dosaggio. Conserva in un contenitore chiuso a chiave e assicurati che la preparazione e l'uso siano eseguiti solo da personale qualificato. In caso di sospetto overdosaggio, avviare la gestione delle emergenze e documentare l'incidente.

  1. Anestesiare i topi tramite iniezione intraperitoneale (i.p.) di tribromoetanolo (2,5% Avertin, 0,18 mL/10 g) fino a perdere il riflesso di raddrizzamento (circa 2-3 minuti). Poi, trasferisci il mouse su una borsa termica (37 ± 0,5°C). Controlla l'effetto anestetico pizzicando le dita dei piedi.
    NOTA: L'anestesia è fondamentale per un intervento chirurgico di successo. Per minimizzare i rischi anestetici, si dovrebbero evitare le iniezioni anestetiche multiple. Prima dell'inizio dell'intervento, la dose anestetica deve essere determinata in base alla durata prevista dell'intervento. Inoltre, la durata chirurgica per ogni topo è raccomandata di essere <30 minuti per ridurre i rischi associati a procedure prolungate.
  2. Durante l'intervento, controlla la frequenza respiratoria del topo (normale: 40-60 respiri/min) e il riflesso plantare pizzicando delicatamente il cuscinetto della zampa posteriore con la pinza ogni 5 minuti.
  3. Applica accuratamente la crema depilatoria sulla pelle cervicale anteriore del topo. Dopo 2-3 minuti, rimuovere i peli cervicali anteriori con cotton fibs e pulire i peli residui con soluzione salina normale. Disinfetta la pelle esposta con povidone-iodio al 5% tre volte.
  4. Esegui un intervento chirurgico in un armadietto di biosicurezza in una stanza asettica per topi. Sterilizza lo spazio chirurgico con luce ultravioletta per mantenere l'assepsi il più possibile e autoclave tutti gli strumenti metallici.
    NOTA: Un ambiente asettico e una disinfezione approfondita sono essenziali per garantire la sopravvivenza post-operatoria e la stabilità fisiologica del topo.

4. Legatura parziale della carotide - procedura chirurgica

  1. Eseguire un'incisione mediana (circa 1,0-1,5 cm di lunghezza) sul collo del topo usando forbici chirurgiche sterili; separare i tessuti sottocutanei e il muscolo sternocleidomastoideo con pinze smussate per esporre l'arteria carotide comune sinistra (LCCA).
    NOTA: L'area operatoria deve essere continuamente umidita con soluzione salina normale riscaldata per prevenire ulteriori traumi causati dalla disidratazione vascolare/tissutale.
  2. Separare in modo diretto il LCCA dal nervo vago (situato adiacente all'arteria) per evitare di danneggiare il nervo vago (che potrebbe causare depressione respiratoria).
  3. Dissezionare verso l'alto lungo la LCCA per esporre l'arteria carotide interna (ICA), l'arteria carotide esterna (ECA), l'arteria occipitale (OA) e l'arteria tiroidea superiore (STA) (Figura 1B).
  4. Usa suture di seta sterili 6-0 per legare l'arteria carotide esterna sinistra sopra la STA. Poi, usa un'altra sutura di seta sterile 6-0 per legare contemporaneamente le radici dell'ICA e dell'OA.
    NOTA: Evita di legare i nervi e altri tessuti circostanti. Bloccare completamente il flusso di derivazione di ECA/ICA/OA preservando un certo grado di flusso retrogrado nella LCCA. L'effetto della legatura deve essere valutato osservando lo stato di sanguinamento/flusso sanguigno e la pulsazione arteriosa distale.
  5. Controlla la presenza di sanguinamento nel sito operatorio. Se si verifica il sanguinamento, premere delicatamente con cotton fioc sterili per 30-60 secondi per ottenere l'emostasia. Sutura la pelle con adesivo tissutale o sutura chirurgica.
    NOTA: Evitare che un eccesso di adesivo tissutale penetri nel tessuto sottocutaneo.

5. Cura post-parziale della legatura carotide e intervento dietetico ad alto contenuto di grassi

  1. Somministrare 0,5 mL di soluzione salina normale calda tramite iniezione intraperitoneale per la sostituzione dei liquidi post-operatoria.
  2. Alleviare il dolore con iniezione sottocutanea di meloxicam (0,1 mg/kg) immediatamente dopo l'intervento e 12 ore dopo l'intervento.
  3. Metti il topo in una gabbia riscaldata per il recupero (37°C) finché il riflesso di raddrizzarsi non si ripristina (circa 15-30 minuti). Monitorare il topo per comportamenti anomali (ad esempio, letargia, dispnea) entro 24 ore dall'intervento.
  4. Fornire antibiotici per prevenire infezioni post-operatorie, come consigliato dai veterinari, come acqua potabile contenente antibiotici per 7 giorni dopo l'intervento.
  5. Nutrire con HFD in stile occidentale (con rapporto energetico del 40% e contenuto di colesterolo dell'1,25%) fino alla valutazione della lesione (4 settimane dopo l'intervento).
    NOTA: Conserva l'HFD a 4°C per prevenire l'ossidazione del grasso e usalo entro 2 settimane dall'apertura. Sostituisci l'HFD ogni 2 giorni per garantire la freschezza e monitora quotidianamente l'assunzione alimentare dei topi (assunzione alimentare normale: circa 4-5 g per topo al giorno). Sincronizzare l'alimentazione con ICD con l'ipercolesterolemia indotta da PCSK9-AAV massimizza la deposizione lipidica nell'arteria carotide; ritardare l'inizio dell'HFD ridurrà la gravità della lesione.

6. Raccolta e trattamento dei campioni

ATTENZIONE: Il paraformaldeide emette vapori tossici. La preparazione, l'uso e la rimozione devono essere effettuati in una cappa chimica indossando DPI appropriati (guanti, occhiali di sicurezza e camice da laboratorio). Smaltire i rifiuti utilizzando procedure consolidate di neutralizzazione e raccolta dei rifiuti chimici. I fissativi devono essere neutralizzati e raccolti centralmente in conformità con i protocolli istituzionali di smaltimento dei rifiuti liquidi.

NOTA: I campioni aterosclerotici della carotide umana in questo studio sono stati prelevati da pazienti con stenosi dell'arteria carotide sottoposti a endarterectomia carotide. Questo studio è conforme alla Dichiarazione di Helsinki ed è stato approvato dal Consiglio di Revisione Etica Istituzionale dell'Ospedale Universitario dell'Unione di Pechino (PUMCH) (n. JS-2966). Tutti i partecipanti allo studio hanno fornito un consenso informato scritto.

  1. A 4 settimane dall'intervento, anestetizzare i topi tramite iniezione intraperitoneale di tribromoetanolo.
  2. Eseguire una toracotomia bilaterale su topi anestetizzati e perforare il cuore per prelevare campioni di sangue per i test dei lipidi del sangue. Successivamente, perfondere il ventricolo sinistro con 20 mL di PBS gelido per eliminare il sangue residuo dai vasi sanguigni in 3-6 mL/min. Osserva i cambiamenti nel colore dei tessuti come indicatore visivo del completamento della perfusione.
    NOTA: Se consentito dall'etica/regolamentazione istituzionale, possono essere utilizzati metodi alternativi se chiaramente indicati e eseguiti in conformità con i requisiti del Comitato Locale per la Cura e l'Uso degli Animali (IACUC). Le carcasse degli animali devono essere incenerite dal team veterinario istituzionale o da appaltatori autorizzati secondo le normative sui rifiuti biologici o trattate tramite procedure approvate di smaltimento dei rischi biologici.
  3. Dissezionare e prelevare le arterie carotide insieme al cuore, isolare l'arteria carotide bilaterale al microscopio e fissarla in paraformaldeide (PFA) al 4°C per 24 ore.
  4. Trasferire l'arteria carotide fissa in una soluzione di saccarosio al 30% (disciolta in PBS) e incubare a 4°C per 24 ore (fino a quando il tessuto non affonda). Immergere l'arteria in un composto a temperatura di taglio ottimale (OCT) e conservare a -80°C.
  5. Utilizzare un criostato per tagliare sezioni trasversali spesse 5 μm dell'arteria carotide comune sinistra (posizione della sezione: 1 mm prossimale al sito di legazione; temperatura di taglio: -20°C ~ -22°C, regolazione fine in base al contenuto d'acqua del tessuto). Utilizzando un pennello fine pre-raffreddato, trasferisci delicatamente la sezione sulla piastra anti-rollio del criostato per assicurarti che resti piatta. Tieni un vetrino rivestito di poli-L-lisina ad un angolo quasi verticale e portalo lentamente a contatto con la sezione.
    NOTA: La fase di perfusione è fondamentale per rimuovere il sangue residuo; altrimenti, interferirà con la colorazione delle lesioni. Fissazione completa dell'arteria entro 30 minuti dall'eutanasia per preservare la morfologia tissutale.

7. Valutazione della lesione aterosclerotica 1 - Colorazione con rosso olio O

  1. Asciugare le sezioni all'aria a temperatura ambiente (20-25 °C) per 30 minuti; Immergi al 60% di isopropanolo per 1 minuto, poi incuba in soluzione di lavoro Oil Red O (diluita 3:2 con isopropanolo al 60%) a temperatura ambiente (20-25 °C) per 10 minuti.
  2. Differenziare immergendo completamente il vetrino nel 60% di isopropanolo a temperatura ambiente per ~5-10 secondi con una delicata agitazione per rimuovere il colorante non legato; colorare con ematossilina per 30 secondi; Sciacquare con acqua del rubinetto per 5 secondi (per blure i nuclei cellulari).
  3. Cattura immagini di sezione utilizzando scanner a vetrata o microscopio ottico con ingrandimento 5x, 10x e 20x; Analizza quantitativamente l'area di deposizione lipidica usando il software ImageJ (Versione 1.54p) - calcola la percentuale di area O-positiva del Rosso Olio rispetto all'area intima totale.
  4. Procedure di quantificazione dell'immagine J
    1. Apri l'immagine; seleziona lo strumento Selezione a mano libera per delineare manualmente l'area intima-media. Naviga su Strumenti di Analisi > > ROI Manager e clicca su Aggiungi.
    2. Vai su Immagine > regola > soglia di colore; regola i parametri di tonalità e luminosità per farli corrispondere alle regioni O-positive del rosso olio. Clicca su Seleziona, poi Aggiungi al Gestore ROI.
    3. Seleziona sia il ROI dell'intima-media che il ROI colorato, clicca AND per ottenere l'area O-positive dell'Oil Red all'interno dell'area dell'intima-media.
    4. Clicca su Aggiungi e misura per calcolare le aree delle regioni intima-media e Oil Red O-positive.
    5. Formula di calcolo:
      Area O rosso olio (%) = (rosso olio O_positive_area / intimal_media_area) × 100

8. Valutazione della lesione aterosclerotica 2 - Colorazione di Van Gieson di Verhoeff

  1. Recupera le sezioni congelate incorporate con composto OCT su diapositive.
  2. Immergi i vetri in acqua distillata a temperatura ambiente (20-25°C) per 10-15 minuti con una delicata agitazione (2-3 volte) per sciogliere completamente il composto OCT.
  3. Scartare l'acqua contenente composto OCT, poi risciacquare le sezioni con acqua distillata fresca per 2 minuti per eliminare residui di composto OCT.
  4. Incubare le sezioni nella colorazione Verhoeff (contenente ematossilina, iodio e cloruro ferrico) a temperatura ambiente (20-25°C) per 15 minuti, scuotendo delicatamente il portavetri 2-3 volte durante l'incubazione per garantire una colorazione uniforme.
  5. Risciacqua rapidamente le sezioni con acqua distillata due volte, 10 secondi ogni volta.
  6. Differenziare in soluzione di cloruro ferrico al 2% per 30-60 secondi; osservare al microscopio finché le fibre elastiche non appaiono blu-nere e lo sfondo appare grigio. Risciacquo con acqua distillata due volte, 1 minuto ogni volta.
  7. Trattare le sezioni in una soluzione al 5% di tiosolfato di sodio per 1-2 minuti per rimuovere lo iodio residuo.
  8. Risciacqua con acqua distillata per 2 minuti, poi controcolora con la colorazione Van Gieson (acido fucsina + acido picrico) per 5 minuti per colorare le fibre di collagene fino a colorare di rosso acceso.
  9. Disidratare sequenzialmente con etanolo al 95% (due volte, 1 min ciascuno) e 100% etanolo (due volte, 1 min ciascuno); liberare in xilene per 5 minuti; Le sezioni venivano coperte con slip usando un mezzo di montaggio in resina sintetica.
  10. Cattura immagini di sezione; Utilizza software di analisi digitale delle immagini per misurare lo spessore intimo o intimo delle placche in quattro direzioni (anteriore, posteriore, sinistra, destra) utilizzando lo strumento di misurazione della lunghezza, quindi calcola il valore medio.
    1. Apri il carrello, zooma sulla sezione trasversale del contenitore bersaglio e clicca sullo strumento di misurazione.
    2. Clicca sequencialmente sull'interno dell'intima e sull'esterno dell'intima/media nelle direzioni anteriore, posteriore, sinistra e destra, e annota i quattro valori di spessore.
    3. Calcola il valore medio e registra le misurazioni.
      Valore medio = (anteriore + posteriore + sinistro + destro) ÷ 4

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Risultati

I risultati della colorazione con olio rosso O hanno mostrato che le arterie legate presentavano una grave formazione di placca aterosclerotica, nuclei lipidici evidenti e aree necrotiche. La proporzione di regioni lipidiche era significativamente più alta nell'arteria carotide sinistra rispetto a quella del controllo dell'arteria carotide destra (p < 0,001) (Figura 2A). La colorazione VVG ha rivelato distruzione o scomparsa delle fibre elastiche nell'intima...

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Discussione

Questo protocollo descrive un metodo standardizzato per stabilire un modello di aterosclerosi carotide nei topi C57BL/6 combinando l'ipercolesterolemia indotta da PCSK9-AAV, la dieta ad alto contenuto di grassi (HFD) e la legatura parziale dell'arteria carotide comune (PCL).

Rispetto a modelli tradizionali come ApoE -/- o LDLR-/- o modelli PCL che utilizzano il mouseWT 5, questo modello offre vantaggi unici nella ricerca sull'a...

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Ringraziamenti

Questo lavoro ha ricevuto finanziamenti dalla National Natural Science Foundation of China (82470516, 8227022021), dal Fondo Speciale di Ricerca per le Università Centrali, dal Peking Union Medical College (3332025111), dal National High-Level Hospital Clinical Research Funding (2025-PUMCH-A-181, 2025-PUMCH-D-001) e dalla Natural Science Foundation della Provincia del Sichuan (2024NSFC0715).

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Sutura in nylon sterile 6-0Jinhuan MedicalF602NA
Mouse C57BL/6Centro degli Organismi Modello di Shanghai, Inc. (SMOC)SM-001NA
Chow deitBiografia di XietongNo. XT93GNA
Criostato Leica CM1950NA
Crema depilatoriaVeetRB Health LLCNA
Dieta ricca di grassiBiografia di XietongXT108cNA
OCTSakura4582NA
Soluzione Oil Red OServiceBio&NBSP;G1017-100mLNA
Microscopio otticoLeicaDM4BNA
Paraformaldeide Servicebio G1101-500mLNA
PCSK9-AAVWZBioscience AV208001-AV8NA
Lame rivestite di poli-L-lisinaSigmaP0425NA
Scanner a diapositive3DHISTECHSCAN PanoramicaNA
SulfametossazoloSelleckS1915 NA
Adesivo tissulare3M Vetbond1469SBNA
Supporto per l'iniezione della coda del topo che visualizza le vene  Jinan Yiyan Scienza & Scienza Technology Development Co., LtdYLS-Q9GNA

Riferimenti

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