Method Article

Elaborazione meccanica del micrograsso arricchito con SVF per la ricostruzione di difetti traumatici dei tessuti molli

DOI:

10.3791/69984

⸱

February 20th, 2026

 ,  ,  ,  , 
1Department of Trauma and Microsurgery Orthopedics, Zhongnan Hospital of Wuhan University

In This Article

Summary

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Questo protocollo descrive un metodo riproducibile per preparare micrograssi arricchiti con SVF processati meccanicamente da tessuto adiposo autologo e iniettarlo in difetti traumatici dei tessuti molli di tipo cario per la ricostruzione clinica.

Abstract

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

I difetti traumatici dei tessuti molli rappresentano sfide significative per la ricostruzione a causa della perdita tissutale, della vascolarità compromessa e delle difficoltà nel raggiungimento di una copertura duratura. Il tessuto adiposo offre una pratica fonte di tessuto autologo, e il micrograsso arricchito di frazione vascolare stromica (SVF) processato meccanicamente può essere preparato intraoperatoriamente senza digestione enzimatica.
Questo studio presenta un protocollo clinico standardizzato per il prelievo di tessuto adiposo autologo e il suo processo in micrograsso arricchito con SVF per l'iniezione in difetti traumatici dei tessuti molli di tipo carie. Il grasso viene raccolto manualmente dalla coscia o dall'addome a bassa pressione negativa, frammentato meccanicamente tramite taglio ed emulsificazione da siringa a siringa, filtrato per ottenere una consistenza uniforme di micrograsso e centrifugato per isolare la frazione contenente SVF. Il micrograsso processato viene iniettato in tutta la cavità della ferita in un motivo multistrato. La valutazione post-operatoria include la valutazione clinica seriale, la documentazione fotografica e la misurazione della riduzione dell'area della ferita fino all'epitelizzazione.
In una piccola coorte, il metodo è stato associato a contrazione progressiva della ferita ed epitelizzazione completa entro circa 4-8 settimane, senza complicazioni maggiori. Sebbene la composizione e la vitalità cellulare non fossero quantificate, la tecnica forniva un approccio intraoperatorio praticabile adatto a contesti senza accesso a strutture di elaborazione enzimatica o di laboratorio. Questo protocollo offre un metodo pratico e minimamente manipolato per somministrare micrograssi arricchiti con SVF nella gestione di difetti traumatici di tipo cavità e può costituire una base per ulteriori studi controllati.

Introduction

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

I difetti dei tessuti molli di tipo cavità traumatica rimangono una sfida ricostruttiva importante perché combinano perdita tissutale, perfusione locale compromessa e un alto rischio di infezione e formazione di spazi morti. Le tecniche convenzionali di copertura, come innesti cutanei a spessore diviso o trasferimenti di lembo, offrono in molti casi una copertura duratura. Tuttavia, sono spesso limitati dalla morbilità del sito donatore, dalla complessità tecnica e da risultati variabili a lungo termine, specialmente nei letti contaminati o segnati 1,2,3.

Il tessuto adiposo è una fonte abbondante e facilmente accessibile di una popolazione cellulare eterogenea chiamata frazione vascolare stromaica (SVF). La SVF include cellule stromali mesenchimatici, progenitori endoteliali, periciti e elementi stromici di supporto. Quando trattenuta all'interno delle particelle del tessuto adiposo, il contesto extracellulare nativo della SVF viene preservato durante la gestione e la consegnaclinica 4. Clinicamente, gli innesti di grasso arricchiti per SVF (micrograsso arricchiti da SVF) sono stati riportati come migliori della ritenzione del trapianto e associati a un'epitelizzazione accelerata della ferita in una varietà diindicazioni 5,6,7.

Esistono due strategie principali per ottenere SVF tramite lipoaspirazione. La digestione enzimatica tipicamente produce un numero maggiore di cellule nucleate per unità di volume, ma richiede reagenti dedicati, infrastrutture di laboratorio, tempi di elaborazione più lunghi ed è soggetta a restrizioni normative in molte giurisdizioni 4,8. Al contrario, i metodi di lavorazione meccanica includono il taglio, l'emulsificazione siringa-siringa, la filtrazione e l'uso di dispositivi meccanici a sistema chiuso. Questi approcci permettono una rapida preparazione intraoperatoria di micrograssi arricchiti da SVF con manipolazioni minime e tempi di risposta piùbrevi 6,9,10,11. I sistemi meccanici recenti hanno riportato tempi di elaborazione <15 min e risultati vicini a quelli dei metodi enzimatici in alcune serie, anche se il conteggio delle cellule misurato e la vitalità possono variare a seconda del dispositivo edell'operatore 9.

Nonostante la letteratura in espansione sulla SVF processata meccanicamente e sull'innesto di grasso per ulcere croniche e malattia diabetica del piede, i protocolli standardizzati e riproducibili specificamente destinati ai difetti traumatici dei tessuti molli di tipo carie sonoscarsi 7,12. I rapporti clinici pubblicati trattano comunemente ulcere croniche, ferite diabetiche o innesto di grasso estetico. Tuttavia, solo pochi forniscono un protocollo intraoperatorio a passo a passo che specifica parametri di raccolta, endpoint di emulsificazione, dimensioni dei pori di filtrazione, forza centrifugatrice (× g), dosaggio per area della ferita e criteri di prontezza per iniezione in contestitraumatici 7,13.

Le indicazioni pratiche sull'applicabilità sono quindi importanti per i team chirurgici che considerano questo approccio. In base alla letteratura disponibile e alla nostra esperienza operatoria, i volumi tipici di aspirazione intraoperatoria per una singola cavità sono di ~20-40 mL. Questo volume generalmente produce abbastanza micrograssi processati per riempire le carie piccole o moderate. Al contrario, le ricostruzioni a grandi volumi sono probabilmente al di fuori dell'ambito del processamento meccanico al punto di cura e possono richiedere procedure a stadi o strategie alternative 9,12. Gli approcci SVF meccanici sono anche meno adatti per ferite gravemente contaminate fino a quando l'infezione non è controllata; In tali casi, il debridamento aggiuntivo e la gestione delle infezioni (inclusi antibiotici mirati e, dove opportuno, la terapia con ferite a pressione negativa) dovrebbero precedere l'innesto7.

Il presente lavoro mira a fornire un protocollo intraoperatorio dettagliato e riproducibile per preparare micrograssi arricchiti con SVF tramite processi meccanici e per iniettare questo prodotto in difetti traumatici dei tessuti molli di tipo carie. Il protocollo enfatizza parametri operativi espliciti (prelievo, frammentazione e emulsificazione meccanica, filtrazione, centrifugazione espressa in × g, tecnica di iniezione e misurazione oggettiva dell'area della ferita) affinché altri team chirurgici possano adottare e convalidare il metodo nei propri contesti.

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Protocol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tutte le procedure sono state approvate dal Comitato Etico Istituzionale (Approvazione n. KL-2025062) e condotta in conformità con la Dichiarazione di Helsinki. Il consenso scritto informato è stato ottenuto da tutti i pazienti prima della partecipazione.

1. Selezione del paziente e valutazione preoperatoria

  1. Includere pazienti adulti che presentano difetti traumatici dei tessuti molli di tipo carie che richiedono intervento ricostruttivo dopo il completamento di un adeguato debridemento chirurgico.
    NOTA: I difetti dovrebbero mostrare una cavità ben definita con tessuto vitale circostante e nessuna necrosi in corso al momento della ricostruzione.
  2. Escludere i pazienti con infezione sistemica attiva o infezione locale della ferita non controllata, diabete mellito mal controllato (definito come HbA1c persistente >8% nonostante il trattamento), malattia vascolare periferica significativa che colpisce l'arto coinvolto, disturbi della coagulazione noti o anticoagulazione attuale che non possono essere interrotte in sicurezza, malignità che coinvolge il sito del difetto o controindicazioni per liposuzione o anestesia come determinato dalla valutazione preoperatoria.
  3. Effettuare la raccolta dei dati di base e la valutazione delle ferite
    1. Registrare le caratteristiche basali dei pazienti, inclusi età, sesso, posizione della ferita, meccanismo della lesione e tempo dal danno alla ricostruzione.
    2. Esegui la valutazione della ferita dopo la preparazione standard. Misurare lunghezza e larghezza della ferita usando un righello sterile nei punti più larghi. Acquisire fotografie digitali standard con distanza e orientamento fissi. Calcola l'area della ferita (cm²) utilizzando l'analisi planimetrica basata su fotografie calibrate (vedi Passo 6.6).
  4. Fornisci consulenza preoperatoria. Spiega al paziente i passaggi procedurali delle procedure previste, i potenziali rischi (inclusa infezione, riassorbimento del grasso e la necessità di procedure aggiuntive), i requisiti di assistenza post-operatoria e il calendario di follow-up.
  5. Conferma la comprensione e ottieni il consenso informato scritto prima dell'intervento

2. Preparazione preoperatoria

  1. Preparazione di attrezzature sterili
    1. Prepara l'attrezzatura sterile necessaria, inclusi: cannule per liposuzione (diametro 2-3 mm, punta smussata), siringhe Luer-lock (capacità 10-20 mL), connettori Luer-lock sterili per il trasferimento da siringa a siringa, forbici chirurgiche, cannule per l'iniezione con punta smussata (22G × 50 mm).
    2. Verifica l'integrità e la sterilità di tutti i dispositivi prima dell'uso.
  2. Preparazione e infiltrazione della soluzione tumescente
    1. Preleva 1.000 mL di soluzione salina normale allo 0,9% in un contenitore sterile
    2. Aggiungi 2 mL di epinefrina 1:1.000 per ottenere una concentrazione finale di 1:500.000. Mescola accuratamente in condizioni sterili.
    3. Collega la soluzione a una siringa Luer-lock con una cannula di infiltrazione smussata da 2-3 metri
      NOTA: La lidocaina è volutamente omessa per consentire la somministrazione separata di anestesia a dosaggio controllato.
    4. Introduci la soluzione nel sito donatore sottocutaneo (ad esempio, addome o coscia) utilizzando passaggi lenti a ventaglio, dai piani profondi a quelli superficiali.
    5. Regolare il volume totale in base all'area superficiale del sito donatore e al volume previsto di lipoaspirato.
    6. Infiltrarsi finché il tessuto non mostra una tumescenza uniforme e vasocostrizione.
    7. Aspetta 10-15 minuti dopo l'infiltrazione per permettere la massima vasocostrizione prima del prelievo. NOTA: L'epinefrina riduce il sanguinamento intraoperatorio e facilita il prelievo dell'adipo. Omettere la lidocaina impedisce di superare le dosi sicure di anestesia e consente un'anestesia locale o regionale separata.
  3. Somministrazione dell'anestesia
    NOTA: L'anestesia viene somministrata separatamente dalla soluzione tumescente, selezionata in base alla dimensione del difetto, al sito donatore e alla tolleranza del paziente. Uno dei seguenti approcci anestetici viene selezionato in base alla dimensione del difetto, al sito donatore e alla tolleranza del paziente.
    1. Infiltrazione locale (blocco di campo): Infiltrarsi 0,5-1% di lidocaina con epinefrina 1:200.000 utilizzando una cannula a punta smussata (22G × 50 mm). Si diffonde radialmente attorno ai nervi sensoriali che alimentano il sito donatore. Prevedi 5-10 minuti per l'effetto anestesico completo prima di manipolare il sito donatore o infiltrazione tumescente.
      NOTA: Dose massima: 7 mg/kg di lidocaina con epinefrina, adattata al peso del paziente e alle comorbidità.
    2. Anestesia regionale (facoltativo): Utilizzare blocchi del nervo periferico guidati da ultrasuoni in base al sito donatore. Usare bupivacaina (0,25-0,5%) o ropivacaina (0,5%), dosata secondo le linee guida standard. Conferma l'inizio del blocco (10-20 minuti) prima del raccolto.
    3. Anestesia generale: riservata a difetti gravi o procedure combinate. Somministrare secondo i protocolli istituzionali con monitoraggio standard.
      ATTENZIONE: Assicurarsi che la dose totale sistemica di epinefrina proveniente da tutte le soluzioni infiltrate rimanga entro i limiti di sicurezza clinica accettati.

3. Raccolta del grasso

  1. Seleziona il sito donatore (addome e/o coscia laterale) in base ai seguenti criteri
    1. Disponibilità di tessuto adiposo sottocutaneo sufficiente per consentire un prelievo adeguato senza deformità dei contorni
    2. Assenza di cicatrici locali, infezioni o interventi chirurgici precedenti che possano compromettere la qualità dei tessuti.
    3. Accessibilità e posizionamento del paziente sul tavolo operatorio per consentire l'infiltrazione sterile e l'aspirazione.
      NOTA: Scegliere un sito con tessuto adeguato e traumi precedenti minimi facilita un prelievo costante dell'adiposo e riduce le complicazioni procedurali.
  2. Eseguire un'incisione cutanea di 2-3 mm usando un bisturi n. 11, in condizioni sterili. Incidere attraverso l'epidermide e il derme fino allo strato sottocutaneo senza penetrare più in profondità nella fascia o nei muscoli.
  3. Mantieni una piccola incisione controllata per minimizzare le cicatrici.
  4. Attacca una cannula liposuzione da 2-3 mm a una siringa Luer-lock da 10-20 mL.
  5. Inserire la cannula attraverso l'incisione cutanea nello strato adiposo sottocutaneo, rimanendo superficiale rispetto alla fascia sottostante.
  6. Usa movimenti delicati e multidirezionali per distribuire la cannula in modo uniforme lungo il piano sottocutaneo bersaglio.
  7. Applica manualmente una pressione negativa bassa estraendo delicatamente lo sturalavandini della siringa per aspirare il tessuto adiposo.
  8. Evita l'aspirazione aggressiva per minimizzare i traumi meccanici alle cellule derivate dalle adipose.
  9. Continuare l'aspirazione in piccole aliquote controllate, riposizionando la cannula all'interno dello strato sottocutaneo per massimizzare l'efficienza della raccolta.
    NOTA: Mantieni la siringa a temperatura ambiente (20-25 °C) per preservare la vitalità cellulare.
  10. Prelevare circa 20-40 mL di lipoaspirazione, regolati in base alla dimensione del difetto.
  11. Dopo l'aspirazione, rimuovere la cannula e chiudere l'incisione cutanea con una singola sutura in nylon 3-0 o 4-0, oppure utilizzare strisce adesive sterili per incisioni a coltellata più piccole. Applica una medicazione sterile sul sito donatore.
  12. Il lipoaspirato aspirato è inizialmente nella siringa Luer-lock utilizzata per il prelievo. Stacca delicatamente la cannula di raccolta e trasferisci il lipoaspirato in una nuova siringa sterile Luer-lock da 10-20 mL per la lavorazione successiva.
  13. Evita l'esposizione all'aria, alle alte temperature o a forze meccaniche eccessive. Mantenere l'aspirato a temperatura ambiente (20-25 °C) fino alla lavorazione (ad esempio, purificazione, centrifugazione o iniezione).
    NOTA: L'uso di una siringa sterile fresca previene la contaminazione e permette una lavorazione standardizzata. Una maneggiamento delicato preserva la vitalità degli adipociti e della frazione vascolare stromica

4. Trattamento meccanico del micrograsso arricchito con SVF

  1. Lasciare che il lipoaspirato prelevato resti in posizione verticale in siringhe Luer-lock sterili da 10-20 mL per 5 minuti a temperatura ambiente (20-25 °C) per permettere la separazione basata sulla gravità.
  2. Dopo essere in piedi, diventano visibili tre strati distinti (strato superiore di olio [frazione lipidica libera], strato adiposo medio, strato acquoso/sanguigno inferiore).
  3. Utilizzando la tecnica sterile, tieni la siringa verticalmente con l'ugello rivolto verso l'alto e avanza delicatamente lo sturalavandini per espellere lo strato superiore di olio finché non rimane solo la frazione adiposa. Inverti la siringa e rimuovi con cura lo strato acquoso/sanguigno inferiore tramite un lento avanzamento dello stantuffo o aspirazione usando una siringa sterile. Conservare solo la frazione adiposa media per ulteriori lavorazioni.
    NOTA: La rimozione di oli liberi e componenti acquosi riduce i sottoprodotti infiammatori e migliora la consistenza dell'innesto e la vitalità cellulare.
  4. Trasferire la frazione adiposa trattenuta in un piatto sterile in acciaio inossidabile o vetro. Utilizzando forbici chirurgiche sterili, trita delicatamente il tessuto adiposo in frammenti di circa 1-2 mm di dimensione, evitando forze di compressione o taglio eccessive.
  5. Carica il tessuto adiposo tritato in una siringa Luer-lock da 10 mL. Collega questa siringa a una seconda siringa Luer-lock da 10 mL utilizzando un connettore sterile da femmina a femmina Luer-lock.
  6. Emulsifica meccanicamente il tessuto adiposo trasferendolo avanti e indietro tra le due siringhe per 20-30 passaggi a un ritmo costante e moderato. Continua fino a ottenere una consistenza uniforme e iniettabile nei micrograssi.
    NOTA: Il grasso lavorato dovrebbe apparire omogeneamente emulsionato con una minima separazione visibile dell'olio.
  7. Scollega il connettore Luer-lock e trasferisci il micrograsso emulsionato dalla siringa in un tubo centrifuga sterile compatibile con il rotore della centrifuga. Assicurati che i tubi siano bilanciati per volume prima della centrifugazione.
  8. Centrifuga il grasso emulsionato a circa 400 × g per 3 minuti a temperatura ambiente.
  9. Dopo la centrifugazione, si possono osservare tre strati: strato superiore di petrolio, frazione di micrograsso arricchita con SVF medio, strato acquoso/sanguigno inferiore (Figura 1).
  10. Utilizzando una siringa sterile, aspirare con cura solo lo strato medio di micrograsso arricchito con SVF, evitando la contaminazione dagli strati adiacenti.
  11. Far passare la frazione raccolta attraverso un filtro sterile in rete in acciaio inossidabile da 500-1.000 μm per rimuovere detriti fibrosi e particelle di grandi dimensioni. Questo passaggio facilita un'iniezione fluida e minimizza l'ostruzione delle cannule durante la consegna dell'innesto.
  12. Carica il micrograsso arricchito con SVF filtrato in siringhe sterili da 1-5 mL per iniezione immediata.

5. Iniezione nel sito del difetto

  1. Eseguire il debridamento finale della ferita seguito da un'irrigazione approfondita con soluzione salina sterile fino alla rimozione di tutto il tessuto necrotico.
  2. Confermare la prontezza della ferita con la presenza di tessuto granuloso sano e/o sanguinamento puntiato, indicando una perfusione adeguata e una vitalità tissutale.
  3. Utilizzando una tecnica sterile, si introduce una cannula a punta smussata (diametro 1,2-2,0 mm) nel difetto attraverso il bordo della ferita o la pelle intatta adiacente, evitando l'ingresso diretto attraverso la base centrale della ferita quando possibile.
    1. Profondità e piano tissutale: Avanzare la cannula nel piano del tessuto sottocutaneo immediatamente superficiale rispetto al letto della ferita; La posizione intramuscolare è evitata a meno che non sia specificamente indicato dalla profondità del difetto.
    2. Angolo di inserimento: Inserire la cannula a un angolo obliquo basso (circa 10-30°) rispetto alla superficie della ferita per facilitare una deposizione controllata e stratificata.
    3. Posizionamento della cannula: Mantieni la punta della cannula all'interno di piani tissutali ben vascolarizzati per ottimizzare la sopravvivenza dell'innesto e minimizzare l'estrusione.
  4. Iniettare il micrograsso arricchito con SVF utilizzando una tecnica di ventilazione retrograda a più strati, depositando piccole aliquote durante il lento ritiro della cannula.
  5. Distribuire l'innesto uniformemente sulla base della ferita, i margini e il tessuto sottocutaneo circostante per ottenere un otturamento uniforme e massimizzare il contatto con il tessuto vascolarizzato del ricevente.
  6. Regolare il volume di iniezione in base alla dimensione e alla profondità della cavità, tipicamente tra 5 e 12 mL.
  7. L'iniezione viene interrotta una volta che il difetto è adeguatamente riempito e i contorni dei tessuti sono stati ripristinati, garantendo così non correzioni eccessive o tensioni tissutali eccessive.
    NOTA: Evitare di riempire troppo per ridurre il rischio di necrosi grassa, perfusione compromessa o estrusione dell'innesto.
  8. Copri la ferita con garze di vaselina (petrolato), posizionate in contatto non compressivo con la superficie della ferita.
  9. Applicare una medicazione secondaria per proteggere il sito permettendo un drenaggio passivo e minimizzando le forze di taglio sul micrograsso iniettato.

6. Cure postoperatorie e follow-up

  1. Somministrare antibiotici profilattici secondo il protocollo istituzionale, tenendo conto della dimensione della ferita, dello stato di contaminazione e dei fattori di rischio specifici del paziente.
  2. Istruire i pazienti a evitare pressione, taglio o attrito sia nel sito donatore che in quello dell'innesto per 1-2 settimane postoperatorie, al fine di minimizzare lo spostamento dell'innesto e ottimizzare l'integrazione.
  3. Ispezionare la medicazione della ferita ad ogni visita di controllo e sostituire la garza di vaselina (petrolato) secondo necessità. Non rimuovere forzatamente la garza aderente; Permettere il distacco spontaneo durante l'epitelizzazione per prevenire la perturbazione del tessuto in rigenerazione.
  4. Programma visite di controllo a 1, 2, 4 e 12 settimane dopo la procedura.
  5. Acquisire fotografie digitali standardizzate a ogni visita utilizzando una fotocamera fissa alla distanza della ferita, condizioni di illuminazione costanti e un riferimento di scala (ad esempio, righello sterile) posizionato nello stesso piano della ferita. Questo garantisce coerenza per la valutazione longitudinale.
  6. Misurare l'area della ferita utilizzando il software ImageJ (National Institutes of Health (NIH), USA) tramite analisi planimetrica.
    1. Importare fotografie standardizzate di ferite in ImageJ
    2. Calibrare la scala dell'immagine usando il righello di riferimento
    3. Traccia manualmente il margine della ferita usando lo strumento di selezione dei poligoni.
    4. Calcola automaticamente l'area della ferita utilizzando la funzione di misurazione del software.
  7. Per la valutazione degli esiti, definisci epitelizzazione completa come copertura completa della superficie della ferita senza essudato, necessità di medicazione o necessità di intervento secondario.
  8. Annota tutte le complicazioni post-operatorie, incluse infezioni, necrosi adiposa, ematoma, seroma o ritardo nella guarigione della ferita.
    ATTENZIONE: Smaltire tutti i rifiuti biologici in conformità con le normative istituzionali sulla biosicurezza.

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Results

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Un totale di otto pazienti con difetti traumatici dei tessuti molli di tipo cariale sono stati trattati utilizzando il protocollo descritto.

Caratteristiche della coorte

La coorte comprendeva cinque maschi e tre femmine, con un'età media di 51,5 ± 11,7 anni (intervallo 38-74 anni). I difetti si trovavano sull'arto infe...

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Discussion

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Questo studio descrive un protocollo clinicamente applicabile e riproducibile per il trattamento meccanico e il trapianto di micrograssi arricchiti con SVF nella gestione di difetti traumatici dei tessuti molli di tipo cavità traumatica. Il protocollo è pensato per l'implementazione al punto di assistenza in un contesto standard di sala operatoria e dà priorità alla semplicità procedurale, alla sicurezza e alla fattibilità rispetto alla caratterizzazione biologica. In questa piccola seri...

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Disclosures

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Gli autori non hanno conflitti di interesse da dichiarare.

Acknowledgements

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Questo studio è stato supportato dal Programma Speciale Provinciale Provinciale di Innovazione Regionale in Scienza e Tecnologia per la Cooperazione Internazionale nella Scienza e Tecnologia (Grant n. 2023EHA043) e dal Dipartimento di Trauma e Microortopedia dell'Ospedale Zhongnan dell'Università di Wuhan per il Progetto Chiave Nazionale 2025 per la Ricerca Clinica (Progetto n.: 2025LCYJZX-ZD003). Gli autori ringraziano sinceramente il Dr. Qi Baiwen per il suo lavoro precedente che ha ispirato questo studio e per aver fornito preziose indicazioni sulla metodologia clinica. Ringraziamo inoltre i team infermieristici e chirurgici dell'Ospedale Zhongnan per il loro supporto nella cura dei pazienti e nel follow-up.

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
0,9% Soluzione fisiologica normaleBaxter Healthcare (o equivalente)VariUtilizzato come soluzione di base per la soluzione tumescente
Cannula a iniezione con punta smussata (22G e multipli per 50 mm)CONPUVON (figure-materials-1;), CinaDZ 22 e volte; 50-C5Utilizzato per l'iniezione multistrato di micrograssi arricchiti con SVF
Centrifuga Biotecnologia di lunga data (figure-materials-2), CinaLTA-1600Centrifuga clinica capace di generare circa 400 volte o poi; g
Fotocamera digitale / SmartphoneQualsiasiN/AFotografia standardizzata delle ferite durante il follow-up
EpinefrinaFarmacia ospedaliera localeVariAggiunto alla soluzione salina per raggiungere una concentrazione finale di 1:500.000
Software ImageJ (Versione 1.53 o successiva)Istituti Nazionali di Salute (USA)Software liberoUtilizzato per la misurazione planimetrica dell'area della ferita
Cannula per liposuzione (2– 3 mm)Fornitore medico standardN/AUtilizzato per il prelievo di tessuto adiposo dal sito donatore
Connettore Luer-lock (femmina-femmina)Becton Dickinson (o equivalente)VariUtilizzato per l'emulsificazione meccanica da siringa a siringa
Siringa Luer-lock (1, 5, 10, 20 mL)Dispositivi Medici di Hongda (figure-materials-3), CinaNon specificato (offerta istituzionale)Utilizzato per aspirazione, lavorazione meccanica e iniezione
Medicazione sterile / fasciaturaFarmacia ospedalieraN/APer la copertura postoperatoria della ferita
Forbici chirurgiche (sterili)Guangzhou Baitang Medical Devices Co., Ltd.BT00301 (o modello rappresentativo simile)Utilizzato per la frammentazione meccanica del tessuto adiposo
Garza di vaselina (10 cm e volte 10 cm)Huaxi Medical Dressing Co., Ltd. (figure-materials-4), CinaNon specificato (offerta istituzionale)Medicazione non aderente utilizzata per la cura postoperatoria delle ferite

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