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Il protocollo fu approvato dal Comitato Istituzionale per la Ricerca Biomedica sull'Uomo (CIIBH) dell'Instituto Nacional de Ciencias Médicas y Nutrición Salvador Zubiran (INCMNSZ) (REFERENCE 1734). Tutti i partecipanti hanno fornito il consenso informato prima di essere inclusi in questo studio.
Progettazione dello studio e popolazione
Si trattava di uno studio clinico randomizzato, controllato con placebo, in doppio cieco, con un periodo di follow-up di 5 settimane. I lavoratori dell'INCMNSZ sono stati invitati a partecipare allo studio, e tra il 2011 e il 2012 sono stati inclusi volontari sani di età compresa tra 20 e 50 anni senza trattamento antimicrobico nel mese precedente, che avevano accettato e firmato il modulo di consenso informato. I soggetti dello studio sono stati randomizzati 1:1 nel gruppo Gel Sinbiotico con 10,32 g di inulina d'agave come prebiotico e 4 ×10 9 CFU/ g di Lactobacillus acidophilus NCFM e 4 × 109 UFC/g di Bifidobacterium lactis Bi07 al giorno, contenuti in 4 bustine per 5 settimane, e 200 mg di rifaximina due volte al giorno per la prima settimana. Il gruppo del Gel Placebo ha ricevuto 4 confezioni da 15 g di gel placebo, con la stessa presentazione e caratteristiche sensoriali del Gel Sinbiotico, per 5 settimane, e 200 mg di rifaximina due volte al giorno per la prima settimana (Figura 1).
Valutazione clinica
In entrambi i gruppi di studio, i sintomi e l'aspetto delle feci sono stati valutati utilizzando la Scala di Bristol. Sono stati misurati anche peso, altezza e indice di massa corporea (BMI). Un diario è stato utilizzato per valutare il consumo di gel sinbiotico, gel placebo e rifaximina, e per registrare la presenza o l'assenza di effetti collaterali legati all'ingestione del gel.
Consumo di fibra
L'apporto di fibre è stato valutato utilizzando un diario alimentare e un richiamo di 24 ore ogni settimana in entrambi i gruppi.
Aderenza al trattamento
L'aderenza al consumo di rifaximina e gel è stata valutata contando il numero di dosi di rifaximina e il numero di bustine di gel sinbiotici e placebo consumati per partecipante. La presenza di Lactobacillus acidophilus e Bifidobacterium lactis è stata rilevata tramite reazione a catena della polimerasi (PCR).
Valutazione microbiologica delle feci
Alla visita 0 e settimanalmente per 5 visite (6 visite) in ciascun gruppo, i numeri di Lactobacilli, Bifidobatteri ed Enterobatteri sono stati valutati in 120 campioni fecali tramite il metodo del conteggio delle placche. Questo metodo misura le unità formanti colonia (CFU) posizionando campioni diluiti su mezzi solidispecializzati 10. Al primo di ogni visita venivano raccolti campioni di feci.
Per identificare i microrganismi, venivano raccolti e conservati campioni fecali in tubi BBL. La fiala di PBG veniva utilizzata per i batteri anaerobi, e i campioni fecali venivano trasportati in un raffreddatore di polistirolo contenente confezioni di gel congelate per mantenere una bassa temperatura prima della lavorazione in laboratorio. Il tappo della fiala di PBG per la coprocoltura è stato rimosso e il campione di feci è stato raccolto tramite un tampone, assicurando che il tampone fosse impregnato con il campione. L'applicatore veniva quindi inserito in un tubo contenente un mezzo solido di coltura.
Per i batteri anaerobi, le fiale venivano pesate e 5–10 g di feci venivano raccolte con un cucchiaio. Le feci venivano poi mescolate con il contenuto della fiala e sigillate ermeticamente. Per la lavorazione dei campioni, sono state pesate le fiale contenenti i campioni e le buste Stomacher sterili. Il campione veniva svuotato in un sacchetto, centrifugato per 60 secondi, e poi venivano aggiunti 4,5 mL di acqua con peptone allo 0,1%. Successivamente, 500 μL del campione venivano trasferiti in una fiala e vortizzati per omogeneizzare la miscela. Dopo 100 μL del campione sono stati inoculati in duplicata su ciascuna piastra del mezzo selettivo specifico, mezzo Man Rogosa Sharpe (MRS) per i lattobacilli e mezzo DP Beerens con cisteina + cicloeximide (per eliminare la flora indesiderata) per i bifidobatteri, fino alla diluizione 8 (fattore di diluizione 0,1 mL). Per gli enterobatteri, il mezzo MacConkey è stato utilizzato nelle diluizioni 5–8 (fattore di diluizione 0,1 mL), dove le colonie batteriche sono state separate e quantificate11. Ogni polvere di mezzo veniva sciolta in acqua distillata purificata, la soluzione veniva riscaldata fino a ebollizione per garantire la completa dissoluzione e veniva sterilizzata in autoclave a 121 °C per 15 minuti. La miscela veniva raffreddata a 46,5 °C per eseguire la tecnica della piastra di colamento, versando 1 mL per piastra in duplicata in piastre di Petri sterili contenenti 15–20 mL di mezzo di coltura, lasciando che le lastre si solidificassero. I campioni inoculati sono stati incubati a 37 °C in un'atmosfera arricchita di CO2 in sistemi GasPak anaerobici per mantenere condizioni anaerobiche per 24–48 ore. Le unità formative di colonie (CFU) furono contrassegnate con una penna econtate 12. È stata applicata la seguente formula:
CFU/mL = (numero di colonie × fattore di diluizione totale)/volume di coltura placcata (mL)
Identificazione delle caratteristiche morfologiche di lattobacilli e bifidobatteri
La macchia di Gram veniva utilizzata per identificare le caratteristiche morfologiche dell'esemplare. Un campione di colonie batteriche di ciascun ceppo veniva posto su un vetrino al microscopio, colorato con viola cristallina per 1 minuto, e poi risciacquato con acqua distillata. È stata applicata una soluzione di iodio per 1 minuto e poi risciacquata con acqua distillata. Per 10 secondi veniva usata una soluzione di alcol-acetone come decolorante e risciacquata con acqua distillata. Infine, la safranina è stata applicata come contro-tinta per 1 minuto e risciacquata con acqua distillata. Le vetri del microscopio sono state osservate sotto un microscopio ottico utilizzando olio a immersione con un obiettivo 100x.
La quantificazione totale è stata effettuata utilizzando la reazione a catena della polimerasi convenzionale (PCR) su campioni fecali selezionati casualmente da cinque soggetti per gruppo, ottenendo un totale di 60 campioni in 5 settimane. Gli isolati provenienti da mezzi di coltura venivano processati per l'estrazione di materiale genetico. La PCR è stata eseguita utilizzando primer batterici universali per amplificare un frammento del gene 16S rRNA13. I prodotti PCR venivano purificati e sequenziati. Le sequenze sono state verificate e inviate al database GenBank per confermare la presenza di lattobacilli e ceppi bifidobatterici isolati dai campioni fecali.
Analisi statistica
I dati sono presentati come frequenze assolute e relative o mediana (p25-P75). La gravità cumulativa dei sintomi è stata determinata utilizzando il punteggio di Likert (lieve, 1; moderato, 2; grave, 3) a ogni follow-up. I confronti tra gruppi sono stati effettuati utilizzando il test della somma dei rangi di Wilcoxon e il chi-quadrato o test esatto di Fisher. Confronti intra-gruppo tra le settimane 0 e 5 sono stati effettuati utilizzando il test di Friedman e confronti multipli con Durbin-Conover. La significanza statistica è stata fissata a P < 0,05.