Tutte le procedure che hanno coinvolto campioni di tessuto umano e campioni clinici in questo studio sono state eseguite in conformità con le linee guida istituzionali e approvate dal Comitato Etico dell'Ospedale Oncologico di Jilin (Approvazione etica n. 202507-002-01). Il consenso informato scritto è stato ottenuto da tutti i partecipanti o dai loro tutori legali prima della raccolta del campione. Campioni di sangue periferico (10 mL per paziente) sono stati raccolti da 19 pazienti con cancro polmonare non a piccole cellule avanzato (NSCLC) presso il Jilin Cancer Hospital, ottenendo un totale di 133 campioni di RNA. Per garantire la sicurezza del laboratorio, tutte le operazioni che coinvolgevano sostanze chimiche pericolose venivano eseguite in un armadietto di sicurezza biologica.
Informazioni dettagliate sugli strumenti, reagenti e consumabili utilizzati nell'esperimento sono state fornite nella Tabella dei Materiali.
Isolamento del PBMC
I campioni di sangue periferico sono stati processati per l'isolamento PBMC entro 2 ore dalla prelievo. I PBMC sono stati isolati e purificati tramite centrifugazione a gradiente di densità Ficoll-Paque a 400 × g per 25 minuti a temperatura ambiente con il freno disabilitato. Dopo la centrifugazione, lo strato linfociti bianchi lattiginosi intermedi (contenente PBMC) è stato aspiratocon cura 16. È importante sottolineare che abbiamo standardizzato rigorosamente la concentrazione di input PBMC per ogni campione e per ogni gruppo, per garantire numeri di cellule coerenti in tutte le condizioni sperimentali, minimizzando così la variazione causata dall'input e dall'elaborazione delle cellule. Questo garantisce che le differenze osservate riflettano effetti reali di diversi metodi di conservazione piuttosto che la variabilità tecnica. Per ogni paziente, i PBMC isolati sono stati suddivisi in 7 tube: un tubo è stato utilizzato per l'estrazione immediata di RNA e sono state valutate concentrazione, purezza e integrità. I restanti sei tubi sono stati criopconservati a una velocità di raffreddamento di -1 °C/min: tre sono stati trattati con 1 mL di 90% FBS + 10% DMSO, e gli altri tre con 1 mL di TRIzol, seguiti da una conservazione a -80 °C. L'estrazione e la valutazione della qualità dell'RNA sono state effettuate dopo 1, 3 e 6 mesi di conservazione congelata.
Estrazione di RNA
I campioni venivano rimossi da una stoccaggio a -80 °C e scongelati a 4 °C fino a17 fino a 17 fino a essere completamente scongelati. I campioni conservati con soluzione di crioconservazione 90% FBS + 10% DMSO o TRIzol sono stati lavati una volta con PBS, centrifugati a 200 × g per 5 minuti a 4 °C, e il surnatante è stato scartato per trattenere il pellet cellulare. L'RNA totale è stato estratto utilizzando TRIzol. In particolare, il reagente TRIzol veniva aggiunto al tubo della microcentrifuga contenente il campione processato, miscelato per inversione e incubato a temperatura ambiente per 5 minuti per garantire una lisi completa. Successivamente, sono stati aggiunti 200 μL di cloroformio, mescolati accuratamente tramite scuotimento e incubati a temperatura ambiente per 15 minuti. Dopo la centrifugazione a 2400 × g per 15 minuti a 4 °C, la fase acquosa superiore è stata atmosfericata con cura e trasferita in un nuovo tubo di Eppendorf. È stato poi aggiunto isopropanolo (0,5 mL), mescolato bene e incubato a temperatura ambiente per 5–10 minuti. Dopo centrifugazione a 2400 × g per 10 minuti a 4 °C, il sovrantantante veniva scartato, lasciando il precipitato di RNA sul fondo del tubo.
Il precipitato è stato risospeso al 75% di etanolo (1 mL) con lieve scuotitura, seguito da centrifugazione a 1600 × g per 5 minuti a 4 °C. Il surnatante veniva scartato e il pellet di RNA veniva lasciato asciugare all'aria a temperatura ambiente per 5–10 minuti. Infine, i campioni di RNA sono stati disciolti in acqua trattata con DEPC da 50 μL e incubati in un bagno d'acqua a 55–60 °C per 5–10 minutie 18 minuti. Rilevamento della concentrazione e purezza dell'RNA. La concentrazione e la purezza dell'RNA sono state misurate utilizzando il metodo dell'assorbanza ultravioletta con uno spettrofotometro UV-Vis micro-volume multi-campione (intervallo di misurazione: 2,5–3000 ng/μL). La concentrazione di RNA è stata determinata in base al valore di assorbanza a 260 nm, mentre la purezza dell'RNA è stata valutata utilizzando il rapporto A260/A280. Fu lanciato il software di misurazione; "Nucleic Acid" fu cliccato sull'interfaccia principale. La piattaforma di rilevamento è stata risciacquata due volte con acqua doppiamente distillata, poi 1,5 μL del campione di RNA è stato pipettato sopra. È stato selezionato l'RNA-40 per il tipo di campione, è stato cliccato "Measure" e sono stati registrati i valori di concentrazione e purezza di A260/280. Un rapporto A260/A280 tra 1,9 e 2,1 indicava un'elevata purezza dell'RNA, mentre valori inferiori a 1,8 suggerivano contaminazione proteica, e valori superiori a 2,2 indicavano potenziale degradazione dell'RNA o isotiocianatoresiduo 19.
Rilevamento dell'integrità dell'RNA
L'integrità dell'RNA (RIN) è stata valutata utilizzando un bioanalizzatore elettroforetico microfluidico automatizzato e un kit di rilevamento. La RIN varia da 1 a 10, con 1 che indica RNA altamente degradato e 10 che indica RNA intatto. Per l'analisi, 1,2 μL di RNA veniva inserito in un tubo PCR, denaturato termicamente a 70 °C per 2 minuti tramite un termociclatore, e immediatamente posto sul ghiaccio. Successivamente, 1 μL di RNA denaturato è stato aggiunto ai pozzi di rilevamento del chip per l'analisi20. Il software veniva avviato, selezionato "Assay" e "RNA" selezionato dal menu a tendina. Il programma "Eukaryote Total RNA Nano Series II.xsy" è stato selezionato in base al reagente utilizzato. "Start" fu cliccato per avviare la rilevazione. Dopo circa 10 minuti, il numero di picco e l'altezza massima della scala sono stati controllati per verificare la normalità.
Metodi statistici
Sono stati eseguiti test di normalità per tutti i dati. I dati normalmente distribuiti sono stati espressi come media ± deviazione standard (SD), mentre i dati non normalmente distribuiti sono stati espressi come mediana (intervallo interquartile, IQR). I confronti tra due gruppi sono stati analizzati utilizzando il test t accoppiato per dati normalmente distribuiti e il test non parametrico a campioni correlati per dati non normalmente distribuiti. Per confronti tra tre o più gruppi, è stata utilizzata l'analisi di varianza a misure ripetute per dati normalmente distribuiti, mentre il test non parametrico a campioni correlati è stato utilizzato per dati non normalmente distribuiti. Tutte le analisi statistiche sono state effettuate utilizzando SPSS 19.0 e GraphPad Prism 9.*P < 0,05, **P < 0,01, ***P < 0,001, ****P < 0,0001.