$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Tutte le procedure sono state approvate dal Comitato Etico Animale della Guangzhou Miles Biotechnology Co., Ltd., il cui numero di approvazione è IACUC-MIS2023045.
Istituzione del Modello SUI Rat
Un totale di 20 ratti femmine di Sprague-Dawley (SD), di età compresa tra 6 e 8 settimane, sono stati utilizzati per creare un modello di lesione del pavimento pelvico, simulando il parto. Per indurre la dilatazione vaginale con palloncino (VBD), i ratti sono stati anestetizzati tramite iniezione intraperitoneale di ketamina (75 mg/kg) e xilazina (10 mg/kg). Un catetere di Foley a 10 Fr sgonfiato è stato inserito con cura nel canale vaginale medio, e poi il palloncino è stato gonfiato con 3 mL di soluzione salina sterile. Il palloncino è stato mantenuto in posizione per 4 ore per replicare lo stretching meccanico prolungato dei muscoli del pavimento pelvico e la compressione del nervo pudendo associata al travaglio. Il periodo di modellazione è stato di 7 giorni. All'ottavo giorno, 6 animali sono stati selezionati casualmente per i test urodinamici.
Il successo dell'istituzione del modello è stato verificato tramite test urodinamici e la misurazione dei livelli di lattato deidrogenasi sierico (LDH), che fungono da indicatori di lesioni muscolari. Dopo aver confermato il successo della modellazione, i ratti SUI sono stati divisi casualmente in un gruppo a finta operazione e un gruppo di trattamento, con cinque ratti in ciascun gruppo. Contemporaneamente, sono stati forniti cinque ratti SD normali come gruppo di controllo. Nel gruppo finto, gli aghi di agopuntura sono stati inseriti ai punti di agopuntura BL23 (situati a 6 mm laterali al processo spinoso L2) e GB30 (situati a posteriore all'articolazione dell'anca) senza alcuna stimolazione elettrica. Nel gruppo dell'elettroagopuntura, gli stessi punti di agopuntura sono stati stimolati utilizzando un dispositivo elettroagopuntura, seguendo il metodo clinico standard. Il dispositivo di elettroagopuntura era impostato su una forma d'onda scarsa-densa a 1 Hz a 2 V. Ogni intervento durava 30 minuti al giorno per 10 giorni consecutivi. Tutti gli animali venivano monitorati quotidianamente e ospitati in condizioni standard di laboratorio. Al termine dell'esperimento, sono stati effettuati test urodinamici sugli animali di ciascun gruppo. Successivamente, ogni gruppo di ratti è stato anestetizzato con una miscela di isoflurano al 3% e ossigeno a 1,0 L/min. Dopo che i ratti persero conoscenza, la concentrazione di isoflurano fu regolata al 5% e i campioni furono prelevati dopo la morte dei ratti per insufficienza respiratoria.
Test urodinamici
Dopo l'anestesia indotta da isoflurano, gli animali sono stati posizionati in posizione supina e fissati. Un'incisione nella parte mediana della parte inferiore dell'addome ha esposto lavescica 18. Un catetere epidurale è stato impiantato attraverso una fistola di 2 mm di diametro nella cupola vescicale, avanzato di 0,5–1,0 cm nel lume e fissato con una sutura 11-0 tramite la tecnica del cordone della borsa. Il catetere era collegato a un sistema di monitoraggio della pressione e perfuso con soluzione salina a 37 °C tinta con blu di metilene a 10 mL/h tramite pompa a microsiringa, con monitoraggio concomitante della pressione intravesicale. La capacità massima della vescica è stata calcolata come il prodotto della durata dell'infusione (l'intervallo tra l'inizio dell'infusione e la prima goccia del liquido uretrale) e la portata di flusso. La pressione del punto di perdita (LPP) è stata determinata registrando il picco della pressione intravesicale immediatamente dopo il rilascio brusco della compressione addominale applicata manualmente. Tutti i parametri sono stati acquisiti utilizzando un sistema di analisi urodinamica, con misurazioni triplicate per metrica. Tutti i campioni sono stati codificati e analizzati casualmente in modo single-blind da tre operatori indipendenti, ciascuno dei quali ha eseguito una singola misurazione. I risultati delle tre misurazioni indipendenti sono stati utilizzati per l'analisi statistica.
Misurare il livello di lattato deidrogenasi (LDH) sierico
Al settimo giorno postoperatorio, è stato prelevato circa 1 mL di sangue totale dalla vena caudale di ciascun ratto. I campioni raccolti sono stati lasciati a temperatura ambiente per 1 ora per permettere la formazione di coaguli, dopo di che sono stati centrifugati a 2.000 × g per 15 minuti. Circa 0,5 mL di sovrantantante sono stati accuratamente raccolti come siero. I livelli di lattato deidrogenasi (LDH) sierici sono stati determinati quantitativamente utilizzando un kit di analisi con D-lattato deidrogenasi secondo i protocolli del produttore.
Profilazione proteomica e analisi bioinformatica
Un'analisi proteomica quantitativa è stata condotta su tessuti muscolari lisci uretrali isolati da gruppi modello e terapeutico. Le proteine sono state identificate dai dati grezzi della spettrometria di massa utilizzando il Proteome Discoverer 2.4 con una soglia di tasso di falsa scoperta dell'1%. L'analisi bioinformatica delle proteine differenzialmente espresse (DEP) è stata effettuata utilizzando pacchetti basati su R: l'analisi di espressione differenziale è stata condotta utilizzando il pacchetto limma (|log2FC| > 1, aggiustato p < 0,05), l'analisi dell'arricchimento dell'ontologia genica (GO) e l'analisi delle vie della Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes (KEGG) sono state effettuate utilizzando il pacchetto clusterProfiler, con termini/percorsi arricchiti considerati significativi a p < aggiustato 0,05 e valore q < 0,2; Il clustering gerarchico è stato visualizzato utilizzando il pacchetto pheatmap. È stata costruita una rete di interazione proteina-proteina (PPI) utilizzando il database STRING (v11.5, punteggio di confidenza > 0.7).
Colorazione dell'ematossilina-eosina
I tessuti muscolari lisci del ratto erano fissati con il 4% di paraformaldeide e incorporati nella paraffina. Le sezioni seriali (spessore 5 μm) venivano preparate utilizzando un microtomo e colorate con un kit di colorazione standardizzato H&E. La valutazione morfologica è stata effettuata utilizzando microscopia a campo chiaro con ingrandimenti 40×–400×, concentrandosi sull'integrità strutturale del tessuto muscolare, sull'infiltrazione delle cellule infiammatorie e sulla rimodellazione della matrice.
Colorazione tricroma di Masson
Secondo il protocollo sperimentale approvato dal comitato etico, abbiamo raccolto campioni dagli animali al decimo giorno di trattamento. I tessuti muscolari del ratto erano fissati con paraformaldeide al 4% e paraffina incorporata. Le sezioni seriali (spessore 5 μm) venivano tagliate utilizzando un microtomo rotante. Le sezioni deparaffinate erano colorate con il tricromo di Masson. Le sezioni colorate venivano fotografate al microscopio a campo chiaro con un ingrandimento del 100×.
Western blotting
Le proteine totali sono state estratte dal tessuto muscolare liscio del ratto tramite interruzione meccanica nel tampone di lisi RIPA mantenuto a bassa temperatura e integrato con inibitori della proteasi. I lisati sono stati chiarificati tramite centrifugazione a 10.000 × g per 15 minuti a 4 °C, e il surnatante contenente proteine è stato raccolto per l'analisi. La concentrazione proteica è stata determinata con un saggio sull'acido bicinconinico (BCA) utilizzando albumina sierica bovina come standard di calibrazione. Quantità uguali di proteine (30 μg) sono state caricate su gel SDS–poliacrilammide al 10% o 12% e separate in condizioni di riduzione. Dopo l'elettroforesi, le proteine sono state trasferite sulle membrane PVDF con una dimensione dei pori di 0,22 μm. Le membrane sono state incubate in BSA al 3% per 1 ora a temperatura ambiente per bloccare i siti di legame aspecifici, seguite da un'incubazione notturna a 4 °C con anticorpi primari che riconoscevano GAPDH, MYL1, TNNI2, TNNT1, TNNT3 e MYLPF. Dopo aver lavato tre volte con TBST, sono stati applicati anticorpi secondari marcati con HRP per 2 ore a temperatura ambiente. Il rilevamento del segnale veniva eseguito utilizzando un substrato chemiluminescente e le immagini venivano catturate con un sistema di imaging a luminescenza. La quantificazione dell'espressione proteica è stata effettuata tramite analisi densitometrica, con GAPDH come riferimento interno.
PCR quantitativa in tempo reale (qPCR)
I campioni di tessuto sono stati lisati utilizzando un reagente di estrazione totale di RNA e l'RNA è stato isolato seguendo le istruzioni del produttore fornite con il kit di estrazione RNA. I primer specifici per geni sono stati progettati utilizzando software dedicato (Tabella 1) e la loro specificità è stata verificata tramite analisi BLAST (omologia ≥18 bp, Tm = 58–62 °C). L'RNA veniva poi trascritto inversamente utilizzando un kit di trascrizione inversa, e l'espressione del gene bersaglio veniva rilevata tramite un kit di rilevamento SYBR Green qPCR.
Analisi statistica
I confronti statistici tra due gruppi sono stati effettuati utilizzando un test t a campioni indipendenti, mentre le differenze tra più gruppi sono state valutate tramite ANOVA unidirezionale seguita da analisi post hoc di Bonferroni. I dati sono espressi come media ± deviazione standard (SD) o media ± errore standard della media (SEM). Un valore di p < 0,05 è stato considerato indicativo di significatività statistica.