Tutte le procedure rispettavano le normative istituzionali e nazionali e sono state approvate dal Comitato Etico dell'Ospedale Popolo di Xingtai (n. 2024-124). Il requisito del consenso informato scritto è stato esentato perché venivano utilizzati regolarmente dati clinici raccolti e campioni residui. Tutti i dati sono stati anonimizzati prima dell'analisi.
Disegno dello studio, ambientazione e schema generale
Questo studio è stato condotto come una coorte osservazionale a centro singolo progettata per valutare le implicazioni cliniche del MMP-12 siero e del tumore CDH13, singolarmente e in combinazione, per la sottotipizzazione molecolare del cancro polmonare e la terapia personalizzata. Lo studio è stato condotto presso l'Ospedale Popolare di Xingtai. Sono stati identificati i pazienti idonei gestiti tra gennaio 2021 e giugno 2022, e sono stati iscritti 262 pazienti consecutivi che soddisfacevano i criteri di inclusione ed esclusione predefiniti.
Il flusso di lavoro complessivo dello studio è illustrato nella Figura 1. Lo schema rappresenta l'intero processo dall'identificazione del paziente all'analisi, inclusi lo screening e l'iscrizione del paziente, la caratterizzazione clinicopatologica di base e la profilazione molecolare derivata da test clinici di routine, la raccolta e l'elaborazione del siero pre-trattamento, la preparazione del tessuto tumorale per l'immunoistochimica CDH13, la quantificazione del MMP-12 sierico, il punteggio immunoreattivo del CDH13, la classificazione della terapia di prima linea e dei successivi percorsi terapeutici, e l'esito longitudinale accertamento, inclusa la risposta al trattamento, la sopravvivenza senza progressione e la sopravvivenza complessiva. Lo schema distingue le analisi diagnostiche e di sottotipizzazione molecolare dalle analisi di trattamento e degli esiti e indica i momenti in cui sono stati raccolti i biocampioni, generati i risultati molecolari, avviata la terapia e effettuate valutazioni di follow-up.
Screening dei partecipanti, criteri di idoneità e astrazione dei dati clinici
I pazienti potenzialmente idonei sono stati identificati dal sistema informativo ospedaliero e dal registro patologico durante la finestra di iscrizione predefinita (gennaio 2021 - giugno 2022). Il cancro primario al polmone è stato confermato tramite istopatologia, integrato da revisioni cliniche multidisciplinari quando necessario. Sono stati iscritti pazienti adulti consecutivi che soddisfacevano tutti i criteri di idoneità. I criteri di inclusione includevano il cancro polmonare primario istilogicamente confermato, la disponibilità di un campione siero pre-trattamento prelevato prima dell'inizio di qualsiasi terapia antitumorale (e prima dell'intervento chirurgico nei pazienti sottoposti a resezione iniziale), la disponibilità di tessuto tumorale sufficiente per l'immunoistochimica CDH13 e la disponibilità di informazioni sui sottotipi molecolari generate come parte delle cure cliniche di routine. Sono stati esclusi pazienti con una storia documentata di un altro tumore maligno prima dell'iscrizione, pazienti con volume siero insufficiente o integrità del campione compromessa, pazienti senza tessuto tumorale valutabile per la valutazione del CDH13 e pazienti che hanno ricevuto terapia sistemica anticancro prima del prelievo di sangue basale.
I dati clinicopatologici e terapeutici sono stati estratti dalle cartelle cliniche elettroniche utilizzando un modulo standardizzato di report di caso con definizioni di variabili predefinite e regole di codifica. Le variabili registrate includevano demografie (età e sesso), esposizione al fumo, stato di performance dell'Eastern Cooperative Oncology Group (ECOG), comorbidità, risultati di imaging basali, sottotipo istologico, stadio tumore-nododo-metastasi (TNM) (secondo il sistema di stadiazione utilizzato nella pratica clinica di routine durante il periodo dello studio), parametri di laboratorio di base e informazioni dettagliate sul trattamento (inclusi il regime di prima linea, date di inizio, modifiche al dosaggio e transizioni del trattamento). L'esposizione al fumo è stata quantificata in anni-confezioni come segue: anni-confezione = (sigarette al giorno ÷ 20) × anni fumati. Quando la storia del fumo è incompleta o incoerente tra i registri, la variabile fumo è stata classificata come sconosciuta e la fonte è stata documentata come discrepanza nel registro di astrazione; La mancanza è stata gestita secondo il piano di analisi statistica predefinito.
Raccolta, lavorazione e conservazione degli esemplari
Il sangue venoso periferico è stato raccolto al punto di partenza prima dell'inizio di qualsiasi terapia antitumorale. Il siero è stato separato tramite centrifugazione a 1.500 × g per 10 minuti a temperatura ambiente. Il soprandanante siero è stato trasferito in crioviali a basso legame senza disturbare lo strato cellulare. Il siero veniva aliquotato in porzioni da 200–500 μL per minimizzare i cicli di congelamento-disgelo, e le aliquote venivano conservate a −80 °C fino all'analisi in batch. È stato registrato l'intervallo tra la raccolta del sangue e la congelazione per ciascun campione, e sono stati esclusi i campioni con un tempo di raccolta fino al congelamento superiore a 2 ore.
Procedure pre-analitiche pre-specifiche di controllo qualità sono state applicate documentando emolisi e lipemia durante la lavorazione. I campioni visibilmente emolitizzati sono stati esclusi dalla quantificazione ELISA. Le aliquote sieriche sono state scongelate sul ghiaccio immediatamente prima del saggio, mescolate con inversione gentile e centrifugate a 2.000 × g per 5 minuti per rimuovere le particelle quando necessario. Sono state evitate agitazioni vigorose e vortici per prevenire la formazione di bolle e artefatti ottici durante le misurazioni di assorbimento.
Acquisizione e preparazione del tessuto tumorale
È stato ottenuto tessuto tumorale da procedure diagnostiche di routine (biopsia, broncoscopia, biopsia con ago del nucleo o resezione chirurgica). Il tessuto è stato fissato in formalina neutra tamponata secondo la prassi patologica standard e incorporato nella paraffina. Le sezioni (3–4 μm) sono state preparate su vetrini carichi per l'immunoistochimica. Le vetrine non colorate venivano conservate in un ambiente asciutto a temperatura ambiente e colorate entro un intervallo predefinito per minimizzare la degradazione dell'antigene. È stato mantenuto un registro della catena di custodia che collegava gli identificatori dei campioni ai codici degli studi de-identificati. Il patologo che ha eseguito il punteggio CDH13 è stato cieco rispetto ai valori sierici di MMP-12, al sottotipo molecolare, al trattamento e agli esiti.
Quantificazione del MMP-12 sirico tramite saggio immunosorbente legato agli enzimi (ELISA)
Il sangue venoso periferico è stato raccolto prima di qualsiasi terapia antitumorale, idealmente entro 7 giorni prima della biopsia o dell'inizio del trattamento. Il siero MMP-12 è stato misurato utilizzando un kit MMP-12 ELISA umano commerciale. Ogni aliquota sieroica veniva scongelata una volta sul ghiaccio, mescolata delicatamente e analizzata in duplicata secondo le istruzioni del kit. Su ciascuna piastra veniva generata una curva standard tramite diluizioni seriali dello standard ricombinante fornito, e l'assorbanza veniva letta a 450 nm con una correzione di riferimento tramite un lettore di microplacche. Le concentrazioni sono state calcolate adattando una curva standard di regressione logistica a quattro parametri. Per garantire la robustezza analitica, su ciascuna lastra sono stati inclusi sari interni di controllo qualità (QC) e monitorati per la precisione intra-saggio e inter-saggio (coefficienti di variazione del bersaglio coerenti con la validazione del saggio). Se i risultati scendevano sotto il limite inferiore di quantificazione, metà di quel limite veniva assegnata all'analisi statistica; Se i risultati superavano il limite superiore, la misurazione veniva ripetuta dopo la diluizione appropriata. Per minimizzare gli effetti di batch, i campioni venivano allocati casualmente tra le lastre e su ciascuna lastra era incluso un set identico di siero QC per monitorare la variabilità tra placche. Il personale di laboratorio che eseguiva ELISA era cieco rispetto al raggruppamento clinico e agli esiti.
Immunoistochimica tumorale CDH13 e punteggio immunoreattivo
L'immunoistochimica del CDH13 è stata eseguita su sezioni tumorali fissate in formalina, immerse in paraffina, utilizzando un anticorpo primario anti-CDH13 validato. I complessi antigene–anticorpi sono stati individuati con un sistema di rilevamento basato su polimeri e la colorazione è stata visualizzata con 3,3′-diaminobenzidina (DAB). Un flusso di lavoro di colorazione identico è stato applicato a tutti i campioni di studio; Le diapositive venivano processate in lotti e venivano inclusi i controlli appropriati.
I blocchi di paraffina venivano sezionati a 3–4 μm, deparaffinizzati in xilene e reidratati tramite etanolo graduato in acqua distillata. Il recupero dell'epitopo indotto dal calore è stato eseguito in tampone di citrato (10 mM, pH 6,0) utilizzando un forno a microonde a 95–100 °C per 15 minuti, seguito dal raffreddamento a temperatura ambiente per 20 minuti. L'attività endogena della perossidasi è stata stemperata con perossido di idrogeno al 3% per 10 minuti a temperatura ambiente, e il blocco proteico è stato eseguito utilizzando soluzione sirica bloccante normale per 20 minuti a temperatura ambiente. Le sezioni sono state incubate con l'anticorpo primario anti-CDH13 durante la notte a 4 °C. Dopo il lavaggio, il reagente secondario di rilevamento a base di polimero è stato applicato per 20–30 minuti a temperatura ambiente, seguito dalla visualizzazione con cromogeno 3,3′-DAB per 3–5 minuti sotto monitoraggio microscopico. Le sezioni sono state controcolorate con ematossilina, disidratate tramite etanolo graduato, ripulite con xilene e montate con un mezzo di montaggio permanente.
I controlli interni di qualità erano inclusi in ogni prova di colorazione. Una sezione tessutale nota per CDH13 positiva è stata processata in parallelo come controllo positivo, mentre l'anticorpo primario è stato omesso nel controllo negativo. Una corsa è stata accettata solo quando il controllo positivo ha mostrato il pattern di colorazione atteso con intensità appropriata, e il controllo negativo non ha mostrato colorazioni specifiche. La colorazione veniva ripetuta per esecuzioni con background eccessivo, prestazioni di controllo fallite o con un segnale non specifico che comprometteva l'interpretazione.
L'espressione di CDH13 è stata quantificata utilizzando un punteggio immunoreattivo (IRS) derivato dall'intensità della colorazione e dalla proporzione di cellule tumorali positive. Due patologi formati hanno valutato tutte le vetrine indipendentemente mentre erano ciechi rispetto alle misurazioni dei biomarcatori sieri, al sottotipo molecolare, al trattamento e agli esiti. I punteggi discrepanti sono stati risolti tramite revisione congiunta a un microscopio multitesta e l'IRS giudicato è stato registrato. L'intensità della colorazione è stata assegnata come 0 (nessuna colorazione), 1 (debole), 2 (moderata) o 3 (forte). La proporzione di cellule tumorali positive è stata assegnata come 0 (0%), 1 (1–10%), 2 (11–50%), 3 (51–80%) o 4 (81–100%). L'IRS è stato calcolato come segue: IRS = punteggio di intensità × punteggio proporzionale. I valori dell'IRS variavano da 0 a 12. La bassa espressione di CDH13 è stata definita come IRS ≤ 3, basandosi su una soglia comunemente utilizzata per la valutazione immunoreattiva. L'IRS è stato mantenuto sia come variabile continua sia come categoria dicotomica per analisi a valle, inclusi confronti di sottogruppi e modellazione combinata di biomarcatori. L'accordo tra osservatori è stato valutato in un campione casuale predefinito comprendente il 30% dei casi utilizzando una statistica kappa ponderata, e la procedura di campionamento, la stima dell'accordo e le decisioni di valutazione sono state documentate in una traccia di audit.
Sottotipizzazione molecolare e classificazione dei trattamenti
Le informazioni sui sottotipi molecolari sono state ottenute tramite test clinici di routine effettuati su tessuto tumorale diagnostico. I risultati sono stati generati da saghi clinicamente validati implementati nelle cure standard, inclusi test mirati basati su PCR, panel di sequenziamento di nuova generazione mirati, immunoistochimica e ibridazione fluorescente in situ. Per ogni paziente sono stati registrati il tipo di saggio, la fonte del campione, la dichiarazione di adeguatezza del campione e la data del rapporto. I pazienti sono stati classificati secondo lo stato di alterazione azionabile del driver, inclusi mutazioni attivanti EGFR, riarrangiamenti ALK, riarrangiamenti ROS1, mutazioni KRAS, mutazioni BRAF, alterazioni saltanti dell'esone MET 14, riarrangiamenti RET, alterazioni ERBB2 e fusioni NTRK. Il punteggio proporzionale tumorale di PD-L1 è stato registrato dove eseguito è stato eseguito e l'espressione di PD-L1 è stata categorizzata in base agli strati utilizzati nella pratica di routine durante il periodo di studio. Tutte le categorie di sottotipizzazione molecolare sono state predefinite prima dell'analisi. Quando è stata riportata più di una modifica agibile, i pazienti sono stati assegnati secondo una regola di classificazione gerarchica predefinita che dà priorità alle alterazioni con implicazioni terapeutiche dirette al genotipo stabilite nel seguente ordine: mutazioni EGFR, riarrangiamenti ALK, riarrangiamenti ROS1, mutazioni BRAF, alterazioni saltanti dell'esone MET 14, riarrangiamenti RET, alterazioni ERBB2, fusioni NTRK e mutazioni KRAS.
Le informazioni sul trattamento sono state estrate dalle cartelle cliniche, inclusi il regime di prima linea, le date di inizio e interruzione e le successive linee di terapia. La gestione iniziale è stata classificata in categorie di trattamento mutuamente esclusive definite a priori: terapia mirata diretta al genotipo, terapia basata su inibitori di checkpoint immunitari, terapia basata su chemioterapia e gestione multimodale che incorpora chirurgia con trattamento sistemico perioperatorio, quando applicabile. La data indice è stata definita come la data di inizio della terapia sistemica di prima linea; Per i pazienti gestiti con resezione iniziale, la data indice era la data dell'intervento, e la terapia sistemica successiva è stata classificata come adiuvante secondo la cartella clinica. Per le analisi riguardanti la terapia personalizzata, i pazienti sono stati stratificati congiuntamente per sottotipo molecolare e categoria di trattamento, e le concentrazioni sieriche di MMP-12 e l'espressione tumorale di CDH13 sono state confrontate tra malattia con e negativa per guida, e tra gruppi di trattamento basati su terapia mirata e inibitori di checkpoint immunitari.
Definizioni degli esiti e follow-up
La data indice è stata definita come la data di inizio della prima linea della terapia antitumorale. Per i pazienti gestiti con resezione chirurgica iniziale, la data indice era definita come la data dell'intervento; la successiva terapia sistemica è stata classificata come adiuvante o palliativa secondo la cartella clinica. Ogni paziente è stato seguito dalla data indice fino alla morte, dalla data dell'ultimo contatto confermato o dalla data di censura amministrativa, a seconda di quale si verifichi per prima. La durata del follow-up è stata registrata in mesi e, per ogni endpoint, sono stati mantenuti l'indicatore dell'evento e la data corrispondente dell'evento o della censura. Gli esiti sono stati accertati tramite astrazione strutturata della cartella clinica elettronica, inclusi rapporti radiologici, documentazione della clinica oncologica, cartelle cliniche di ricovero e follow-up telefonico quando necessario. È stato utilizzato un modulo di report di caso predefinito e sono state applicate regole uniformi per la gerarchia delle sorgenti. Quando date o classificazioni differivano tra i registri, le discrepanze venivano risolte dando priorità ai rapporti radiologici contemporanei e alle note decisionali del trattamento; il valore finale accertato e le sue fonti a supporto furono documentati. È stato mantenuto un registro di follow-up che registrava date di imaging, transizioni di trattamento, ospedalizzazioni e tentativi di contatto per minimizzare le perdite ai follow-up e garantire la tracciabilità.
La risposta tumorale è stata valutata nei pazienti con malattia misurabile secondo la versione 1.1 di RECIST. La migliore risposta complessiva è stata classificata come risposta completa, risposta parziale, malattia stabile o malattia progressiva. Il tasso di risposta oggettiva è stato definito come risposta completa o parziale, e il tasso di controllo della malattia come risposta completa, risposta parziale o malattia stabile. Le date di risposta e progressione sono state assegnate sulla base delle prove documentate più antiche.
La sopravvivenza senza progressione (PFS) è stata definita come l'intervallo dalla data indice fino alla prima manifestazione di progressione della malattia o morte per qualsiasi causa, a seconda di quale si verifichi per prima. La progressione è stata determinata principalmente dai referti radiologici che documentano la progressione secondo RECIST 1.1. Quando la radiologia non è disponibile al momento del deterioramento clinico, la progressione documentata dal clinico è stata accettata se è esplicitamente collegata al peggioramento del carico tumorale e provoca un cambiamento nella gestione degli antitumorali. I pazienti senza evento alla data dell'ultima valutazione oggettiva sono stati censurati, confermando l'assenza di progressione. Se una nuova linea di terapia sistemica veniva avviata senza documentazione esplicita della progressione, veniva esaminata l'imaging e veniva fornita la documentazione clinica contemporanea. Se la progressione non poteva essere confermata, i pazienti venivano censurati all'ultima valutazione radiografica prima del cambiamento di trattamento e la regola decisionale applicata veniva registrata.
La sopravvivenza complessiva (OS) è stata definita come l'intervallo dalla data indice fino alla morte per qualsiasi causa. Lo stato vitale è stato accertato utilizzando cartelle cliniche ospedaliere e note di follow-up ambulatoriali, integrate da una conferma telefonica strutturata quando necessario. La data del decesso veniva registrata come documentata nella cartella clinica o, quando non disponibile, come data confermata dalla famiglia durante il contatto di follow-up, con la documentazione di supporto registrata nel registro di follow-up. I pazienti che erano vivi alla data dell'ultimo contatto confermato venivano censurati.
È stato implementato un flusso di lavoro standardizzato di follow-up, allineato ai percorsi di cura di routine. Durante la terapia sistemica attiva, sono state documentate valutazioni cliniche a ciascun ciclo di trattamento e sono state registrate rivalutazioni radiografiche a intervalli regolari determinate dal protocollo clinico, con modalità di imaging e data registrate per ciascuna valutazione. Dopo il completamento della terapia di prima linea o durante la sorveglianza post-operatoria, venivano registrate visite di follow-up e valutazioni di imaging secondo il calendario istituzionale. Quando il follow-up in presenza non poteva essere completato, è stato effettuato un controllo telefonico strutturato per confermare la continuazione del trattamento, documentare i ricoveri a intervalli, confermare lo stato della malattia come documentato tramite immagini esterne, dove applicabile, e confermare lo stato di sopravvivenza. Tutte le visite mancate, i tentativi irraggiungibili e le ragioni per l'interruzione del follow-up sono stati documentati. Prima di classificare un paziente come scomparso per il follow-up, è stato tentato il contatto almeno altre 2 volte in giorni diversi, e ogni tentativo è stato registrato.
È stata mantenuta la separazione procedurale tra la valutazione dei biomarcatori e l'accertamento degli esiti. Il personale che ha eseguito misurazioni sieroniche di MMP-12 e punteggio CDH13 è stato cieco rispetto agli esiti clinici. L'astrazione degli essiti è stata effettuata senza accesso ai risultati dei biomarcatori ogni volta che possibile. È stato applicato un processo di valutazione in due fasi per gli endpoint di progressione e risposta. Un abstractor formato assegnava la classificazione degli eventi e le date utilizzando le regole predefinite, dopo di che un clinico senior esaminava indipendentemente gli incarichi. Le discrepanze sono state risolte tramite una revisione congiunta del rapporto radiologico originale, delle note oncologiche e della tempistica del trattamento, mantenendo una traccia di audit di tutte le decisioni di valutazione.
Sono stati effettuati controlli di coerenza per identificare sequenze implausibili, inclusi eventi datati prima della data indice, transizioni di trattamento senza valutazioni corrispondenti o date di decesso senza documentazione di supporto. I casi segnalati sono stati riconciliati tornando ai documenti di origine e aggiornando il dataset con una nota di correzione datata che specifica la ragione del cambiamento e le prove a supporto.
Analisi statistica
Le analisi statistiche sono state effettuate utilizzando SPSS (versione 26.0) e R (versione 4.3.0). Le variabili continue sono state presentate come media ± deviazione standard o mediana (intervallo interquartile), a seconda dei conti, e le variabili categoriche sono state presentate come conteggi e percentuali. I confronti di gruppo utilizzavano test parametrici o non parametrici secondo opportunità, con test chi-quadrati o esatti di Fisher per i dati categorici. Tutti i test sono stati bilaterali, con P < 0,05 considerato statisticamente significativo.
Le covariate sono state selezionate a priori sulla base della rilevanza clinica e delle evidenze precedenti, e lo stesso insieme di covariate è stato applicato tra modelli correlati per supportare la comparabilità. Le variabili di aggiustamento principali includevano età, sesso, esposizione al fumo, stadio TNM, stato di performance ECOG e sottotipo istologico, con ulteriore aggiustamento per il gruppo di trattamento quando il bersaglio di analisi è il sottotipo molecolare all'interno delle popolazioni trattate. La multicollinearità è stata valutata utilizzando fattori di inflazione della varianza, e la collinearità problematica è stata affrontata utilizzando regole predefinite di riduzione delle variabili. Sono stati riportati odds ratios aggiustati con intervalli di fiducia del 95% e valori P bilaterali. Il numero di covariate incluse nei modelli logistici multivariabili e di regressione di Cox è stato prespecificato e limitato rispetto al numero di eventi di esito per minimizzare il rischio di sovrafitting. Il rapporto eventi per variabile è rimasto accettabile (≥10) per tutti i modelli. Per gli esiti di sottotipi molecolari multi-categorie, sono stati adattati modelli di regressione logistica multinomiali, oppure è stato eseguito un insieme di confronti logistici binari utilizzando una categoria di riferimento prespecificata, e la strategia di modellazione è stata chiaramente espressa.
La sopravvivenza senza progressione e la sopravvivenza complessiva sono state analizzate utilizzando stime di Kaplan–Meier, e le curve di sopravvivenza sono state confrontate con il test log-rank. Le associazioni tra biomarcatori ed esiti sono state quantificate utilizzando la regressione proporzionale dei rischi di Cox, riportando rapporti di rischio con intervalli di confidenza al 95%. Modelli di Cox multivariati sono stati costruiti utilizzando covariabili clinicopatologiche predefinite, inclusi sottotipi molecolari e categorie di trattamento, per valutare le implicazioni della terapia personalizzata. L'assunzione dei rischi proporzionali è stata verificata utilizzando diagnostica dei residui di Schoenfeld e grafici log-minus-log-survival plot. Se l'assunzione dei rischi proporzionali veniva violata per una covariata, la questione veniva affrontata utilizzando un approccio prespecificato come la stratificazione su quella covariata o l'inclusione di un termine di interazione dipendente dal tempo, e la specifica finale del modello veniva riportata.
I dati mancanti venivano gestiti con una strategia predefinita. Quando la mancanza era minima, venivano eseguite analisi complete del caso; altrimenti, veniva utilizzata imputazione multipla con equazioni concatenate, includendo tutte le variabili nei modelli analitici. Sono stati generati dieci dataset imputati e le stime aggregate sono state calcolate utilizzando le regole di Rubin. Per le analisi che coinvolgevano confronti di più sottotipi o più endpoint, il tasso di false scoperte veniva controllato utilizzando una procedura prespecificata, oppure le analisi erano chiaramente designate come esplorative per garantire trasparenza riguardo alla molteplicità.
Il dataset di analisi è stato bloccato prima dell'adattamento del modello e è stato mantenuto un dizionario dati completo che definiva ogni variabile, unità, schema di codifica e intervallo consentito. Sono stati inclusi campioni duplicati di controllo qualità tra le lastre di analisi per quantificare la variabilità tra placche e monitorare la deriva. Per la valutazione immunoistochimica, sono state documentate la griglia di valutazione della classificazione, le procedure di ciecimento e la valutazione dell'accordo tra osservatori, e sono stati conservati i registri di valutazione per i casi discrepanti. Sono stati implementati controlli programmati di intervallo e controlli di coerenza logica tra variabili chiave, tra cui data di indice, data di raccolta del campione, data di inizio trattamento e date di esito. Tutti gli script statistici e i log di output controllati da versione sono stati preservati per consentire la completa replica del flusso di lavoro analitico.