I protocolli sperimentali impiegati nel presente studio sono stati approvati dal Comitato Etico dell'Ospedale Generale di Hainan (protocollo n. 2021-239). La Guida degli Istituti Nazionali di Salute per la Cura e l'Uso degli Animali da Laboratorio e la Dichiarazione di Helsinki sono state seguite rigorosamente in tutte le procedure sperimentali. I reagenti e le attrezzature utilizzate in questo studio sono elencati nella Tabella dei Materiali.
1. Modello animale e disegno sperimentale
In questo studio sono stati utilizzati trentasei maschi di topi C57BL/6J (4 settimane, circa 20 g). Tutti i topi sono stati alloggiati in condizioni standard di laboratorio (20–25 °C, 50%–65% di umidità relativa, ciclo luce/buio di 12 ore) con accesso ad libitum a cibo e acqua. Dopo un periodo di acclimatazione di 7 giorni, i topi sono stati divisi casualmente in due gruppi (n=18 per gruppo): il gruppo di sovraccarico di ferro (gruppo modello), che riceveva iniezioni intraperitoneali di destrono di ferro (0,2 g/kg) due volte a settimana per 4 settimane; e il gruppo di controllo, che riceveva volumi equivalenti di soluzione salina normale tramite iniezione intraperitoneale. Dopo 4 settimane, i topi sono stati soppressi e i tessuti pancreatici sono stati prelevati per analisi successive.
2. Misurazione del ferro sierico
Sono stati prelevati campioni di sangue dal seno retro-orbitale sotto anestesia pentobarbital all'1% durante il diestru. Dopo essere stato lasciato a temperatura ambiente per 1 ora, il sangue è stato centrifugato a 4 °C, 3.000 giri/min per 15 minuti. Il siero veniva separato e conservato a -80 °C. Le concentrazioni di ferro sirico sono state determinate utilizzando un kit di analisi colorimetrica sul ferro seguendo il protocollo del produttore.
3. Analisi istologica
I campioni di tessuto pancreatico sono stati immersi nel 4% di paraformaldeide per la fissazione, seguiti da un'incapsulazione di paraffina prima della preparazione della sezione. Sono state ottenute e processate sezioni seriali di tessuto con uno spessore compreso tra 4 e 5 μm tramite procedure standard di deparaffinizzazione e reidratazione. L'esame istomorfologico è stato successivamente eseguito utilizzando la colorazione di ematossilina ed eosina, mentre la deposizione di ferro nei tessuti pancreatici è stata valutata tramite colorazione blu di Prussia secondo protocolli di colorazione istologica convenzionali.
4. Coltura cellulare e trasfezione di piccoli acidi ribonucleici interferenti
Le cellule β pancreatiche MIN6 del topo sono state coltivate nel mezzo Eagle modificato di Dulbecco ad alto contenuto di glucosio, integrato con siero bovino fetale al 15%, 100 U/mL di penicillina, 100 μg/mL di estreptomicina, 10 mM HEPES, 50 mM piruvato di sodio e 50 μmol/L β-mercaptoetanolo. Tutti gli esperimenti sono stati condotti all'80% di confluenza cellulare. Ogni volta durante la coltura cellulare vengono prelevati 6–8 ml di mezzo di coltura. Le celle sono state mantenute a 37 °C in un'atmosfera umidificata al 5% di CO₂. Per studi funzionali, le cellule MIN6 nella fase di crescita logaritmica sono state trasfettate con piccoli (si)RNA interferenti specifici per lncRNA (che hanno preso di mira lncRNA selezionati basandosi sui risultati dei microarray); Gruppo inibitore) o siRNA di controllo negativo (gruppo inibitore NC) utilizzando Lipofectamina 2000, secondo le istruzioni del produttore. Dopo la coltura per 24 ore, le cellule sono state analizzate tramite reazione a catena quantitativa della polimerasi (qRT-PCR) o western blot per determinare l'efficienza del knockdown. Le sequenze target di questo siRNA erano le seguenti siMEG3: GCGUCUUCCUGUGCCAUUUTTAAAUGGCACACAGGAAGACGCTT; siNC: UUCUCCGAACGUGUCACGUTTACGUGACGUUCGGAGAATT. Ogni esperimento è stato condotto in triplicata e ripetuto tre volte.
5. Saggio di reazione a catena della polimerasi a trascrizione inversa
L'RNA totale è stato estratto da campioni di tessuto pancreatico e da cellule MIN6 utilizzando un reagente di isolamento a base di fenolo disponibile commercialmente secondo le istruzioni del produttore. Il DNA complementare è stato sintetizzato utilizzando un kit di trascrizione inversa in un volume di reazione totale di 20 μL. Dopo la trascrizione inversa, la concentrazione di cDNA della maggior parte dei campioni era di circa 1 μg/μL secondo l'analisi di quantificazione del campione. Successivamente, 1 μL di modello di cDNA è stato utilizzato per l'amplificazione quantitativa in tempo reale tramite PCR. qRT-PCR è stato eseguito utilizzando un kit di rilevamento PCR SYBR Green-based nelle seguenti condizioni di ciclaggio: 95 °C per 30 s, 90 °C per 15 s, 60 °C per 34 s e 68 °C per 30 s. I livelli relativi di espressione genica sono stati determinati utilizzando il metodo del ciclo di soglia comparativo (metodo 2-ΔCT ). Il GAPDH è stato utilizzato come gene di riferimento interno per la normalizzazione dei dati PCR in tempo reale. Tutte le procedure sperimentali sono state eseguite secondo i protocolli dei rispettivi produttori e ogni esperimento è stato ripetuto indipendentemente almeno tre volte. Le sequenze di primer utilizzate in questo studio sono elencate nella Tabella Supplementare 1 e nella Tabella 2.
6. Kit di conteggio cellulare Kit 8
La capacità di proliferazione cellulare è stata determinata utilizzando un test kit di conteggio cellulare 8 in conformità con le linee guida del produttore. In breve, le cellule MIN6 sono state impiegate in piastre di coltura da 96 pozzi a una densità di 5 x 103 cellule per pozzo dopo la trasfezione con si-MEG3 o si-NC e mantenute per 24 ore. Nei momenti temporali designati, furono introdotti 10 μL di reagente di vitalità cellulare in ciascun pozzo e le piastre furono incubate a 37 °C per 2 ore. I valori di assorbanza sono stati successivamente misurati a 450 nm utilizzando un lettore di microplacche. La vitalità cellulare è stata calcolata come percentuale rispetto al gruppo di controllo.
7. Rilevamento dell'apoptosi tramite citometria a flusso
I cambiamenti apoptotici nelle celle MIN6 sono stati esaminati utilizzando un kit di rilevamento dell'apoptosi Annexin V-FITC/PI secondo le istruzioni del produttore. Dopo 48 ore di trasfezione di siRNA, le cellule venivano prelevate, lavate due volte con soluzione salina tamponata a freddo fosfato e risospese in tamponamento di legame. Successivamente, le cellule sono state incubate con 5 μL di Annexin V-FITC e 5 μL di iodio propidio per 15 minuti a temperatura ambiente in condizioni buie. Immediatamente dopo la colorazione, i campioni sono stati analizzati tramite citometria a flusso. Le popolazioni cellulari apoptotiche precoci e tarde sono state quantificate utilizzando software di analisi citometrica a flusso. La proporzione di cellule apoptotiche è stata successivamente calcolata per confronti intergruppi. Ogni esperimento è stato condotto indipendentemente tre volte.
8. Analisi del Western Blot
Esperimenti con Western Blot sono stati condotti secondo i protocolli precedentementeriportati 18. Le cellule venivano prima digerite con tripsina, raccolte e lisate su ghiaccio utilizzando il tampone di lisi per il saggio di immunoprecipitazione radio-immunoprecipitazione. Le concentrazioni proteiche sono state quantificate e quantità equivalenti di proteine sono state sottoposte a separazione su gel di elettroforesi al 10% di solfato dodecile di sodio-poliacrilammide prima del trasferimento su membrane di fluoruro di polivinilidene. Dopo il blocco della membrana, i campioni sono stati incubati con anticorpi primari contro NF-κB (1:1000), Bcl-2 (1:1000), Bax (1:1000), caspasi-3 (1:1000) e gliceraldeide-3-fosfato deidrogenasi (GAPDH) (1:2000) ai rapporti di diluizione indicati, seguiti dall'incubazione con anticorpi secondari legati alla perossidasi di rafano. I segnali proteici sono stati rilevati tramite un sistema di chemiluminescenza e quantificati con il software ImageJ. Il GAPDH è stato utilizzato come controllo del carico interno, mentre i livelli di espressione proteica sono stati espressi come variazioni di piegatura rispetto al gruppo di controllo.
9. Analisi statistica
I dati sono stati espressi come media ± deviazione standard (SD). I confronti tra i gruppi sono stati effettuati utilizzando il test Mann–WhitneyU 19 tramite analisi statistiche. Un p-valore <0,05 è stato considerato statisticamente significativo.