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1. RSM: definizioni e necessità
Gli RSM sono organizzati gerarchicamente, con due tipi principali: primari e secondari. Secondo la Guida ISO 30, uno standard primario è definito come uno "standard designato o ampiamente riconosciuto come dotato delle più alte qualità metrologiche e il cui valore è accettato senza riferimento ad altri standard della stessa quantità, all'interno di un contesto specificato". Ad esempio, le RSM della Farmacopea degli Stati Uniti (USP), della Farmacopea Europea (Ph. Eur), della Farmacopea Britannica (BP), ecc., che sono state ampiamente caratterizzate tramite studi multilaboratorio, sono considerate RSM primarie. I singoli produttori utilizzano successivamente questi RSM primari per calibrare e qualificare i propri materiali di riferimento di lavoro proprietari, che fungono da RSM secondari per i test di controllo qualitàdi routine 12,15. Pertanto, ISO definisce un RSM secondario come uno "standard il cui valore viene assegnato tramite confronto con uno standard primario della stessa quantità". Questo approccio gerarchico garantisce la tracciabilità: le misurazioni interne risalgono agli standard primari, che a loro volta sono caratterizzati tramite metodi analitici all'avanguardia16. L'uso degli RSM fornisce benchmark comuni che permettono ai produttori di calibrare e validare i propri metodi analitici fino allo stesso punto di riferimento, portando così a misurazioni più accurate. Le autorità regolatorie, quindi, incoraggiano l'uso degli RSM primari per calibrare gli RSM interni e validare i metodi di prova, migliorando la coerenza in tutta la produzione degliAAV 17,18. Ciò consente la standardizzazione tra diverse tecniche analitiche, portando a un migliore confronto tra i risultati della caratterizzazione rAAV tra laboratori e diversiprodotti 17,19. La migliore comparabilità migliora la comprensione dei rischi per la sicurezza potenzialmente associati ad alte dosi o a impurità legate al prodotto, come capsidi vuoti e parzialmente riempiti. In definitiva, queste intuizioni possono informare la formulazione di politiche regolatorie basate sulla scienza, come una soglia minima di capside complete, analoga al criterio delle cellule vitali del ≥70% per le terapie cellulari somatiche, contribuendo così a prodotti di terapia genica più sicuri eaffidabili 13,20,21.
Per rAAV, diverse CQAs illustrano chiaramente la necessità di standardizzazione. Il titolo genomica vettore determina direttamente la dose del paziente; titoli imprecisi rischiano sottodosaggio o sovradosaggio. La PCR quantitativa (qPCR) e la PCR digitale (dPCR) sono ampiamente utilizzate per misurare il titolo, ma i risultati possono differire per lo stesso campione se si utilizzano diversi calibranti o protocolli standard interniper la curva 11. Il contenuto di capside (il rapporto tra capsidi pieni, parzialmente pieni e vuoti) è un'altra CAQ critica, poiché i capsidi vuoti e parzialmente pieni possono contribuire all'immunogenicità o ridurrel'efficacia 6. Sono utilizzate più di dieci tecniche diverse per misurare il contenuto della capside, tra cui ultracentrifugazione analitica (AUC), cromatografia a esclusione di dimensione abbinata a diffusione della luce multi-angolo (SEC-MALS), fotometria di massa (MP), spettrometria di massa per rilevamento di carica (CDMS), microscopia elettronica (EM), cromatografia a scambio anione (AEX), focalizzazione isoelettrica capillare (cIEF), spettroscopia ultravioletto-visibile (UV/Vis), ecc. Inoltre, il contenuto di capside viene spesso stimato indirettamente utilizzando il rapporto tra il titolo genomico del vettore e il titolo delle particelle virali, determinato rispettivamente da qPCR o dPCR ed ELISA, rispettivamente (PCR/ELISA)22. Ogni tecnica misura proprietà fisiche diverse e può riportare valori differenti di contenuto del capsid per gli stessi campioni. Un recente studio interlaboratorio del NIST che ha confrontato UV/Vis, AUC, SEC-MALS e PCR/ELISA ha dimostrato una variabilità sostanziale tra metodi e tra laboratori, con PCR/ELISA che ha mostrato una riproducibilità particolarmente scarsa e AUC che ha mostrato una significativa divergenza tra laboratori nonostante sia ampiamente considerato un metododi riferimento 8. Questi risultati indicano che ridurre la variabilità nell'analisi dell'AAV richiede sia RSM condivisi sia flussi di lavoro analitici armonizzati, come discusso nella Sezione 5.
2. paesaggio rAAV RSM
Gli sforzi per stabilire RSM per AAV hanno portato a due fonti che forniscono RSM AAV primari. Tra le fonti farmacopeiali, l'USP è attualmente l'unico fornitore di RSM AAV primario. Oltre all'USP, i RSM AAV primari sono disponibili anche presso l'American Type Culture Collection (ATCC). È disponibile anche una gamma crescente di RSM secondari commerciali per più sierotipi, riflettendo gli sforzi comunitari in corso per affrontare la mancanza di standardizzazione insita nella caratterizzazione dell'AAV. La Tabella 1 riassume i materiali AAV RSM attualmente disponibili e le loro caratteristiche chiave.
- Standard ATCC
Il primo sforzo internazionale per stabilire RSM per rAAV è iniziato nel 2010, quando il Gruppo di Lavoro per Standard di Riferimento AAV (AAVRSWG) ha prodotto RSM primari per rAAV2, seguito da rAAV8 nel 2014. Questa organizzazione di volontari includeva membri provenienti da cinque organizzazioni industriali, 13 università, la Food and Drug Administration (FDA), il National Institute of Health (NIH) e la Williamsburg Bioprocessing Foundation (WilBio), rappresentanti da quattro paesi: Stati Uniti, Francia, Germania e Giappone. Le primarie RSM erano pensate per fungere da standard comunitari per facilitare il confronto interlaboratorio delle dosi tra studi non clinici e clinici. Si incoraggia i ricercatori a segnalare i titoli in relazione a questo RSM primario quando pubblicano o inviano dati alle autorità sanitarie. La produzione mirava a raggiungere un titolo finale di 1 × 1012 genomi vettoriali per millilitro (vg·mL-1) e a ottenere circa 5.000–10.000 fiale contenenti 0,5 mLciascuna da 19. I materiali sono stati caratterizzati per il titolo genoma del vettore (qPCR), il titolo delle particelle (ELISA), il titolo di trasduczione (microscopia a fluorescenza), il titolo delle particelle infettive (TCID50), la purezza (elettroforesi in gel dodecil-solfato di sodio-poliacrilamide (SDS-PAGE)) e l'identità del vettore (elettroforesi su gel) attraverso uno studio multilaboratorio che ha coinvolto 16 laboratori in tutto il mondo. Inoltre, sono stati valutati micoplasma, bioburden, sterilità ed endotossine per garantire la sicurezzadel prodotto 23,24,25. Una panoramica approfondita della caratterizzazione analitica dell'AAV, inclusi i principali saghi e le informazioni fornite da ciascun saggio, è presentata nella Sezione 4.
Sebbene gli RSM ATCC fossero materiali pionieristici nel campo dell'AAV, la loro utilità è limitata dal fatto che sono stati prodotti più di un decennio fa, prima che molti approcci analitici attuali per la caratterizzazione dell'AAV fossero ampiamente adottati. Ad esempio, la caratterizzazione originale non includeva la profilazione vuota/completa del capside, il che ne limita la diretta applicabilità per la standardizzazione dell'analisi del contenuto del capside, ora considerata un importante CQA per rAAV. Inoltre, è stata riportata una notevole variabilità inter-laboratorio per il titolo genomico del vettore, il titolo capside e il titolo infettivo nonostante l'uso di protocolli e reagenti condivisi, sottolineando che i materiali comuni da soli non garantiscono misurazioni armonizzate, e che test più maturi con SOP dettagliati sono altrettanto importanti. Secondo le informazioni attuali sui fornitori, anche la disponibilità di questi materiali è limitata, il che potrebbe ulteriormente limitare un'implementazione piùampia 11. Secondo le informazioni attuali sui prodotti dei fornitori, la disponibilità di questi materiali è limitata a 3 fiale per cliente all'anno per AAV2 (ATCC VR-1616), con la fornitura indicata come in sospeso, e 12 fiale per cliente all'anno per AAV8 (ATCC VR-1816). Queste restrizioni limitano necessariamente l'uso più ampio e di routine di questi materiali come RSM a livello comunitario26,27.
- Standard USP
Per quanto riguarda le iniziative farmacopeee, l'USP è attualmente l'unica organizzazione ad aver prodotto RSM primari per AAV. I seguenti dati di caratterizzazione si basano sulle note di applicazioneUSP 28, 29, 30. Nel 2025, l'USP ha rilasciato AAV8 RSM per capsidi complete e vuote nel tentativo di standardizzare l'analisi dei contenuti delle capidi. Per raggiungere questo obiettivo, l'USP ha stabilito RSM con concentrazioni elevate (> 3,0E+12 titolo di particelle virali per millilitro (vp·mL-1)) e volumi sostanziali (300 μL), permettendone l'applicazione in vari approcci di analisi del contenuto della capside. È stato condotto uno studio collaborativo multilaboratorio completo per valutare completamente l'USP AAV RSM e garantire accuratezza e precisione delle misurazioni. Questo studio ha coinvolto cinque laboratori indipendenti e ha impiegato diverse tecniche di analisi del contenuto capside: AUC, SEC-MALS, CD-MS, MP e UV/Vis. Ulteriori metodi di caratterizzazione biofisica sono stati applicati ai campioni AAV, tra cui mappatura peptidica, sequenziamento di nuova generazione (NGS), dPCR ed elettroforesi su gel capillare (CGE), fornendo ulteriori dati di caratterizzazionedelle particelle 28.
Inoltre, USP ha sviluppato un controllo PCR quantitativo basato su AAV5 contenente un potenziatore di citomegalovirus (CMV), un promotore di pollo β-actin (CBA), una proteina fluorescente verde (GFP), un segnale di poliadenilazione del virus simieno 40 (SV40), destinato all'uso come calibrante standard di curva o controllo per saggio nelle misurazioni del titolo genomico. Il contenuto della capside è stato determinato da SEC-MALS, mentre il titolo genomico virale è stato quantificato tramite dPCR che mira a più sequenze. Uno studio dPCR multilaboratorio, che ha coinvolto 4 laboratori, ha rivelato che il targeting di SV40 ha prodotto una minore variabilità inter-laboratorio (CV 11,2%) rispetto al targeting ITR (CV 36,1%), probabilmente dovuto all'interferenza della struttura secondaria ITR. Di conseguenza, il valore di riferimento assegnato si basa sul titolo target SV40 ed è pari a 7 x 1010 vg·mL-1,32. Per quanto riguarda i materiali di riferimento per i saggi sul titolo della capside, USP fornisce materiali di riferimento per i titoli della capside per AAV1, AAV5, AAV8 e AAV9. Questi materiali, caratterizzati da SEC-MALS per la quantificazione assoluta delle particelle della capside e che vanno da 1x1011 a1x10 12 vg·mL-1, possono servire come calibranti standard di curva o controlli positivi negli saggi di titolocapside 30.
- Standard commerciali
Diverse aziende commerciali offrono AAV RSM pieni e vuoti per più sierotipi, ad esempio PROGEN, AAVnergene e Revvity; I seguenti dati di caratterizzazione e le specifiche di prodotto si basano sulle informazioni fornite dal fornitore, inclusi schede prodotto e noteapplicative 31,32,33,34,35. In quanto RSM secondari, questi materiali vengono frequentemente confrontati con gli RSM ATCC. Rispetto agli RSM farmacopei, questi RSM coprono una gamma più ampia di sierotipi, con alcuni fornitori che forniscono AAV1–13 e varianti ingegnerizzate. Gli RSM commerciali sono tipicamente caratterizzati per attributi di qualità di base come il titolo della capside (da ELISA o SEC-MALS), il titolo del genoma del vettore (tramite qPCR o dPCR) e il contenuto della capside (spesso con un unico metodo analitico).
Tuttavia, alcuni di questi materiali commerciali sono disponibili solo in piccole quantità, limitandone l'uso per lo sviluppo di metodi estesi di diversi saghi o studi multi-sito. Inoltre, manca una caratterizzazione estesa tramite uno studio collaborativo multi-laboratorio che coinvolge più tecniche ortogonali, inclusa la valutazione della stabilità, limitando così la fiducia nei valori assegnati e nell'applicabilità inter-laboratorio. Nonostante queste limitazioni, gli RSM commerciali svolgono un ruolo importante nello sviluppo, nella validazione e nell'ottimizzazione dei processi dei saggi, e possono fungere da RSM intermedi quando gli RSM primari non sono disponibili per serotipi specifici.
Alcuni fornitori stanno lavorando verso protocolli di caratterizzazione più rigorosi e una maggiore trasparenza per aumentare l'utilità delle loro offerteRSM 36,37.
- Standard interni
I singoli laboratori possono anche sviluppare RSM interni, una strategia spesso impiegata per prodotti AAV unici, come sierotipi ingegnerizzati da capside o specifici costrutti genomici virali. Anche gli RSM interni possono essere preferiti per ridurre i costi, poiché i materiali di riferimento primari e commerciali secondari possono essere costosi. Quando possibile, questi RSM interni dovrebbero essere confrontati con quelli primari per essere successivamente utilizzati nello sviluppo di sagnozzi, nella validazione, nei test di routine durante la produzione o nel controllo qualità. Diverse considerazioni importanti si applicano nell'uso degli RSM interni: questi materiali devono essere accuratamente caratterizzati, dovrebbero essere riservate quantità sufficienti e devono essere istituiti protocolli per monitorare la stabilità nel tempo. Inoltre, la pianificazione della produzione di nuovi lotti RSM è fondamentale, incluso il mantenimento di abbastanza materiale del lotto precedente per colmare le misurazioni e garantire la continuità durante lo sviluppo delprodotto 20. Nella sezione 3 viene fornita una panoramica dettagliata delle strategie per la produzione interna di RSM, che copre i processi a monte e a valle nonché la caratterizzazione analitica. Insieme, questi approcci offrono un quadro pratico per generare RSM interni.
3. Strategie di produzione RSM:
La produzione di RSM AAV ad alta purezza presenta sfide intrinseche. Raggiungere preparazioni di capsid vuote al 100% è complicato dal fatto che le capsule "vuote" possono contenere materiale genetico residuo. Allo stesso modo, ottenere preparazioni complete di capside pura risulta difficile perché le capside vuote e parzialmente riempite condividono caratteristiche fisiche simili e co-purificano con le capside complete durante i processidi separazione 10. Nonostante queste sfide, i significativi progressi nella tecnologia produttiva permettono ora l'arricchimento di popolazioni di capsid prevalentemente piene o prevalentemente vuote. La sezione seguente fornisce una panoramica completa delle tecnologie attuali di produzione e separazione, nonché dei metodi di caratterizzazione e delle condizioni di formulazione che possono essere impiegate per la produzione, caratterizzazione e stoccaggio degli RSM AAV.
- Elaborazione a monte
rAAV, come altre bioterapiche, deve essere prodotto in cellule viventi, più comunemente utilizzando trasfezioni transitorie o piattaforme basate su infezioni virali. L'approccio dominante per materiale di grado clinico è la trasfezione transitoria a tripla plasmide nelle cellule di sospensione HEK293, utilizzando tre plasmidi separati per il transgene a fiancheggiamento ITR, i geni rep/cap e le funzioni helper; Questo sistema flessibile e senza virus helper supporta l'intercambiabilità rapida di sierotipo e transgene ed è utilizzato per la maggior parte dei programmi clinici e dei prodottiapprovati 38. Tuttavia, i costi del DNA plasmidico aumentano notevolmente con l'aumentare della produzione, rappresentando uno svantaggio significativo. Per ridurre i costi delle materie prime, i sistemi di produzione sono stati semplificati da tre plasmidi a due (geni rep/cap/helper su un plasmide, transgene su un altro) o uno (con tutti i geni su un singolo plasmide)39,40. Le celle HEK293 possono essere coltivate in formati aderenti o a sospensione con produttività comparabile, anche se la coltura a sospensione è preferita per la sua scalabilità41.
Piattaforme di produzione alternative includono il Baculovirus Expression Vector System (BEVS) in cellule Sf9 o altre cellule di insetti, linee cellulari produttrici stabili, sistemi basati su virus herpes simplex e sistemi di espressione induttibile. In particolare, piattaforme di produzione diverse possono produrre rapporti vuoto/pieno significativamente diversi anche per lo stesso sierotipo, con percentuali di pienezza riportata che varia dall'8% al 39% a seconda della piattaforma e del sierotipo AAV specificoimpiegato 42.
La selezione della piattaforma di produzione appropriata e l'ottimizzazione delle condizioni a monte per la generazione di RSM richiede un'attenta considerazione della popolazione target di capside. Per quanto riguarda la trasfezione transitoria HEK293, il sistema di produzione più utilizzato per materiali clinici e attualmente disponibili RSM (Tabella 1), vari parametri di processo possono essere ottimizzati per migliorare sia la resa che il rapporto vuoto/capsid completo. Per gli RSM a capsid completo, l'ottimizzazione dei processi a monte mira a massimizzare l'efficienza del reso e del confezionamento del genoma per minimizzare la formazione parziale o vuota di capside, poiché il rapporto vuoto/pieno iniziale nel lisato greggio impatta direttamente sul rapporto vuoto/pieno a valle. I parametri chiave includono la densità cellulare alla trasfezione, i rapporti molari plasmidiali, il rapporto tra reagente di trasfezione e DNA, il tempismo di prelievo, gli additivi per piccole molecole (ad esempio, agenti di arresto del ciclo cellulare) e la progettazione della cassettatransgenica 40,43,44,45,46.
Gli RSM vuoti di capside vengono tipicamente prodotti omettendo il plasmide del transgene durante la trasfezione, impedendo così l'imballaggio del DNA dopo l'assemblaggio della capside. In pratica, tuttavia, queste preparazioni "vuote" spesso contengono ancora DNA contaminante, rendendole eterogenee dal punto di vista compositivo e evidenziando la necessità di una caratterizzazione analiticaapprofondita 47,48.
- Elaborazione a valle
Il processo a valle (DSP) include la raccolta, la chiarificazione e la purificazione del vettore per ottenere un prodotto AAV altamente puro, garantendo sia un'elevata resa vettoriale sia un rapporto ottimale vuoto/pieno. Il processo a valle inizia 72 ore dopo la trasfezione con la lisi cellulare per recuperare rAVV intracellulari49. Sebbene l'uscita virale vari a seconda del sierotipo, la lisi cellulare garantisce un completo recupero intracellulare50. La lisi si ottiene meccanicamente tramite cicli di congelamento-scongelamento o chimicamente utilizzando tamponi a base di detersivo (ad esempio, Triton X-100, Tween-20/80, CHAPS), con metodi chimici preferiti per una migliore scalabilità49,51. Il trattamento con nucleasi (ad esempio Benzonasi) durante la lisi degrada i genomi vettori non capsidati e il DNA plasmidico contaminante, prevenendo il bias nella titolazione genomica e riducendo la viscosità del DNA per ulteriori passaggi DSP. Un buffer comune per la lisi per rAAV derivato da HEK293 è 50 mM Tris-HCl (pH 8,0), 150 mM NaCl, 0,1% Triton X-100, Benzonasi 25–50 U.mL-1,51. Il lisato viene poi chiarito tramite filtrazione in profondità o centrifugazione per rimuovere i detriti cellulari. La filtrazione a flusso tangenziale (TFF) concentra quindi la raccolta e scambia il tampone con la purificazione a valle, anche se questo passaggio può essere omesso se quello a valle può gestire grandi volumi. La purificazione ulteriore avviene tramite ultracentrifugazione (UC) o metodi basati sulla cromatografia52.
La UC a densità di gradiente, più comunemente tramite gradiente di cloruro di cesio (CsCl) o iodixanolo, è stata tradizionalmente impiegata per la purificazione con rAAV, fornendo alta resa ed efficace separazione dei capsid pieni dalle impurità correlate al processo e al prodotto53. Sebbene l'UC offra indipendenza sierotipica e alta purezza, presenta carenze significative, tra cui la manipolazione manuale, scalabilità limitata per grandi volumi e lavorazione ad alta intensità di manodopera. La cromatografia a colonna è emersa come alternativa preferita, offrendo scalabilità, tempi di elaborazione più rapidi e capacità di automazione, ed è stata applicata con successo per la produzione clinica di rAAV e rAAV RSM. La cromatografia a colonna per rAAV viene tipicamente eseguita in due fasi sequenziali: cattura e lucidatura52,54.
La cromatografia di affinità rappresenta il primo passo di cattura, utilizzando liganti immobilizzati sulle resine per legare i capsidi AAV rimuovendo la maggior parte delle impurità correlate al processo. Frammenti di anticorpi a dominio singolo (VHH) sono recentemente diventati la scelta preferita per il ligando grazie alla versatilità tra i sierotipi e all'elevata specificità. Le colonne a base di anticorpi comunemente utilizzate includono POROS CaptureSelect AAVX, AVB Sepharose High Performance e Capto AVB51. POROS CaptureSelect AAVX offre la specificità più ampia, legando AAV1–9, rAAV-10 e varianti ingegnerizzate, rendendolo adatto alla purificazione indipendente dal sierotipo55. È comunemente impiegato per la maggior parte delle purificazioni commerciali di RSM rAAV (Tabella 1). Poiché le colonne di affinità non possono distinguere tra capsidi piene e vuote, poiché gli epitopi sono presenti in entrambe le varianti, viene impiegato un ulteriore passaggio di lucidatura. La fase di lucidatura impiega tipicamente la cromatografia a scambio aninico (AEX) per separare capsidi pieni e vuoti. Questo metodo sfrutta la leggera differenza di punto isoelettrico (pI) tra popolazioni complete (~5,9) e vuote (~6,3) di capside52. Tre formati di fase stazionari sono disponibili commercialmente: resine impacchettate, monoliti e colonne a membrana53. I dati comparativi sulle prestazioni in tutti e tre i formati per AAV sono limitati. Tuttavia, monoliti e colonne a membrana supportano flussi più elevati basati sulla convettura, rendendoli preferiti su scale più grandi dove è critico il tempo di lavorazione ridotto. Le resine impacchetate si basano su un trasferimento di massa limitato dalla diffusione e su una maggiore contropressione, limitando le portate56,57. Un elenco delle colonne AEX disponibili in commercio si trova in una recensione di Jungbauer et al.51. Per l'eluzione, i gradienti di sale a gradi sono sempre più preferiti rispetto a gradienti di sale continui e superficiali perché i gradi fissi di sale sono meno sensibili alle variazioni strumentali (miscelazione a pompa, portata di portata) rispetto ai gradienti a variazione continua, migliorando la riproducibilità e riducendo il consumo di tamponi52. I protocolli AEX ottimizzati possono raggiungere una purezza completa del capside del >90% su più sierotipi58. Tuttavia, a differenza dell'UC, AEX non ha ancora dimostrato una separazione affidabile dei capsidi parzialmente riempiti, e ogni sierotipo richiede ottimizzazione poiché il profilo di carica varia a seconda del sierotipo51. In particolare, la maggior parte dei processi commerciali di purificazione RSM combina cromatografia di cattura di affinità con UC (iodixanolo o CsCl) come fase di lucidatura, sfruttando i vantaggi di alta purezza dell'UC dopo la rimozione iniziale delle impurità basate sull'affinità (Tabella 1).
- Formulazione
L'ottimizzazione della formulazione AAV è importante per garantire la stabilità dell'RSM e la sua durata di conservazione. La progettazione della formulazione prevede la selezione degli acidipianti, la regolazione dell'osmolarità, la selezione del tamponamento, del tensioattivo e il controllo della forza ionica per minimizzare l'aggregazione. I sistemi tampone più comuni includono fosfati, tris, acetato, citrato e lattato, che operano tipicamente entro un intervallo di pH compreso tra 7,4 ± 0,3 tra diversi sierotipi. Gli enzimenti sono agenti stabilizzanti comunemente presenti nelle formulazioni di AAV, tra cui NaCl, KCl, poloxamer 188 (Px188), MgCl₂, CaCl₂, saccarosio, PS20, sorbitolo, mannilo, glicerolo e albumina sierica umana. Px188 a ~0,001% è comunemente utilizzato per ridurre lo stress interfacciale e meccanico, limitando così la rottura della capside e la perdita di titolazione durante la maneggiazione e ilcongelamento-disgelo 59. L'osmolarità è una considerazione importante per l'amministrazione in modo umano, ma meno rilevante per gli RSMdi grado di ricerca 60. La maggior parte degli RSM commerciali utilizza tamponi basati su PBS, occasionalmente integrati con sali aggiuntivi. I fornitori raccomandano lo stoccaggio a -80 °C ed evitare cicli multipli di congelamento-disgelo, poiché ciò può favorire la rottura della capside alle interfacce ghiacciato-acqua, potenzialmente causando una perdita dititolo 34,61.
4. Caratterizzazione analitica: definizione dello standard
Una volta che il RSM è stato prodotto, purificato e formulato, viene eseguita una caratterizzazione analitica completa. Questo passaggio garantisce la qualità dell'RSM e la sua applicabilità come riferimento tra diversi metodi analitici. L'impiego di tecniche analitiche ortogonali per valutare gli stessi attributi di qualità è particolarmente importante per garantire la robustezza ed è quindi altamente raccomandato. Gli attributi chiave di qualità specifici per AAV RSM possono essere suddivisi in tre categorie: titolo, identità e purezza, come elencato nella Tabella 2.
- Titolo
La caratterizzazione della RSM comprende la misurazione del titolo, quantificato come titolo genoma vettore e titolo particella capside, fornendo informazioni sul numero di genomi vettoriali e capsid presenti. Il titolo genomico viene tipicamente misurato tramite qPCR o dPCR mirando al transgene, agli ITR o ad altri elementi della cassetta transgene, con la progettazione del saggio e il posizionamento del primer/sonda che influenzano significativamente i risultati. Gli saggi basati su ITR sono indipendenti dal sierotipo e ampiamente applicabili, ma la struttura a forno degli ITR può ostacolare il legame degli innesco, e tali saghi possono sovrastimare i titoli quando sono presenti capsidi parzialmente riempiti che mantengono sequenze ITR; È stato dimostrato che la qPCR con targeting ITR sovrastima i titoli genomici per gli RSM AAV2 e AAV8 rispetto agli saggi di targeting sucassetta di espressione 11. Un'ulteriore fonte di bias nella qPCR è l'uso di calibranti plasmidi a doppio filamento del DNA, che mostrano cinetiche di amplificazione diverse rispetto ai genomi rAAVa singolo filamento 29.
La dPCR affronta entrambe le limitazioni tramite la quantificazione assoluta tramite statistica di Poisson, eliminando la dipendenza dalla curva standard, ed è stato dimostrato meno suscettibile all'interferenza strutturalesecondaria ITR 62. In particolare, la qPCR può raggiungere una precisione equivalente quando calibrata rispetto a un calibrante basato su rAAV piuttosto che su plasmidi, offrendo un'alternativapiù conveniente 63. Un adeguato pretrattamento del campione è altrettanto importante. Il trattamento con DNasi rimuove il DNA esterno per garantire che vengano quantificati solo i genomi encapsidati e deve essere seguito da un'inattivazione prima della rottura della capside, utilizzando la proteinasi K o il trattamentotermico 64,65,66. Un protocollo ottimizzato e validato per la quantificazione genomica basata su ddPCR in campioni di vettori purificati è stato pubblicato dal nostro gruppodi ricerca 67.
Il titolo delle particelle della capside viene comunemente determinato tramite ELISA o SEC-MALS. ELISA offre alta specificità e robustezza agli effetti matriciali, ma è specifico per il sierotipo, dipendente dalla curva standard e richiede molta manodopera. SEC-MALS è indipendente dal sierotipo e più veloce, ma richiede strumentispecializzati 22.
- Identità
La valutazione dell'identità mira a confermare che l'AAV prodotto corrisponde al sierotipo e alla sequenza genomica desiderata, escludendo alterazioni non intenzionali sia a livello di proteina che di DNA. L'identità della proteina capside si riferisce all'identificazione del sierotipo. I metodi comuni includono ELISA e western blot (WB) che utilizzano anticorpi specifici per il sierotipo. Più recentemente, la spettrometria di massa accoppiata alla cromatografia liquida ad alte prestazioni (LC-MS) è emersa come un approccio complementare di ordine superiore per l'identificazione dei sierotipi e l'analisi della composizione capside, grazie alla sua elevata riproducibilità, accuratezza e robustezza, anche se generalmente non viene utilizzata per la caratterizzazione di routine interna diRSM 6,22. L'identità del genoma del vettore può essere valutata utilizzando metodi di sequenziamento, come il sequenziamento nanopore. Questo approccio fornisce una copertura di lunga lettura dei genomi AAV completi, permettendo una determinazione accurata dell'identità dellasequenza 22.
- Purezza
Un terzo parametro di qualità importante per gli RSM AAV è la purezza, che comprende la purezza proteica, l'integrità del capside e del genoma, il contenuto del capside e l'aggregazione. L'integrità della capside viene valutata verificando la stechiometria VP (VP1:VP2:VP3 ≈ 1:1:10) utilizzando l'elettroforesi in gel di dodecil-poliacrilammide di sodio (SDS-PAGE), l'elettroforesi capillare del dodecil-solfato di sodio (CE-SDS) o WB, con WB che fornisce inoltre la conferma dell'identità proteicadella capside 22.
L'integrità del genoma, sia che il transgene sia a lunghezza intera o troncato, può essere valutata tramite elettroforesi in gel di agarosio (AGE), multiplex ddPCR o approcci basati sul sequenziamento come il sequenziamento nanopore. Sebbene AGE sia semplice, offre una risoluzione e una specificità limitate. Il multiplex ddPCR fornisce dati quantitativi e specifici per regione che i metodi a base di gel non possono, sebbene a costo di uno sviluppo di saghi piùesteso 22,68.
Il contenuto della capside viene spesso stimato dividendo il titolo genomico per il titolo della capside; tuttavia, ciò si basa su due saghi indipendenti, che possono introdurre variabilità aggiuntiva e quindi non sono raccomandati per la caratterizzazione degli RSM. Tecniche più adatte per questo attributo con minore variabilità includono AUC, SEC-MALS, MP, CD-MS e UV/Vis 8,69,70,71,72,73. Gli sviluppi recenti hanno ulteriormente aumentato il valore di AUC e SEC-MALS come metodi multi-attributo. In particolare, l'AUC MULTI-LUNGHEZZA D'ONDA (MWL-AUC) consente non solo la discriminazione di capsidi vuote, parzialmente riempite e complete, ma anche la valutazione del titolo genomica, del titolo della capside edell'aggregazione 71,74. Analogamente, SEC-MALS può fornire, all'interno di un singolo saggio, informazioni sul titolo della capside, titolo genomico, purezza, aggregazione e rapporti tra la capside piena e quellavuota 73,75. L'aggregazione può essere monitorata anche tramite scattering dinamico della luce (DLS). In particolare, solo AUC, MP e CDMS hanno tradizionalmente offerto una risoluzione sufficiente per quantificare i capsidi parzialmente riempiti. Tuttavia, recentemente è stato sviluppato un metodo TEM avanzato, che può anche quantificare con precisione i capsidi parzialmente riempiti rispetto a SV-AUC e MP76. Poiché nessun metodo singolo è emerso come uno standard d'oro per il contenuto di capside, e queste tecniche si basano su principi analitici diversi, si raccomanda l'uso di più approcci complementari per ottenere una valutazione completa della purezzacomplessiva 10.
- Stabilità
La stabilità a lungo termine è fondamentale per gli RSM, poiché i valori di riferimento devono rimanere costanti per garantire una calibrazione affidabile nel tempo. Gli RSM AAV sono tipicamente conservati a ≤ -70 °C per mantenere l'integrità del capside e del genoma. Uno studio di stabilità multilaboratorio su AAV8 RSM (ATCC VR-1816) ha dimostrato un titolo genomico vettoriale stabile, un titolo infettivo e un titolo capside stabili per almeno due anni a < -70 °C 77. Le procedure per i test di stabilità possono seguire le linee guida ICH Q1A, valutando gli attributi chiave a intervalli definiti: ogni 3 mesi (anno 1), ogni 6 mesi (anno 2) e successivamente ogni anno 78. La stabilità a breve termine in condizioni di stoccaggio accelerato (2–8 °C) viene tipicamente valutata a 1, 2 e 4 settimane79. Gli attributi critici che indicano la stabilità includono il titolo genomico, il titolo della capside, il contenuto della capside, l'integrità della proteina della capside e l'aggregazione. Gli RSM dovrebbero inoltre essere valutati per una sensibilità alcongelamento-disgelo 80.
5. SOP armonizzati come secondo pilastro della standardizzazione analitica dell'AAV
Oltre alla disponibilità di RSM ben caratterizzati, una standardizzazione significativa nell'analisi AAV richiede anche SOP armonizzati e sufficientemente dettagliati. Anche quando viene applicato lo stesso metodo analitico, i risultati possono differire sostanzialmente tra i laboratori a causa delle differenze nel pretrattamento del campione, nelle impostazioni strumentali, nella strategia di calibrazione, nell'elaborazione dei dati e nei criteri di interpretazione, fattori che si sono dimostrati contribuire alla variabilità interlaboratorio indipendentemente dalla piattaforma analitica stessa 8,9.
Ciò è illustrato da uno studio collaborativo tra NIST, National Institute for Innovation in Manufacturing Biopharmaceuticals (NIIMBL) e USP, in cui sei laboratori hanno valutato gli stessi campioni AAV5 e AAV8 per il contenuto della capside utilizzando quattro metodi. I metodi ottici, inclusi SEC-MALS e UV/Vis, mostrarono il più forte accordo interlaboratoriale, mentre PCR-ELISA mostrò scarsa riproducibilità ed era considerato inadatto per un uso quantitativo senza ulteriori armonizzazioni. Nonostante sia ampiamente considerato un metodo standard, SV-AUC ha mostrato una maggiore variabilità interlaboratoriale rispetto a SEC-MALS, e gli sforzi di follow-up per sviluppare procedure standardizzate SV-AUC sono stati identificati come un passo successivoimportante 8,81.
Una conclusione simile è emersa per la determinazione del titolo genomico tramite dPCR, dove il pretrattamento del campione, la strategia di estrazione, la piattaforma strumentale, le condizioni di diluizione, il tempismo della lisi capsidene e la storia di congelamento-disgelo possono tutti influenzare i valori riportati. È importante sottolineare che un controllo procedurale più rigoroso ha dimostrato ridurre sostanzialmente la variabilità, sottolineando ulteriormente il valore delle SOParmonizzate 9.
RSM e SOP dovrebbero quindi essere considerati pilastri complementari della standardizzazione analitica dell'AAV. Gli RSM forniscono l'ancora di misura necessaria per la tracciabilità e la calibrazione, mentre le SOP riducono la variabilità procedurale e aiutano a garantire che i valori assegnati vengano riprodotti in modo coerente tra analisti, strumenti e laboratori.