Tutte le procedure sugli animali hanno seguito le linee guida del National Research Council per la cura e l'uso degli animali da laboratorio ed sono state approvate dal Comitato Etico dell'Ospedale Generale di Fuzhou (numero di approvazione 202408002).
Allevamento di zebrafish
Tutti gli esperimenti sono stati condotti utilizzando zebrafish (Danio rerio) allevati in condizioni standard di laboratorio. Zebrafish di tipo selvatico AB sono stati utilizzati per il saggio di tossicità e per il saggio di rigenerazione dopo amputazione della coda. Zebrafish Tg(mpeg1:GFP) sono stati utilizzati specificamente per l'immagine dei macrofagi. Tg(mpeg1:GFP) è una linea reporter per macrofagi in cui l'espressione di GFP etichetta le cellule della linea macrofagica sotto il controllo del promotore mpeg1, espresso nei macrofagi. Tutte le linee di zebrafish sono state mantenute a 28,5 °C in un ciclo luce/buio di 14 h/10 h. Per gli esperimenti sono stati utilizzati solo embrioni morfologicamente normali. Per tutti gli esperimenti, gli embrioni sono stati incubati in tampone di Danieau, preparato con reagenti di grado analitico tra cui NaCl, KCl, Ca(NO₃)₂·4H₂O, MgSO₄·7H₂O e HEPES, aggiustato a pH 7,2.
Preparazione del farmaco e determinazione della sicurezza
La mollugina (40 mg) è stata sciolta in 1 mL di DMSO per ottenere una soluzione madre da 40 mg/mL. La soluzione madre è stata dapprima diluita 1:10 nel buffer di Danieau fino a 4 mg/mL, seguita da ulteriore diluizione a 22, 66 e 200 µg/mL per i trattamenti. Per determinare la concentrazione massima sicura, embrioni della linea AB a 48 ore post-fertilizzazione (hpf) sono stati dechorionati e disinfettati con ipoclorito di sodio allo 0,003% prima di essere distribuiti in piastre a 6 pozzetti (n=20, tre pozzetti per gruppo). Gli embrioni sono stati incubati con mollugina (22 µg/mL, 66 µg/mL, 200 µg/mL, 240 µg/mL, 280 µg/mL, 320 µg/mL o 360 µg/mL) in mezzo E3 per 48 h a 28,5 °C. La sopravvivenza è stata monitorata al microscopio stereoscopico, e la concentrazione più elevata con una vitalità degli embrioni ≥90% è stata stabilita come limite superiore sicuro per esperimenti successivi.
Costruzione del modello di amputazione e rigenerazione della coda
Per gli studi di rigenerazione, gli embrioni selvatici AB di 48 hpf sono stati anestetizzati con tricaina allo 0,03% preparata nel mezzo per embrioni e posizionati in posizione laterale sotto un microscopio stereoscopico. Prima dell'amputazione della coda, gli embrioni sono stati mantenuti nel buffer di Danieau. È stata eseguita un'amputazione trasversale standardizzata della coda sotto guida stereomicroscopica. La linea di amputazione è stata posizionata immediatamente a livello posteriore rispetto alla punta della notocorda, utilizzando l'estremità posteriore della notocorda come riferimento anatomico. La piega della pinna caudale distale a questo riferimento è stata rimossa mediante microbisturi per garantire un livello di lesione costante tra i campioni. Immediatamente dopo l'amputazione (0 h), sono state acquisite immagini con un microscopio stereoscopico a fluorescenza. Dopo l'amputazione, gli embrioni sono stati trasferiti nel corrispondente mezzo di trattamento a base di E3 per il saggio di rigenerazione. Le soluzioni lavorative di Mollugin sono state preparate diluendo la soluzione madre di Mollugin nel mezzo E3 fino a concentrazioni finali di 22, 66 e 200 µg/mL. Il Mollugin è stato somministrato per esposizione in bagno durante il periodo di rigenerazione. Per uniformare l'esposizione al veicolo, il gruppo di controllo non lesionato e il gruppo modello lesionato sono stati mantenuti nel mezzo E3 contenente lo 0,5% di DMSO, corrispondente alla concentrazione finale di DMSO nel gruppo con 200 µg/mL di Mollugin. Gli embrioni sono stati mantenuti in piastre a 6 pozzetti a 28,5 °C per 2 giorni, con rinnovo giornaliero del corrispondente mezzo di trattamento a base di E3. La rigenerazione è stata documentata mediante acquisizione di immagini a 24 e 48 h dall'amputazione, sia in luce bianca che in condizioni di fluorescenza, per valutare la ricrescita della coda e la distribuzione dei macrofagi. Le misurazioni delle immagini sono state effettuate con ImageJ.
Per la quantificazione della rigenerazione, l'area della coda recuperata è stata misurata come area assoluta in µm2 e non è stata normalizzata rispetto alla dimensione dell'embrione o alla dimensione originale della coda. Per ridurre al minimo la variabilità, tutti gli embrioni sono stati amputati allo stesso punto di riferimento anatomico immediatamente posteriore alla punta della notocorda, e lo stesso punto di riferimento è stato utilizzato per definire la regione di misurazione tra i diversi gruppi. Le regioni di interesse sono state delineate manualmente in ImageJ sulla base del contorno della coda, e l'analisi è stata eseguita da un ricercatore cieco rispetto ai gruppi di trattamento. Per la quantificazione dell'area positiva per macrofagi, le immagini della fluorescenza GFP di embrioni Tg(mpeg1:GFP) sono state analizzate in ImageJ. La regione di lesione/rigenerazione della coda è stata definita manualmente come regione di interesse utilizzando lo stesso punto di riferimento anatomico impiegato per la misurazione dell'area della coda. Le immagini sono state convertite in scala di grigi a 8 bit e la fluorescenza di fondo è stata sottratta utilizzando le stesse impostazioni di correzione dello sfondo per tutte le immagini all'interno dello stesso esperimento. Successivamente, è stata applicata uniformemente a tutte le immagini all'interno di ciascun esperimento una soglia fissa di fluorescenza per identificare i segnali associati ai macrofagi GFP-positivi. L'area positiva per macrofagi è stata calcolata come area GFP positiva rispetto alla soglia all'interno della ROI definita. Le misurazioni si sono basate sull'area positiva alla fluorescenza piuttosto che sull'intensità della fluorescenza o sul conteggio manuale delle cellule. Tutte le analisi delle immagini sono state eseguite da un ricercatore cieco rispetto ai gruppi di trattamento.
Estrazione dell'RNA e PCR quantitativa in tempo reale (qRT-PCR)
Al termine del saggio di rigenerazione, gli embrioni di ciascuna condizione sperimentale sono stati raccolti e raggruppati (almeno 20 embrioni per gruppo) per l'analisi dell'RNA. Per ogni condizione, un replicato biologico è costituito da un campione raggruppato contenente almeno 20 embrioni dello stesso gruppo sperimentale. Sono stati preparati tre replicati biologici indipendenti raggruppati per ogni condizione e utilizzati per l'analisi statistica. L'RNA totale è stato isolato dopo omogeneizzazione meccanica in un reagente di estrazione dell'RNA a base di fenolo/guanidina. La qualità e la concentrazione dell'RNA sono state valutate mediante spettrofotometria misurando i rapporti A260/A280. La sintesi del DNA complementare (cDNA) è stata effettuata utilizzando un kit commerciale di trascrizione inversa. L'amplificazione PCR è stata eseguita con reagenti SYBR Green. Le condizioni di termociclaggio per la qRT-PCR sono state le seguenti: denaturazione iniziale a 95 °C per 30 s, seguita da 40 cicli di denaturazione a 95 °C per 5 s e annealing/estensione a 60 °C per 30 s. Sono stati misurati i livelli di espressione dei geni associati all'apoptosi (caspasi-3 e Bcl-2), all'infiammazione (TNF-α, IL-1β, IL-6, NF-κB1, TLR4, CCL2 e ICAM1) e al fenotipo dei macrofagi (iNOS e arginasi-1). Il gene β-actina è stato utilizzato come gene di riferimento. Le variazioni di espressione genica sono state determinate con il metodo 2−ΔΔCt. Le informazioni sui primer sono riportate in Tabella 1.
Saggi di attività per SOD e CAT
I livelli di SOD e CAT sono stati utilizzati per valutare lo stato antiossidante dopo la lesione della coda. A 48 h dall'amputazione, i pesci zebra di ciascun gruppo sono stati raccolti e omogeneizzati in PBS freddo. Dopo la centrifugazione, gli estratti chiarificati sono stati utilizzati per la misurazione di SOD e CAT mediante kit commerciali per saggi di attività. L'attività della SOD è stata misurata usando un kit per saggio basato sul WST-1, secondo le istruzioni del produttore. I campioni sono stati caricati su piastre per saggi a 96 pozzetti insieme ai campioni standard e l'assorbanza è stata letta con un lettore per micropiastre. Le attività enzimatiche sono state determinate a partire dalle curve standard. Tutti i saggi sono stati eseguiti in triplicato.
Analisi statistica
I dati sono espressi come media ± errore standard della media (SEM) di almeno tre esperimenti indipendenti. Per il saggio di tossicità, ogni esperimento indipendente è costituito da un lotto di embrioni, con 20 embrioni per gruppo e pozzetti in triplicato. Per l'analisi dell'immagine della rigenerazione e dell'immagine dei macrofagi nei zebrafish Tg(mpeg1:GFP), singoli embrioni sono stati utilizzati come unità di misura, e sono stati analizzati 10 embrioni per gruppo. Per l'analisi qRT-PCR, un replicato biologico è costituito da un campione raggruppato contenente almeno 20 embrioni dello stesso gruppo sperimentale, e sono stati analizzati tre replicati biologici raggruppati indipendenti per ogni condizione. Per l'analisi dell'attività SOD e CAT, sono stati analizzati cinque replicati biologici raggruppati indipendenti per ogni condizione. Le differenze tra i gruppi sono state analizzate mediante ANOVA a un fattore con test post hoc di Tukey. Le analisi statistiche sono state eseguite con GraphPad Prism. Le differenze con p < 0,05 sono state considerate significative.