Analisi digitale della canalografia intraoperatoria della fluoresceina negli occhi umani durante la canaloplastica ab-interna

Sommario

Questo studio presenta un flusso di lavoro open-source standardizzato per quantificare la canalografia fluoresceina intraoperatoria durante la canaloplastica ab-interno, che può essere utilizzato per valutare i modelli di uscita dell'umor acquoso e potenzialmente prevedere l'esito post-operatorio riguardo alla pressione intraoculare.

Abstract

La canaloplastica dell'interno (AbiC) è un intervento chirurgico per il glaucoma minimamente invasivo progettato per migliorare l'uscita fisiologica dell'umore acquoso tramite la dilatazione circonferenziale del canale di Schlemm. Sebbene la canalografia della fluoresceina sia stata utilizzata intraoperatoriamente durante la canaloplastica ab-esterna per visualizzare le vie di uscita, la sua applicazione quantitativa durante l'AbiC non è ancora stata valutata. Questo studio introduce un flusso di lavoro standardizzato per l'analisi quantitativa della canalografia intraoperatoria della fluoresceina durante l'AbiC, con l'obiettivo di valutare i modelli di uscita dell'umor acquoso e il loro potenziale valore predittivo per gli esiti chirurgici. A tal fine, AbiC è stato eseguito con viscoelasticità tinta con fluoresceina e sono state acquisite immagini di canalografia di fase precoce e avanzate durante l'intervento. È stato sviluppato un flusso di lavoro di analisi delle immagini passo dopo passo utilizzando il software open-source per l'analisi delle immagini per quantificare la colorazione subcongiuntiva con fluoresceina. Sono stati applicati tre approcci complementari: misurazione dell'intensità della colorazione circonferenziale utilizzando anelli concentrici attorno alla cornea, analisi basata su quadranti della colorazione segmentaria e valutazione qualitativa dei modelli di colorazione focale corrispondenti a possibili siti di alterazione della rete trabecolare. Casi esemplari suggerivano che una colorazione estesa e omogenea con fluoresceina attraverso i quadranti fosse associata a una riduzione sostenuta della pressione intraoculare e all'indipendenza dal farmaco, mentre colorazioni limitate ed eterogenee venivano osservate negli occhi con risultati meno favorevoli. Questo flusso di lavoro consente quindi una valutazione riproducibile e quantitativa del flusso dell'umore acquoso durante l'AbiC, senza richiedere competenze nell'analisi delle immagini, e può essere utilizzato per prevedere il successo della chirurgia minimamente invasiva del glaucoma.

Introduzione

Il glaucoma è una malattia multifattoriale con neuropatia ottica progressiva ed è una delle cause più comuni di cecità a livello^{mondiale 1,2}. Sono stati identificati vari fattori che contribuiscono alla patogenesi del glaucoma - tra cui la vulnerabilità strutturale della lamina cribrosa, la perfusione oculare compromessa, la genetica e i processi autoimmuni - ma l'unico fattore di rischio modificabile rimane l'elevata pressione intraoculare (IOP⁾3,4,5,6,7,8 . Il sottotipo più comune, il glaucoma primario ad angolo aperto (POAG), è caratterizzato da un aumento della resistenza all'uscita che porta a una riduzione dell'umore acquoso e quindi a un aumento a lungo termine della^{IOP 9}. Questo porta alla perdita delle fibre nervose retiniche e a difetti del campo visivo con il progredire della malattia.

Sono disponibili diverse strategie terapeutiche, selezionate in base alla gravità e alla durata del glaucoma e alla PIO misurata. Se la terapia topica per ridurre la PIO con colliri non è efficace o non tollerata dal paziente, possono essere eseguite procedure laser o interventi^{chirurgici 10,11}. Oltre ai tradizionali interventi di filtraggio come la trabeculectomia, esistono ora una varietà di interventi per il glaucoma minimamente invasivi a basso rischio (MIGS⁾¹². Queste includono la canaloplastica ab-interna (AbiC), che, a differenza della canaloplastica ab-esterna, non richiede un'incisione della sclera né la creazione di un^{lembo 13}. L'approccio ab-interno offre una procedura significativamente meno invasiva, in cui nessuna sutura viene lasciata come materiale estraneo. È stato inoltre dimostrato che l'effetto corrisponde a quello dell'approccio ab-externo, con una gestione significativamente più semplice e meno^{complicazioni 14,15}. Un ulteriore vantaggio di AbiC è che il tessuto congiuntivale viene preservato per interventi futuri, se necessario.

In questa procedura, dopo aver valutato la camera anteriore tramite un'incisione corneale, un microcatetere viene inserito nel canale di Schlemm con l'ausilio di un gonioscopio, incidendo la rete trabecolare e attraversandola in un cerchio di 360°. Un viscoelastico espande il canale di Schlemm e le ostie dei canali collettori e può indurre micro-rotture focali della rete^{trabecolare 16}. Si ritiene che questi effetti facilitino il flusso dell'umore acquoso riducendo la resistenza all'interno del percorso di uscita convenzionale, in accordo con l'anatomia e la fisiologia dell'occhio e migliorando l'accesso ai canali collettori, anche se i meccanismi esatti non sono ancora pienamente^{compresi 17}. Inoltre, l'AbiC può essere combinato con la chirurgia della cataratta, che fornisce una riduzione aggiuntiva dell'IOP. In questo contesto, la visualizzazione intraoperatoria delle vie di uscita può fornire informazioni indirette sullo stato funzionale della rete trabecolare e del sistema di uscita distale.

La canaloplastica ab-esterna è già stata combinata con canalizzazione intraoperatoria con fluoresceina per visualizzare le vie di uscita 18,19,20. Gli occhi con aree più macchiate della sclera e quindi un migliorato flusso dell'umore acquoso mostrarono una PIO più bassa un anno dopo la procedura. La canalizzazione intraoperatoria può quindi essere utilizzata per prevedere l'effetto dell'intervento¹⁹. Per quanto ne sappiamo, non è ancora stato indagato se ciò valga anche per AbiC. L'obiettivo di questo studio è quindi valutare un flusso di lavoro per analizzare la canalizzazione intraoperatoria durante AbiC. Abbiamo sviluppato questo flusso di lavoro per quantificare l'intensità e l'estensione della colorazione con fluoresceina subcongiuntivale in una fase iniziale e una tarda. Questa è la prima valutazione dell'effetto del viscoelastico fluoresceinizzato in AbiC.

Successivamente, si può indagare se vi sia una correlazione tra la quantificazione delle aree colorate e l'entità del flusso individuale dell'umore acquoso, nonché la riduzione del farmaco IOP o quello che abbassa l'IOP usato postoperatoriamente. Si ipotizza che una colorazione più forte e quindi un flusso visibilmente più alto dell'umorismo acquoso significherebbe anche una maggiore riduzione dell'IOP e dell'uso di farmaci. La divisione in quadranti sarà utilizzata per testare se il flusso di uscita è significativamente modificato a seconda della localizzazione anatomica.

Nel lungo termine, il flusso di lavoro presentato sarà utilizzato per chiarire se il successo di AbiC può essere previsto sulla base della colorazione con fluoresceina e può essere utilizzato anche per altri trattamenti chirurgici necessari.

Protocollo

Dichiarazione etica:

Questo studio è stato condotto in conformità con la Dichiarazione di Helsinki. È stato considerato non interventista in quanto una revisione retrospettiva dei dati dei pazienti raccolti come parte della pratica medica regolare. Non sono stati perseguiti approcci terapeutici prospettici e tutti i trattamenti sono stati somministrati di routine come parte dell'assistenza standard. Il Comitato Etico di Bonn ha esaminato il protocollo dello studio e ha rinunciato al consenso informato dato il disegno non interventistico (n. 2026-220). I dati dei pazienti sono stati de-identificati prima dell'analisi.

1. AbiC e canalizzazione intraoperatoria

NOTA: Esegui AbiC in ciascun occhio utilizzando il sistema di canaloplastica basato su microcateteri. La procedura seguente descrive l'uso di questo dispositivo. Eseguire AbiC sia come procedura autonoma sia al termine di un intervento di cataratta senza eventi concreti tramite facoemulsificazione.

1. Posizionare lo speculum del coperchio in modo che sia visibile il più tessuto sclerale possibile per l'analisi successiva.
2. Applicare anestesia topica, come il cloridrato di proxeta metacaina. Disinfettare l'occhio da operare con iodio. Somministrare anestetici parabulbari.
3. Standardizzare le impostazioni del microscopio per tutti i pazienti.
   NOTA: Per l'AbiC, imposta il microscopio al 20% di luce LED, 100% di riflesso del fondo del fondo e 0% di luce circostante. Per la canalografia, imposta il microscopio al 100% luce LED, 0% riflesso del fondo del fondo e luce circostante al 100–0%.
4. Applica le impostazioni allo Zeiss Lumera (microscopio chirurgico oftalmico). Le impostazioni possono variare per altri modelli di microscopio.
   NOTA: Utilizzare un approccio temporale, indipendentemente dal fatto che la procedura sia autonoma o combinata.
5. Crea una o due paracentesi da 1,0 mm a 2 ore di distanza dalla posizione temporale del sedile, circa 1 mm nella cornea trasparente.
6. Riempi la camera anteriore con viscoelasticità.
7. Inclinare la testa del paziente lontano dal lato del chirurgo a un angolo di circa 30°. Inclina il microscopio a un angolo di circa 30°. Concentrati sul tessuto iride periferico e porta in campo visivo l'angolo della camera anteriore.
8. Mescola il viscoelastico con il colorante alla fluoresceina.
   1. Aspirare 0,05 mL di fluoresceina molto lentamente nel viscoelastico usando una cannula sterile, così da creare una singola caverna all'interno del viscoelastico.
   2. Lascia diffondere la fluoresceina per 5–10 minuti.
   3. Premere lentamente lo sturalavandini della siringa viscoelastica per esprimere completamente la caverna riempita di fluoresceina.
9. Riempire il dispositivo microcatetere con viscoelastico tinto con fluoresceina.
10. Testare il dispositivo facendo avanzare il microcatetere oltre la punta del dispositivo iniettore.
11. Applica idrossimetilcellulosa sulla cornea. Inserire il microcatetere AbiC nella camera anteriore attraverso la paracentesi. Posizionare un gonioprisma, come una lente gonioprisma di Scyne-Jacob, sulla cornea.
12. Usa la punta del dispositivo per incidere la rete trabecolare. Usa l'attuatore blu del dispositivo per far avanzare il microcatetere nel canale di Schlemm.
13. Avanzare il microcatetere di 360° attraverso il canale di Schlemm mentre somministra dodici bolo da 2,5 μL di viscoelastico tinto ruotando il viscoiniettore.
14. Somministrare un bolus da 2,5 μL per orario di clock.
15. Ritrae lentamente il microcatetere di 360° mentre somministra dodici bolo viscoelastici da 2,5 μL.
16. Rimuovi il microcatetere dalla camera anteriore. Rimuovere il gonioprisma dalla superficie oculare.
17. Riallineare la testa del paziente e il microscopio in una posizione dritta per garantire una visuale standardizzata e dritta dell'occhio. Risciacquo la cornea per rimuovere il colorante e l'idrossimetilcellulosa.
    NOTA: Se necessario, utilizzare un tampone per rimuovere eventuali macchie superficiali ed evitare interpretazioni errate di una decolorazione superficiale.
18. Passa al filtro per la luce blu. Registra la fase iniziale della canalografia usando video o una serie fotografica.
19. Indietro lo zoom per visualizzare quanta più tessutura sclerale possibile e assicurati che l'immagine sia a fuoco.
20. Una volta fatto, spegni il filtro per la luce blu.
    ATTENZIONE: Utilizzare sonde bimanuali di irrigazione/aspirazione per rimuovere la viscoelasticità dalla camera anteriore. Previene il reflusso sanguigno mantenendo la camera anteriore sotto irrigazione con soluzione salina equilibrata fino a quando la paracentesi non sarà idratata.
21. Iniettare cefuroxima intracameralmente.
22. Torna al filtro per la luce blu. Registra la fase finale della canalizzazione usando video o una serie fotografica circa 2 minuti dopo che l'immagine è stata scattata per la fase iniziale.
23. Indietro lo zoom per visualizzare quanta più tessutura sclerale possibile e assicurati che l'immagine sia a fuoco.
24. Spegni il filtro per la luce blu e inietta dexametasone in subcongiuntiva.

2. Esportazione delle immagini e archiviazione dati

1. Scarica le immagini dal tuo software per microscopio, Zeiss Forum.
2. Apri la cartella paziente corrispondente al numero paziente nel software del microscopio e usa il pulsante "Esporta" per memorizzare le immagini in una cartella selezionata.
3. Dividi le immagini esportate in cartelle per fase iniziale e fase avanzata.
4. Nomina ogni immagine usando il formato "Patient No._Eye_Image_No." e salva le immagini in formato JPEG.

3. Quantificazione del flusso di uscita sottocongiuntivale tramite FIJI

NOTA: Applica questo flusso di lavoro sia alle fasi iniziali che a quelle avanzate della channelografia.

1. Carica un'immagine canalografia in FIJI²¹ (software open-source per l'analisi delle immagini). Ritaglia l'immagine in modo che sia visibile solo l'occhio operato. Disegna un rettangolo usando lo "Strumento rettangolo" e seleziona "Ritaglia > immagine" dal menu.
2. Disegna il diametro corneale da bianco a bianco sull'immagine usando lo strumento "Straight Line Tool". Misura orizzontalmente dal limbo nasale a quello laterale. Imposta il diametro corneale da bianco a bianco come scala usando il diametro corneale noto dalla biometria preoperatoria sotto "Analizza > Set Scale > Known Distance (unità)".
3. Usa lo "Strumento Poligonale" per segnare il confine tra la cornea e la sclera usando almeno 24 punti. Se necessario, rivedere il video chirurgico o l'immagine dell'altra fase per identificare meglio il bordo corneale. Utilizzare punti di riferimento come vasi congiuntivali e la base della micro-rottura trabecolare nella fase iniziale.
4. Premi "T" sulla tastiera oppure seleziona "Image > Overlay > To ROI Manager" per aprire il ROI Manager e salvare la marcatura corneale come ROI. Salva l'immagine per analisi successive, se necessario.
5. Premi "Del" sulla tastiera oppure seleziona "ROI Manager > More > Fill" per eliminare la cornea.
   NOTA: Assicurati che l'area ritagliata appaia nera. Se necessario, regola il colore usando lo strumento "Color Picker".
6. Converti l'immagine fissa in un'immagine binaria in bianco e nero usando lo strumento "Soglia di colore" sotto "Modifica > immagine". Dopo aver aperto lo strumento, seleziona "Default" come metodo di soglia, "Black & White" come colore di soglia e "HSB" come spazio colore. Rimuovi i segni dalle caselle "Passa" per ogni impostazione e dalla casella "Sfondo Scuro".
7. Assicurati che le aree bianche corrispondano a una macchia gialla da fluoresceinata viscoelastica. Se necessario, regola questo usando lo strumento "Selettore di colori".
8. Standardizza l'immagine binarizzata utilizzando una delle seguenti tre opzioni di impostazione per consentire una migliore comparabilità tra le immagini.
   1. Per impostazioni completamente standardizzate per l'intero collettivo di pazienti, imposta la barra superiore su "Tonalità" = 140, "Saturazione" = 205 e "Luminosità" = 205. Imposta la barra inferiore su "Tonalità", "Saturazione" e "Luminosità" = 255.
   2. Per impostazioni parzialmente standardizzate, scegli individualmente la barra superiore "Tonalità" e imposta la barra superiore "Saturazione" e "Luminosità" = 255. Imposta la barra inferiore "Tonalità", "Saturazione" e "Luminosità" = 255.
   3. Per impostazioni completamente personalizzate, scegli ogni impostazione della barra superiore singolarmente per ogni immagine. Imposta la barra inferiore "Tonalità", "Saturazione" e "Luminosità" = 255.
9. Confronta l'immagine binarizzata con l'immagine originale usando la funzione "stack" o il confronto diretto.
10. Scegli un'impostazione minimale per le impostazioni parzialmente standardizzate e completamente personalizzate, che rappresenti comunque le aree più chiare evitando la sovrarappresentazione di aree fortemente colorate. Se necessario, elimina riflessi di luce o coloranti superficiali. Segna l'artefatto con lo "Strumento Poligono" e premi "Del" oppure seleziona "ROI Manager > Più > Riempire".
11. Seleziona il nero come colore di riempimento sotto "Image > Color > Color Picker" così che le aree ritagliate non vengano conteggiate erroneamente come colorante.
12. Cambia il tipo di immagine in "32 bit" tramite "Image > Type". Normalizza le impostazioni tramite "Processa > Migliora il contrasto" e imposta "% di pixel saturi = 0,35".
13. Quantificare la quantità di uscita dell'umorismo acquoso usando l'approccio 1, 2 o 3 come menzionato di seguito.
    1. Approccio di quantificazione 1: Percentuale di colorazione con fluoresceina dell'area totale circolare al di fuori della cornea.
       NOTA: Usa questo approccio per registrare la percentuale di colorazione con fluoresceina dell'area totale circolarmente fuori dalla cornea.
       1. A seconda della sezione dell'immagine e della larghezza dell'apertura della palpebra, proiettano tre anelli attorno alla demarcazione corneale tracciata in precedenza, ciascuno di 1 mm di larghezza.
       2. Seleziona la marcatura corneale nel ROI Manager e scegli "Modifica > selezione > Crea la banda: 1".
       3. Recupera la percentuale di superficie macchiata nel primo anello. Seleziona "Analizza > imposta le misurazioni > valore grigio medio > OK", e premi "Ctrl + M" sulla tastiera oppure seleziona "Analizza > misura".
       4. Annota i valori dalla tabella che si apre.
       5. Premi "T" sulla tastiera oppure seleziona "Image > Overlay > To ROI Manager" per salvare il primo squillo nel ROI Manager.
       6. Ripetere i passaggi 3.13.1.2 - 3.13.1.5 per il secondo e terzo anelli usando 2 o 3 unità per l'estensione degli anelli, partendo dal segno corneale o da 1 unità dell'anello precedentemente disegnato.
       7. Controlla l'immagine originale per confermare che gli anelli contengano solo congiuntiva.
       8. Salva l'immagine binarizzata sotto "File > salva come > Tiff" e chiamala usando il formato "Patient ID_phase_Ring".
       9. Salva i risultati corrispondenti tramite "File > salva come" e chiamali di conseguenza.
       10. Salva il corrispondente ROI Manager cliccando su "Deseleziona", poi su "Più > Salva" e chiamalo di conseguenza.
    2. Approccio di quantificazione 2: Analisi basata sui quadranti della colorazione percentuale
       NOTA: Usa questo approccio per analizzare la percentuale di colorazione singolarmente per ogni quadrante.
       1. Completare i passaggi 3.1–3.13.1.1.10 prima di iniziare l'analisi del quadrante.
       2. Disegna un rettangolo usando lo "Strumento Rettangolo" in modo che rappresenti esattamente metà dell'immagine.
       3. Premi "Del" sulla tastiera oppure seleziona "ROI Manager > Più > Riempire" in modo che rimanga solo metà dell'immagine.
       4. Disegna un secondo rettangolo che rappresenta metà dell'immagine rimanente.
       5. Premi "Del" sulla tastiera oppure seleziona di nuovo "ROI Manager > Più > Riempire" in modo che un quarto dell'immagine binarizzata originale rimanga.
       6. Anche se la cornea selezionata non è perfettamente rotonda, si cerca di identificare un quadrante che misura il più vicino possibile a 0,25 usando prima due metà esatte.
       7. "Deseleziona" i tre anelli dal primo approccio tramite il ROI Manager.
       8. Clicca su "More > Multi Measure > One Row per Slice" per determinare la proporzione colorata.
       9. Annota i risultati dalla tabella che si apre.
       10. Ripeti i passaggi 3.13.2.2 - 3.13.2.9 per i tre quadranti rimanenti.
       11. Salva tutte le immagini binarizzate del quadrante sotto "File > Save As > Tiff" e chiamale usando il formato "Patient ID_phase_Quadrant".
       12. Salva i risultati corrispondenti tramite "File > salva come" e nominali di conseguenza.
       13. Salva il corrispondente ROI Manager cliccando su "Deseleziona", poi su "Più > Salva", e chiamalo di conseguenza.
    3. Approccio di quantificazione 3: Analisi dei modelli di colorazione focali corrispondenti a alterazioni locali della rete trabecolare
       NOTA: Utilizzare questo approccio per valutare i modelli di colorazione focale che possono corrispondere a alterazioni localizzate della rete trabecolare. Durante l'avanzamento del canale di Schlemm, il catetere può indurre micro-rotture nella parete interna della rete trabecolare e influenzare ernie della parete interna della rete trabecolare verso ostia del canale collettore. Pertanto, analizza le immagini della fase iniziale utilizzando questo approccio.
       1. Completare i passaggi da 3.1 a 3.4.
       2. Clicca su "Modifica > Fai Inverso".
       3. Premi "Del" sulla tastiera oppure seleziona "ROI Manager > Più > Riempire" per eliminare il tessuto sclerale e poi l'unica analisi delle micro-rotture trabecolari all'interno dell'anello corneale.
       4. Assicurati che l'area esterna all'anello corneale sia nera. Se necessario, regola il display in bianco e nero usando lo strumento "Selettore colore".
       5. Disegna un anello leggermente più piccolo all'interno del ROI corneale selezionando prima il ROI corneale nel ROI Manager.
       6. Clicca su "Modifica > selezione > ingrandire > -0,2" in modo che all'interno dell'anello corneale appaia un anello più stretto di 0,2 mm.
       7. Premi "T" sulla tastiera oppure seleziona "Image > Overlay > To ROI Manager".
       8. Clicca su "Modifica > selezione > Fai la banda > 0,2" in modo che appaia un anello più largo di 0,2 mm.
       9. Posizionare questo anello sull'anello corneale per fornire il confine esterno, in modo che solo l'area tra i due anelli possa essere analizzata.
       10. Premi "T" sulla tastiera per salvare l'anello come ritorno sul ritorno.
       11. Apri "Image > Adjust > Color Threshold" per controllare le impostazioni della soglia.
       12. Usa impostazioni parzialmente standardizzate. Scegli individualmente la barra superiore "Tonalità", imposta la barra superiore "Saturazione" e "Luminosità" = 255, e imposta la barra inferiore "Tonalità", "Saturazione" e "Luminosità" = 255.
       13. Scegli impostazioni di colore che permettano al colore di riempire le aree dell'anello interno che mostrano una rottura trabecolare.
       14. Assicurati che le aree colorate appaiano bianche nell'immagine binarizzata.
       15. Se necessario, elimina gli artefatti e i luoghi in cui sono stati creati i paracentesi. Segna le aree con lo "Strumento Poligono" e premi "Del".
       16. Seleziona il nero come colore di riempimento sotto "Image > Color > Color Picker" in modo che le aree ritagliate non vengano conteggiate erroneamente come tintura.
       17. Clicca su "Più > Più Misure > Una Riga per Fetta".
       18. Annota i risultati dalla tabella che si apre.
       19. Salva le immagini binarizzate sotto "File > Salva come > Tiff" e chiamale usando il formato "Patient ID_phase_microruptures".
       20. Salva i risultati corrispondenti tramite "File > Salva come" e nominali di conseguenza.
       21. Salva il corrispondente ROI Manager cliccando su "Deseleziona", poi su "Più > salva", e chiamalo di conseguenza.
14. Per la compilazione dei dati, apri un foglio di calcolo Excel.
15. Copia tutte le tabelle dei risultati precedentemente raccolte in un unico foglio di calcolo.
16. Per i risultati dell'analisi dei quadranti, moltiplicare ogni valore per quattro in modo che i valori rappresentino la colorazione in un'immagine completa e possano essere confrontati con gli altri approcci.

La Figura 1 fornisce una panoramica del flusso di lavoro.

Figura 1: Panoramica schematica del flusso di lavoro utilizzato per quantificare il flusso dell'umorismo acquoso dopo la canaloplastica ab-interna (AbiC). La procedura include l'acquisizione intraoperatoria della canalizzazione della fluoresceina, l'elaborazione delle immagini con software software open source per l'analisi delle immagini, la binarizzazione e standardizzazione delle immagini e l'analisi quantitativa dei modelli di colorazione con fluoresceina. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Risultati

Sono stati inclusi pazienti sopra i 18 anni con diagnosi di glaucoma che avevano subito AbiC sia in modo autonomo che in combinazione con un intervento di cataratta. Inoltre, le immagini di canalografia dovevano essere disponibili almeno nelle fasi iniziali o avanzate. Una precedente trabeculoplastica laser selettiva non era un criterio di esclusione, a differenza di altre procedure chirurgiche per il glaucoma. Inoltre, nessun paziente con danni avanzati da glaucoma è stato incluso nello...

Discussione

Questo flusso di lavoro fornisce una guida passo dopo passo per utilizzare software open-source di analisi delle immagini per quantificare la quantità di uscite acquose di umorismo dopo AbiC. Le funzionalità del software open-source per l'analisi delle immagini forniscono modelli facili da usare che non richiedono alcuna conoscenza di programmazione e possono essere applicati dai medici senza supporto tecnico. Questo approccio aiuterà a valutare il flusso dell'umorismo acquoso dopo AbiC ...

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo

Nome	Azienda	Numero di catalogo	Commenti
Balanced Salt Solution	Bausch & Lomb	Ref.: BL705004
Bi-manual irrigation/aspiration probes	Zeiss	Ref.: 303060-0165-000
Cefuroxim	Laboratoires Thé&a	PZN: 09755705	Pre-mixed by the pharmacy
Dexamethasone	Dr. Winzer	PZN: 02192162
FIJI (ImageJ)	n/a	n/a	Open-source image analysis software
Fluorescein dye	Alcon	PZN: 01467007
Healon Pro Viscoelastic	Johnson & Johnson	Ref.: 10-3100-12
Hydroxymethylcellulose	Johnson & Johnson	Ref.: 10310012
Iodine solution	Mundipharma	PZN: 03930490
iPrism S gonioprism lens	Glaukos	Ref.: OTB/LH-2
iTrack Advance Canaloplasty System	Nova Eye Medical	Ref.: Track-ADS	Microcatheter-based canaloplasty system
Lumera 700 Surgical Microscope + Calysto	Zeiss	Ref.: 6726521526	Ophthalmic surgical microscope
Proxymetacaine hydrochloride	PUREN Pharma GmbH & Co. KG	PZN: 11055866
Sterile cannula	Braun	Ref.: 4657683