Tutte le procedure sono state approvate dal Comitato Etico Animale dell'Università di Medicina Cinese di Changchun (Approvazione n. 20251038) e sono state condotte in conformità con le linee guida Animal Research: Reporting of In Vivo Experiments (ARRIVE 2.0) nonché con la Guida NIH per la Cura e l'Uso degli Animali da Laboratorio. Tutti i materiali utilizzati in questo studio sono mostrati nella Tabella dei Materiali.
Procedure sperimentali
Animali sperimentali e raggruppamento
Ottanta maschi maschi specifici di Sprague–Dawley (SPF) (220–250 g) sono stati acquistati dalla Hongda Animal Breeding Farm (Distretto di Kuancheng, Changchun, Cina). Gli animali venivano ospitati presso il Centro Sperimentale per Animali dell'Università di Medicina Cinese di Changchun in condizioni controllate di 22–25 °C, umidità relativa del 50–60% e un ciclo di 12 ore di luce/oscurità, con libero accesso a cibo e acqua. Dopo 1 settimana di acclimatazione, i ratti sono stati assegnati casualmente a un gruppo vuoto (n = 12), un gruppo Sham (n = 12) e un gruppo modello-riserva (n = 56). Il gruppo blank è stato incluso come controllo normale e non trattato per fornire valori di base per la performance comportamentale, le caratteristiche istopatologiche e l'espressione dei marcatori molecolari nei ratti sani. Il gruppo Sham ha subito la stessa anestesia ed esposizione chirurgica del gruppo MCAO, tranne che non è stata eseguita l'occlusione arteriosa; Pertanto, questo gruppo fungeva da controllo per i potenziali effetti dell'anestesia e della manipolazione chirurgica. L'inclusione sia dei gruppi Blank che di Sham ha permesso di distinguere gli effetti della lesione ischemica da quelli relativi alla procedura chirurgica stessa.
Il gruppo modello-riserva fu sottoposto a modellazione MCAO. I primi 3 giorni dopo l'intervento sono stati definiti come periodo di induzione del modello. Durante questo periodo, 8 ratti su 56 morirono, corrispondente a un tasso di mortalità del 14,29%, e 12 ratti furono esclusi perché la modellizzazione non ebbe successo. I restanti 36 ratti con successo nell'istituzione del modello sono stati assegnati casualmente, utilizzando una tabella dei numeri casuali, ai gruppi MCAO, SAE e Baclofen, con 12 ratti in ciascun gruppo. Gli interventi di gruppo erano i seguenti: (I) Gruppo bianco: solo alimentazione di routine, senza intervento. (II) Gruppo fittizio: esposizione chirurgica dell'arteria carotide comune, delle arterie carotide interne ed esterne, e del nervo vago, senza legatura o inserimento di filamenti. (III) Gruppo MCAO: MCAO è stato stabilito sotto anestesia intraperitoneale con pentobarbital sodio al 3%, senza trattamento successivo. (IV) Gruppo SAE: dopo una modellazione e validazione MCAO di successo, i ratti hanno ricevuto agopuntura del cuoio capelluto combinata con esercizio fisico. L'anestesia per inalazione di isoflurano all'1,5%–2,0% è stata utilizzata solo durante la breve fase di inserimento dell'ago. L'addestramento sul tapis roulant è stato avviato solo dopo il pieno recupero della coscienza e il recupero della capacità di camminare spontaneamente. L'agopuntura è stata eseguita a GV20 e bilaterale EX-HN1. Gli aghi venivano inseriti fino a una profondità di 1 mm e mantenuti durante il periodo di addestramento sul tapis roulant. Il periodo standardizzato di 30 minuti per la ritenzione/addestramento con il ferro è stato definito come il periodo di addestramento sul tapis roulant e consisteva in 6 m/min per 10 minuti, seguiti da 12 m/min per 20 minuti con inclinazione 0°. L'intervento è stato somministrato una volta al giorno per 7 giorni consecutivi. (V) Gruppo Baclofene: dopo una modellazione e validazione MCAO riuscite, i ratti hanno ricevuto baclofene tramite gavage intragastrico a 0,4 mg/kg una volta al giorno per 7 giorni consecutivi.
Istituzione del modello MCAO
Il modello MCAO del ratto è stato stabilito utilizzando un metodo modificato del filamentointraluminale 19. Dopo 12 ore di digiuno e privazione d'acqua, i ratti sono stati anestetizzati con iniezione intraperitoneale di pentobarbital sodio al 3% e posizionati in posizione supina. Dopo la disinfezione cutanea, è stata realizzata un'incisione cervicale mediana per esporre l'arteria carotide comune destra (CCA) e i nervi e i muscoli adiacenti. L'arteria carotide esterna (ECA) è stata identificata e legata, mentre l'arteria carotide interna (ICA) è stata isolata. Sono state posizionate delle legature all'ICA e CCA prossimali, e la CCA distale è stata temporaneamente clampata. È stata quindi eseguita una piccola arteriotomia nel CCA prossimale alla pinza. Un filamento di nylon da 0,26 mm fu inserito e avanzato di 18–20 mm attraverso l'ICA per occludere l'origine dell'arteria cerebrale media. L'ICA e il CCA sono stati successivamente legati e l'incisione è stata suturata. Dopo l'intervento, i ratti venivano tenuti al caldo durante il recupero e ricevevano un'iniezione intraperitoneale di penicillina (40.000 U) per prevenire infezioni. Nel gruppo Sham è stata eseguita solo l'esposizione vascolare, senza inserimento di filamento; la chiusura della ferita e le cure post-operatorie erano identiche a quelle del gruppo MCAO. L'istituzione con successo del modello è stata definita come un punteggio Zea Longa ≥ 2 3 giorni dopo l'intervento19 e un punteggio modificato della Scala Ashworth (MAS) del tono muscolare ≥ Grado1 20.
Metodi di intervntion
L'agopuntura al cuoio capelluto si combina con l'intervento di esercizio fisico
Studi precedenti mostrano che nei ratti MCAO i deficit neurologici raggiungono il picco al terzo giorno e rimangono elevati entro 10 giorni dall'intervento, mentre la resistenza muscolare periferica aumenta progressivamente dal giorno 6 al giorno9 del 21. Pertanto, il trattamento è stato avviato al terzo giorno post-operatorio e proseguito una volta al giorno per 7 giorni consecutivi al minimizzare l'impatto del recupero spontaneo. Prima della modellazione, i ratti assegnati al gruppo SAE hanno seguito 3 giorni di addestramento su tapis roulant adattivo a 5 m/min per 10 min/giorno22. Questo addestramento adattivo veniva utilizzato per familiarizzare i ratti con la corsa sul tapis roulant e per ridurre la probabilità di lottare, cadere, rifiutarsi di correre o fermarsi durante il periodo formale di intervento. Durante l'addestramento adattivo e l'intervento formale, gli eventi anomali legati al tapis roulant sono stati definiti come lotta persistente, cadute dalla corsia di corsa, rifiuto di correre per più di 1 minuto o fermarsi per più di 1 minuto durante l'allenamento sul tapis roulant. Questi eventi sono stati registrati nei registri sperimentali quando sono stati osservati. Esitazioni brevi o fermate temporane non portavano all'esclusione se si poteva riprendere la corsa sul tapis roulant dopo un leggero stimolo. I dati venivano esclusi solo se un animale non riusciva a completare la sessione giornaliera assegnata sul tapis roulant a causa di cadute ripetute, rifiuto persistente di correre o grave disagio. Dopo la validazione del modello con successo al terzo giorno, l'intervento SAE è stato somministrato una volta al giorno per 7 giorni consecutivi.
Per ogni sessione di trattamento, i ratti sono stati anestetizzati con isoflurano dall'1,5%–2,0%. L'anestesia è stata interrotta immediatamente dopo l'inserimento dell'ago. Nella pratica sperimentale, i ratti riacquistavano tipicamente piena coscienza entro circa 1–2 minuti dall'astinenza dell'isoflurano. L'addestramento sul tapis roulant non è stato iniziato mentre i ratti erano anestetizzati. I punti di agopuntura sono stati individuati da agopuntori animali esperti secondo la Nomenclatura e la Localizzazione dei Punti di Agopuntura Comuni negli Animali Sperimentali pubblicata dall'Associazione Cinese di Agopuntura-Moxibustion nel 2020. GV20 è stato definito come il punto medio della linea che collega le fontanelli anteriori e posteriori sulla linea mediana cranica. I punti bilaterali EX-HN1 erano posizionati lateralmente di 2 mm rispetto a GV20. Aghi usa e getta di 0,25 mm × 13 mm venivano inseriti verticalmente fino a una profondità di 1 mm e mantenuti durante il periodo standardizzato di addestramento su tapis roulant di 30 minuti. Gli aghi venivano fissati con nastro medico traspirante per evitare lo spostamento e la penetrazione del cranio veniva esclusa tramite palpazione per garantire la coerenza procedurale. La posizione dell'ago e la fissazione del nastro venivano controllate prima dell'allenamento sul tapis roulant, durante brevi pause se si verificavano comportamenti di corsa anomali e immediatamente dopo il completamento dell'addestramento. Inoltre, la posizione dell'ago veniva controllata visivamente ogni 5 minuti durante l'addestramento sul tapis roulant, indipendentemente dal comportamento animale. Lo spostamento dell'ago era definito come allentamento visibile, cambiamento dell'angolo dell'ago, ritiro parziale o completo spostamento durante la corsa sul tapis roulant. Se si verificava un leggero allentamento senza perdita della posizione dell'ago, il nastro veniva delicatamente rinforzato mentre il tapis roulant veniva brevemente fermato. Se un ago veniva parzialmente ritirato o completamente spostato, l'ago non veniva reinserito durante quella sessione; Il ratto completò l'addestramento rimanente sul tapis roulant senza ulteriori manipolazioni con l'ago, e l'evento fu documentato nel registro sperimentale. Gli animali non sono stati esclusi solo a causa di un singolo evento di spostamento di ago, a meno che l'evento non sia stato accompagnato da un'impossibilità di completare l'addestramento sul tapis roulant o da segni di grave disagio.
Il periodo standardizzato di 30 minuti di ritenzione/addestramento con aghi iniziava quando il ratto iniziava a correre sul tapis roulant dopo il completo recupero dall'anestesia isoflurano e terminava immediatamente dopo il completamento dell'addestramento sul tapis roulant, quando gli aghi venivano rimossi. Il breve intervallo di recupero dopo la sospensione dell'isoflurano non è stato incluso nel periodo di addestramento standardizzato di 30 minuti. Poiché gli aghi venivano inseriti prima del recupero, il tempo fisico effettivo di permanenza era circa 1–2 minuti più lungo rispetto al periodo di allenamento sul tapis roulant di 30 minuti. Questa definizione è stata applicata in modo coerente a tutti i ratti del gruppo SAE. Un ratto era considerato sufficientemente guarito per iniziare l'addestramento sul tapis roulant quando erano soddisfatti i seguenti criteri: piena recuperazione della coscienza, capacità di stare in piedi in modo indipendente, capacità di camminare con fermezza su una superficie piana e risposta normale a una stimolazione esterna delicata. Questi criteri venivano controllati prima di essere messi sul tapis roulant.
Durante la ritenzione degli aghi, i ratti hanno eseguito esercizi sul tapis roulant a inclinazione 0°: 6 m/min per 10 minuti, seguiti da 12 m/min per 20 minuti. Non è stato utilizzato scosso elettrico in nessun momento dello studio. Se un ratto smetteva di correre o si rifiutava di correre per più di 1 minuto durante l'addestramento formale, veniva utilizzata una stimolazione uditiva gentile e non avversiva, come un leggero tocco sulla parete del tapis roulant, per incoraggiare il movimento. L'uso di tale stimolo, così come eventuali difficoltà, cadute, arresti, rifiuti di correre o spostamenti dell'ago, sono stati documentati nel registro sperimentale quando osservati. Questi eventi sono stati monitorati descrittivamente e documentati nel registro sperimentale quando osservati. L'intensità dell'esercizio è stata adeguata in modo completo sulla base dei protocolli precedentemente riportati che combinavano agopuntura del cuoio capelluto con allenamento su tapisroulant 16,23. L'intervento SAE è stato somministrato una volta al giorno per 7 giorni consecutivi (Figura 1A).
Intervento con baclofeno
Dopo la validazione del modello con successo, i ratti del gruppo Baclofene hanno ricevuto una soluzione di baclofene tramite gavage intragastrico a una dose di 0,4 mg/kg. Il farmaco veniva somministrato una volta al giorno alle 9:00 per 7 giorni consecutivi.
Risultato medio
Osservazione generale
Le condizioni generali venivano monitorate quotidianamente in tutti i gruppi, inclusi peso corporeo, stato mentale, assunzione di cibo e acqua, e attività spontanea.
Valutazione della funzione neurologica e del tono muscolare
I deficit neurologici e la spasticità degli arti sono stati valutati nei giorni 1, 3, 5 e 7 dopo la validazione del modello utilizzando il punteggio Zea Longa, il rilevamento neurologico modificato (mNSS) e la scala di Ashworth modificata. Tutte le valutazioni comportamentali in tutti i momenti sono state condotte indipendentemente da due ricercatori che sono stati ciechi sull'allocazione dei gruppi durante tutto il periodo di osservazione. Sono mostrati criteri di punteggio dettagliati (Tabelle 1–3).
Determinazione del volume dell'infarto cerebrale
Il volume dell'infarto cerebrale è stato valutato utilizzando la colorazione con cloruro di 2,3,5-trifeniltetrazolio (TTC). Dopo 7 giorni di intervento, tre ratti di ciascun gruppo sono stati selezionati casualmente e soppressi con overdose intraperitoneale di pentobarbital sodico, seguita da una rapida decapitazione per la raccolta dell'intero cervello. I cervelli venivano prima congelati a −20 °C e poi tagliati in sezioni coronali spesse 2 mm. Le sezioni sono state incubate in una soluzione TTC al 2% a 37 °C per 30 minuti al buio, poi fissate durante la notte in paraformaldeide al 4% a 4 °C. Il giorno seguente, tutte le sezioni furono fotografate con una fotocamera digitale. Il tessuto cerebrale normale era colorato di rosso scuro, mentre il tessuto infartto appariva bianco pallido. Le aree dell'infarcto sono state quantificate con ImageJ, e il volume dell'infarto è stato espresso come percentuale usando la formula:
Volume dell'infarto (%) = area dell'infarto / area totale della sezione cerebrale X 100%. (1)
Esame istopatologico del tessuto cerebrale
Colorazione di ematossilina–eosina (HE)
La colorazione di ematossilina ed eosina è stata utilizzata per valutare i cambiamenti istopatologici nella corteccia peri-infarcta. Dopo 7 giorni di intervento, i ratti sono stati soppressi per overdose intraperitoneale di pentobarbital sodico. È stata quindi eseguita una rapida perfusione transcardica con soluzione salina tamponata fosfato (PBS) a 0,01 M per rimuovere il sangue, seguita da 250 mL di paraformaldeide fredda al 4% (4 °C) per la fissazione. Sono stati raccolti cervelli interi e il tessuto corticale peri-infartito è stato isolato e fissato al 4% di paraformaldeide a 4 °C per 24 ore. I tessuti erano incorporati nella paraffina e sezionati coronalmente a 5 μm. Le sezioni venivano montate su slide, cotte a 60 °C per 30 minuti e deparafinizzate in xilene I–III (10 minuti ciascuna). Successivamente veniva eseguita la colorazione HE, seguita da disidratazione e pulizia del prodotto. Infine, le sezioni venivano coperte con balsamo neutro e le immagini venivano acquisite con un microscopio luminoso Nikon.
Colorazione Nissl
La colorazione con Nissl è stata utilizzata per valutare la sopravvivenza neuronale e la densità corporea di Nissl nella regione peri-infartita. Dopo 7 giorni di intervento, i ratti sono stati soppressi e perfusi transcardicamente con 0,01 M PBS (37 °C), seguiti da 250 mL di paraformaldeide al 4% (4 °C). Sono stati rimossi interi cervelli e i tessuti corticali peri-infarti e controlaterali sono stati dissezionati e fissati durante la notte con paraformaldeide al 4% a 4 °C. Dopo l'immersione della paraffina, furono preparate sezioni da 5 μm. Le sezioni sono state deparafinizzate in xilene per 10 minuti, reidratate tramite una serie di soluzioni etanoliche gradate (95%, 90%, 80%, 70% e 50%; 5 minuti per ogni concentrazione), e colorate con soluzione di lavoro Nissl per 30 minuti a temperatura ambiente. Dopo un breve risciacquo con acqua distillata, le sezioni venivano disidratate con etanolo classificato, pulite nello xilene per 2 minuti e infine montate con coperture. Le immagini venivano catturate e analizzate al microscopio ottico.
Analisi del Western blot sull'espressione proteica
Il Western blotting è stato eseguito per valutare le proteine coinvolte nella segnalazione PI3K/Akt e nella plasticità sinaptica. Dopo 7 giorni di intervento, i ratti sono stati eutanasiati con un'overdose di pentobarbital sodico, e è stato raccolto tessuto della corteccia motoria peri-infarcto. I tessuti sono stati completamente omogeneizzati con il tampone di lisi a radioimmunoprecipitazione (RIPA) su ghiaccio e centrifugati a 1610 × g a 4 °C per 30 minuti per estrarre la proteina totale. La concentrazione proteica è stata quantificata utilizzando un kit commerciale di analisi proteica con acido bicinconinico (BCA). Quantità uguali di proteine (50 μg per corsia) sono state separate tramite elettroforesi in gel di dodecil solfato di sodio-poliacrilamide (SDS-PAGE) e trasferite elettricamente alle membrane di fluoruro di polivinilidene (PVDF). Le membrane sono state bloccate con una soluzione di albumina sirica al 5% (BSA) per 1 ora a temperatura ambiente per eliminare il legame aspecifico, quindi incubate con anticorpi primari durante la notte a 4 °C. Dopo tre cicli di lavaggio con soluzione salina Tris-buffer con Tween-20 (TBST), le membrane sono state incubate con anticorpi secondari (rapporto di diluizione 1:1000) per 1 ora a temperatura ambiente. Le bande proteiche sono state visualizzate utilizzando la chemiluminescenza potenziata (ECL), e l'intensità della banda è stata quantificata con ImageJ. L'espressione relativa della proteina è stata calcolata come il rapporto tra la proteina target e il controllo interno. Gli anticorpi primari erano i seguenti: GAPDH (1:1000), PI3K (1:1000), fosfo-PI3K (1:1000), Akt (1:1000), fosfo-Akt (1:1000), GAP-43 (1:1000), SYN (1:1000), PSD-95 (1:1000) e GDNF (1:1000).
Osservazione dell'ultrastruttura sinaptica
La microscopia elettronica a trasmissione (TEM) è stata utilizzata per valutare il numero di sinapsi e l'integrità strutturale. Dopo 7 giorni di intervento, i ratti sono stati anestetizzati e perfusi transcardicamente con un fissativo misto contenente il 4% di paraformaldeide e il 2,5% di glutaraldeide. Blocchi corticali peri-infartiti (1 mm × 1 mm × 1 mm) sono stati raccolti e fissati nel glutaraldeide al 2,5% per 2 ore, seguiti da post-fissazione con tetrossido di osmio all'1% per 1 ora. I campioni sono stati poi processati con disidratazione con etanolo graduato, incastramento in resina epossidica, sezioni ultrasottili (spessore 50 nm) e doppia colorazione con acetato di uranile e citrato di piombo. L'ultrastruttura sinaptica è stata esaminata utilizzando un microscopio elettronico a trasmissione. Le immagini sono state acquisite a 8.000× per la valutazione strutturale e le sinapsi sono state contate a 5.000×. Tre campi neuropil casuali per gruppo sono stati analizzati per calcolare il numero medio di sinapsi e i dati sono stati confrontati utilizzando ANOVA unidirezionale.
Saggio di doppia marcatura per immunofluorescenza
È stata eseguita una colorazione con doppia marcatura immunofluorescenza per valutare l'espressione e la distribuzione di SYN e p-Akt nella corteccia peri-infarcta. Dopo 7 giorni di intervento, i ratti sono stati eutanasiati tramite overdose intraperitoneale di pentobarbital sodico, e il tessuto corticale peri-infarto è stato rapidamente dissezionato. I campioni sono stati fissati nel paraformaldeide al 4% per 24 ore, incorporati in un composto a temperatura di taglio ottimale (OCT) e tagliati in sezioni spesse 10 μm. Le sezioni sono state asciugate all'aria a temperatura ambiente per 1 ora e lavate tre volte con il tampone TBST per rimuovere il residuo di composto OCT. Le sezioni sono state permeabilizzate con Triton X-100 allo 0,3% per 20 minuti a temperatura ambiente, sciacquate con PBS e bloccate con soluzione al 5% di BSA per 1 ora a temperatura ambiente. In condizioni di buio, le sezioni sono state incubate durante la notte a 4 °C con anticorpi primari anti-SYN del coniglio (diluizione 1:200) e anti-p-Akt del coniglio (diluizione 1:200). Il giorno successivo, le sezioni sono state lavate tre volte con PBS e incubate al buio con anticorpi secondari (diluizione 1:400) per 50 minuti a temperatura ambiente. Dopo altri sei lavaggi con tampone TBST, i nuclei cellulari sono stati controcolorati con una soluzione operativa 4′,6-diamidino-2-fenilindolo (DAPI) per 5 minuti a temperatura ambiente. Le immagini sono state acquisite con impostazioni identiche di esposizione e sfondo utilizzando un microscopio a fluorescenza. Sono state utilizzate immagini rappresentative per valutare i modelli di espressione di SYN e p-Akt nella corteccia motoria tra i gruppi.
Analisi statistica
Le analisi statistiche sono state effettuate utilizzando GraphPad Prism 10.1.2 e IBM SPSS Statistics 25. I dati sono presentati come media ± deviazione standard (SD). I dati comportamentali raccolti in più momenti, inclusi il punteggio Zea Longa, il Neurological Severity Score modificato e la scala di Ashworth modificata, sono stati analizzati utilizzando un ANOVA a due vie con misure ripetute a due vie con il gruppo come fattore tra i soggetti e il tempo come fattore all'interno dei soggetti. Quando sono stati rilevati effetti principali o interazioni significative, il test di confronto multiplo di Sidack è stato utilizzato per l'analisi post hoc. Altri dati sono stati analizzati utilizzando ANOVA unidirezionale seguita dal test di confronti multipli di Sidack per i confronti post hoc. Un p. < a due code di 0,05 è stato considerato statisticamente significativo. Nei grafici a barre, la significatività statistica è indicata da asterischi come definito nelle legname corrispondenti.