1. Animali sperimentali
Questa ricerca è stata approvata dal Comitato Etico Animale dell'Ospedale Popolare di Ganzhou (Approvazione n. 20230789) ed è stata condotta in stretta conformità con la Guida NIH per la Cura e l'Uso degli Animali da Laboratorio. In questo studio sono state utilizzate ratti SD femmine di grado SPF (6–8 settimane, 180–230 g). I ratti sono stati alloggiati con libero accesso a cibo e acqua in condizioni controllate di 22 °C ± 3 °C e con un ciclo di luce e buio di 12 ore. Gli animali sono stati lasciati ad acclimatarsi per 7 giorni prima dell'esperimento. Le sostanze chimiche, i reagenti e le apparecchiature utilizzate nel protocollo sono elencate nella Tabella dei Materiali.
2. Stabilimento del modello ICH in vivo
Per generare il modello sperimentale di emorragia intracerebrale (ICH), 0,23 U di collagenasi di tipo VII sono stati disciolti in 1 μL di soluzione fisiologica sterile. I ratti venivano anestetizzati con pentobarbital sodio intraperitoneale (50 mg/kg), dopo di che la soluzione di collagenasi veniva infusa stereotaticamente nello striato a 0,5 μL/min (0,2 mm dietro il punto frontale, 3,0 mm lateralmente alla linea mediana e 6 mm in profondità nella superficie cranica). Gli animali del gruppo di controllo hanno subito la stessa procedura ma hanno ricevuto un volume uguale di soluzione fisiologica invece che collagenase. Una panoramica schematica del disegno sperimentale è fornita nella Figura Supplementare 1.
Figura supplementare 1: Diagramma di progettazione di esperimenti animali. I ratti sono stati divisi casualmente in due gruppi: un gruppo ha utilizzato la collagenasi di tipo VII 0,23U per costruire un modello ICH; Un gruppo ha utilizzato la soluzione fisiologica fisiologica come gruppo di controllo. I ratti del gruppo modello sono stati divisi casualmente in due lotti per analizzare il ruolo di FGD5-AS1 nell'ICH e l'effetto sinergico dell'asse FGD5-AS1/miR-93-5p. Un'ora dopo l'induzione dell'ICH, il reagente di trasfezione è stato iniettato nel cervello del ratto. Valutare la funzione neurologica dei ratti che utilizzano mNSS nei giorni 0, 1, 3 e 7; Raccogliere tessuto cerebrale dopo aver indotto l'ICH per 7 giorni. Clicca qui per scaricare questo file.
I ratti sono stati divisi casualmente in due gruppi. Un gruppo è stato utilizzato per analizzare il ruolo di FGD5-AS1 nell'ICH ed è stato ulteriormente suddiviso in quattro sottogruppi: Controllo, ICH, ICH + lentivirus (LV)-shNC e ICH + LV-shFGD5-AS1. L'altro gruppo è stato utilizzato per analizzare gli effetti sinergici dell'asse FGD5-AS1/miR-93-5p ed è stato suddiviso in cinque sottogruppi: ICH, ICH + LV-shNC, ICH + LV-shFGD5-AS1, ICH + LV-shFGD5-AS1 + antagomiro NC, e ICH + LV-shFGD5-AS1 + miR-93-5p antagomiro. Ogni gruppo comprendeva 12 ratti. Un'ora dopo l'induzione dell'ICH, il reagente di trasfezione è stato iniettato nel cervello del ratto a una dose di 2 mg/kg.
3. Coltura cellulare e lavorazione
Le cellule endoteliali microvascolari cerebrali (BMEC) rappresentano un modello chiave per lo studio della barriera emato-encefalica, dei meccanismi alla base dei disturbi neurologici e della somministrazione di farmaci20. Un modello ICH in vitro è stato stabilito utilizzando il trattamento di deprivazione di ossigeno-glucosio (OGD)/emini neiBMEC 3. I BMEC sono stati coltivati in DMEM senza glucosio e siero sotto una miscela gassa al 5% di CO2 e 95% diN2 per 10 minuti. Le cellule sono state quindi trattate con emina (10μM) e trasferite in una camera anaerobica contenente il 5% diCO2 e il 95% diN2 per 2 ore. L'OGD è stato interrotto restituendo le cellule alle condizioni normali di coltura. Il gruppo di controllo è stato trattato con PBS nelle stesse condizioni.
Le celle venivano trasfezzate secondo le istruzioni del produttore. Le cellule sono state trasfettate con siRNA FGD5-AS1 da 20 nM (si-FGD5-AS1), siRNA di controllo negativo (si-NC), inibitore miR-93-5p o inibitore di controllo a vuoto (inibitore NC).
4. Test di gravità neurologica modificata
Dopo l'istituzione del modello ICH in vivo , la funzione neurologica è stata valutata utilizzando il Neurological Severity Score (mNSS) modificato nei giorni 0, 1, 3 e 7. I punteggi sono stati quantificati in base a quattro domini: funzione motoria, funzione sensoriale, equilibrio e funzione riflessa. I punteggi da 1 a 4 indicavano un lieve compromettemento, da 5 a 9 un compromesso moderato e da 10 a 14 un compromesso grave.
5. Raccolta di campioni
7 giorni dopo l'induzione dell'ICH, i ratti sono stati anestetizzati con un'iniezione intraperitoneale di 50 mg/kg pentobarbital sodico, seguita da un'eutanasia tramite lussazione cervicale e raccolta di tessuto cerebrale.
6. Valutazione dell'edema cerebrale
L'edema cerebrale è stato valutato utilizzando il metodo del pesosecco-bagnato 19. Il cervello veniva pesato immediatamente dopo l'estrazione per ottenere il peso umido. Il tessuto veniva poi essiccato in un forno a 100 °C per 24 ore e pesato nuovamente per ottenere il peso secco. Il contenuto di acqua dei tissuti è stato calcolato come segue:
[(peso bagnato - peso asciutto) / peso bagnato] × 100%
7. PCR quantitativa in tempo reale
L'RNA totale è stato isolato da campioni di tessuto e cellule utilizzando un reagente di estrazione di RNA secondo il protocollo del produttore. Il DNA complementare è stato successivamente sintetizzato utilizzando un kit di trascrizione inversa. L'analisi quantitativa PCR è stata poi eseguita utilizzando una piattaforma PCR in tempo reale, con GAPDH e U6 come geni di riferimento endogeni. Il protocollo di amplificazione consisteva in un primo passo di denaturazione a 95 °C per 10 minuti, seguito da 40 cicli di denaturazione a 95 °C per 15 secondi e ricottura/estensione a 60 °C per 60 secondi. I livelli relativi di espressione genica sono stati calcolati utilizzando il metodo 2−ΔΔCt . Le sequenze di primer utilizzate in questo studio sono fornite nella Tabella Supplementare 1.
Tabella supplementare 1: Le sequenze di primer e le sequenze di reagenti correlate utilizzate in questo studio. Le sequenze coinvolte negli esperimenti qPCR in tempo reale e le sequenze rilevanti dei reagenti utilizzati negli esperimenti in vitro . Clicca qui per scaricare questo file.
8. Saggio di proliferazione cellulare
Le cellule trasfectate sono state seminate in piastre da 96 pozzi. Dopo la coltivazione per 0, 24, 48 e 72 ore, sono stati aggiunti 10 μL di reagente CCK-8 a ciascun pozzo. Le cellule sono state incubate a 37 °C per 2 ore, e la densità ottica è stata misurata a 450 nm utilizzando un lettore di microplacche.
9. Saggio giornalista con doppia luciferasi
I 3′-UTR di tipo selvatico (WT) e mutanti (MUT) di FGD5-AS1 contenenti il sito di legame miR-93-5p sono stati clonati nel vettore pGL3. Il vettore è stato co-trasfestato con un mimetico miR-93-5p utilizzando un reagente di trasfezione. L'attività relativa della luciferasi è stata misurata utilizzando un sistema di segnalazione dual-luciferasi.
10. Saggio immunoenzimatico legato agli enzimi
I campioni di tessuto cerebrale (20–50 mg) sono stati omogeneizzati in un tampone di lisi RIPA gelido con un rapporto tessuto-tampone di 1:9. Dopo l'omogeneizzazione, i campioni sono stati centrifugati a 12.000 × g per 20 minuti a 4 °C, e i supernatananti risultanti sono stati raccolti per l'analisi. I BMEC di ogni gruppo sperimentale sono stati raccolti e centrifugati a 12.000 × g per 10 minuti a 4 °C, dopo di che i soprantativi sono stati mantenuti. Le concentrazioni di MDA, IL-1β, IL-6 e TNF-α sono state successivamente determinate utilizzando i relativi kit di analisi secondo le istruzioni del produttore.
11. Analisi statistica
Tutti i dati sono presentati come media ± SD. I dati sono stati visualizzati tramite software statistico. Ogni esperimento è stato ripetuto almeno tre volte. Il test at-test è stato utilizzato per confrontare due gruppi, mentre l'analisi unidirezionale della varianza seguita dal test post hoc di Tukey è stata utilizzata per confrontare più di due gruppi. Un valore di P < 0,05 è stato considerato statisticamente significativo.