Risultati della previsione di PLB e dei bersagli del cancro alla prostata
Il CID di PubChem di PLB è 10205, con il nome IUPAC: 5-idrossi-2-metilnaftalene-1,4-dione, SMILES: CC1=CC(=O)C2=C(C1=O)C=CC=C2O, InChIKey: VCMMXZQDRFWYSE-UHFFFAOYSA-N, InChI: InChI=1S/C11H8O3/c1-6-5-9(13)10-7(11(6)14)3-2-4-8(10)12/h2-5,12H,1H3, peso molecolare: 188.18, formula molecolare: C11H8O3, numero CAS: 481-42-5. Dopo aver rimosso i duplicati, questo studio ha previsto 500 potenziali bersagli di PLB utilizzando i database SwissTarget, SEA, TargetNet, PharmMapper, CTD, TCMSP e HERB (Tabella Suppletiva S1). Dopo aver eliminato i duplicati, sono stati previsti 1.199 potenziali bersagli per il cancro alla prostata utilizzando i database GeneCards, DrugBank, TCMSP, CTD e HERB (Tabella Suppletiva S2).
Meccanismo d'azione del PLB nel cancro della prostata predetto dalla farmacologia di rete
È stato costruito un diagramma di Venn per analizzare l'intersezione tra i bersagli, rivelando 151 bersagli sovrapposti (Figura 1). Successivamente, è stata costruita una rete di interazione proteina-proteina (PPI) per questi geni intersecanti (Figura 2) e visualizzata in base al grado dei nodi, dove tonalità di rosso più scure e dimensioni maggiori dei nodi indicano un grado più elevato (Figura 3). Il software Cytoscape è stato utilizzato per analizzare i geni bersaglio principali (i primi 20) tra i geni intersecanti, con TP53 che mostra il grado più alto pari a 112, seguito da AKT1 con un grado di 111 (Figura 4).
Successivamente, i geni intersecanti sono stati caricati nel database DAVID per analisi di arricchimento dell'ontologia genica (GO) e dei percorsi KEGG. L'analisi GO ha prodotto 4.156 processi biologici (Tabella Supplementare S3), 292 componenti cellulari (Tabella Supplementare S4) e 562 funzioni molecolari (Tabella Supplementare S5). I 10 termini maggiormente arricchiti in ciascuna categoria sono stati visualizzati (Figura 5A-C). Secondo l'analisi KEGG, 187 percorsi risultavano significativamente arricchiti (Tabella Supplementare S6), e i 10 più rilevanti sono presentati nella Figura 5D. Tra questi vi erano percorsi associati al cancro della prostata, all'epatite B, ai proteoglicani nel cancro, alla resistenza agli inibitori tirosina chinasi di EGFR, al metabolismo dei lipidi e all'aterosclerosi, all'infezione da citomegalovirus umano, al cancro del colon-retto, alla resistenza endocrina, al percorso AGE-RAGE nelle complicanze del diabete e al percorso di segnalazione PI3K-Akt.
Principali bersagli della PLB nel trattamento del cancro della prostata
L'analisi di farmacologia in rete ha identificato 151 geni intersecanti tra PLB e il cancro alla prostata. Sulla base della rete PPI, abbiamo selezionato i 20 geni bersaglio centrali potenziali con la connettività più elevata: proteina tumorale p53 (TP53), chinasi 1 delle serine/treonine AKT (AKT1), transduttore del segnale e attivatore della trascrizione 3 (STAT3), recettore degli estrogeni 1 (ESR1), regolatore dell'apoptosi BCL2 (BCL2), interleuchina 6 (IL6), recettore del fattore di crescita epidermico (EGFR), catenina beta 1 (CTNNB1), fattore di necrosi tumorale (TNF), omologo della fosfatasi e della tensina (PTEN), caspasi 3 (CASP3), chinasi 3 delle proteine attivate da mitogeni (MAPK3proteina da shock termico 90 alfa famiglia classe A membro 1 (HSP90AA1), proto-oncogene SRC, chinasi tirosina non recettoriale (SRCrecettore gamma attivato da proliferatori di perossisomi (PPARG), chinasi del target meccanicistico della rapamicina (MTORproteina da shock termico 90 alfa famiglia classe B membro 1 HSP90AB1), glicogeno sintasi chinasi 3 beta (GSK3B), prostaglandina-endoperossido sintasi 2 (PTGS2e metalloproteasi della matrice 9 (MMP9). TP53 hanno mostrato la maggiore connettività, seguiti da AKT1, suggerendo che questi potrebbero essere bersagli chiave.
Per selezionare le proteine finali su cui effettuare docking e simulazioni di dinamica molecolare, abbiamo dato priorità ai geni che codificano per proteine pro-oncogeniche con strutture cristalline disponibili e tasche di legame definite, inclusi AKT1, STAT3, ESR1, BCL2, IL6, EGFR, TNF, MAPK3, HSP90AA1, SRC, PPARG, MTOR, HSP90AB1, GSK3B, PTGS2 e MMP9. Al contrario, i geni oncosoppressori, inclusi TP53, sono stati esclusi poiché non sono in linea con la strategia terapeutica di inibizione del bersaglio.
Pertanto, sono stati condotti ulteriori studi di docking molecolare. I risultati hanno mostrato che PLB interagisce con AKT1 tramite TRP80, SER205, LEU210, LEU264 e LYS268, con un'energia di legame (BE) di -7,764 kcal/mol27; PLB interagisce con STAT3 tramite GLU612, SER613, ARG609 e PRO639, con una BE di -5,149 kcal/mol28; PLB interagisce con ESR1 tramite LEU346, PHE404, ALA350, LEU387 e LEU391, con una BE di -7,165 kcal/mol29; PLB interagisce con BCL2 tramite LYS53, PHE54 e HIS50, con una BE di -5,564 kcal/mol30; PLB interagisce con IL6 tramite GLN28, LYS27 e ARG24, con una BE di -4,462 kcal/mol31; PLB interagisce con EGFR tramite LEU778, LEU707 e LEU789, con una BE di -6,255 kcal/mol32; PLB interagisce con TNF tramite TYR59, GLY121 e LEU120, con una BE di -6,570 kcal/mol33; PLB interagisce con MAPK3 tramite ALA69, VAL56, ILE48, LEU124, MET125 e LEU173, con una BE di -7,369 kcal/mol34; PLB interagisce con HSP90AA1 tramite LEU107, PHE138, TYR139 e TRP162, con una BE di -8,947 kcal/mol35; PLB interagisce con SRC tramite LEU276, TYR343, MET344, ALA296, LEU396 e VAL284, con una BE di -7,469 kcal/mol36; PLB interagisce con PPARG tramite LEU330, ARG288, ILE326, MET329 e ALA292, con una BE di -6,538 kcal/mol37; PLB interagisce con MTOR tramite ALA2073, SER2069 e HIS2024, con una BE di -4,672 kcal/mol38; PLB interagisce con HSP90AB1 tramite TYR134, PHE133, TRP157 e LEU102, con una BE di -6,928 kcal/mol39; PLB interagisce con GSK3B tramite VAL70, VAL135 e ALA83, con una BE di -6,799 kcal/mol40; PLB interagisce con PTGS2 tramite VAL315, THR561, ARG311 e ILE558, con una BE di -5,081 kcal/mol41; PLB interagisce con MMP9 tramite LEU187, ALA189, MET247, TYR248, LEU188, HIS226 e VAL223, con una BE di -7,101 kcal/mol42. A eccezione di IL6 e MTOR, le energie di legame di PLB con le altre proteine erano inferiori a -5 kcal/mol, indicando che PLB potrebbe legarsi stabilmente a queste proteine (Tabella 1).
Successivamente, sono state effettuate simulazioni di dinamica molecolare per analizzare ulteriormente le interazioni della PLB con queste proteine bersaglio e per verificare la stabilità del legame. Sebbene alcuni composti avessero ottenuto punteggi elevati nel docking, simulazioni preliminari di dinamica molecolare hanno rivelato un precoce allontanamento del ligando o gravi distorsioni conformazionali in diversi sistemi. Pertanto, abbiamo escluso questi complessi instabili e conservato soltanto quelli che hanno mantenuto pose di legame costanti dopo il rilassamento iniziale, proseguendo con essi come candidati per simulazioni estese di dinamica molecolare. I bersagli finali conservati sono stati AKT1 (Supplementary File 1—Supplementary Figure S1), ESR1 (Supplementary File 1—Supplementary Figure S2), BCL2 (Supplementary File 1—Supplementary Figure S3), EGFR (Supplementary File 1—Supplementary Figure S4), TNF (Supplementary File 1—Supplementary Figure S5), MAPK3 (Supplementary File 1—Supplementary Figure S6), HSP90AA1 (Supplementary File 1—Supplementary Figure S7), SRC (Supplementary File 1—Supplementary Figure S8) e PPARG (Supplementary File 1—Supplementary Figure S9). Dopo 200 ns di simulazione, l'RMSD delle strutture complesse di PLB con AKT1, ESR1, BCL2, EGFR, TNF, MAPK3, HSP90AA1, SRC e PPARG si è stabilizzato gradualmente nel corso della simulazione (vedi Supplementary File 1—Supplementary Figure S1-S9, pannello A). Contestualmente, parametri come Rg (vedi Supplementary File 1—Supplementary Figure S1-S9, pannello B), fluttuazione quadratica media (RMSF) (vedi Supplementary File 1—Supplementary Figure S1-S9, pannello C), la distanza tra la proteina e il sito di legame del ligando (Dock site-ligand) (vedi Supplementary File 1—Supplementary Figure S1-S9, pannello D), area superficiale accessibile al solvente sepolta (Buried SASA) (vedi Supplementary File 1—Supplementary Figure S1-S9, pannello E) e sovrapposizione della conformazione di legame (vedi Supplementary File 1—Supplementary Figure S1-S9, pannello F) si sono stabilizzati progressivamente durante la simulazione. Questi risultati indicano che i complessi proteina-ligando hanno mantenuto stabilità strutturale per tutta la durata delle simulazioni. RMSD, Rg, RMSF, distanza proteina-ligando e Buried SASA hanno raggiunto gradualmente valori stabili, indicando un complesso compatto con fluttuazioni atomiche limitate e un'occupazione sostenuta del ligando all'interno della tasca di legame. Inoltre, l'area di contatto tra la plumbagina e la proteina è rimasta relativamente costante nel tempo. Anche le interazioni di Van der Waals, idrofobiche ed elettrostatiche hanno mostrato profili stabili durante tutta la simulazione, ulteriormente confermando la stabilità complessiva dei complessi proteina-plumbagina (vedi Supplementary File 1—Supplementary Figure S1-S9, pannello G).
Considerando l'energia di solvatazione e valutando in modo completo RMSD, Rg, distanza, SASA sepolta e energie di interazione, sono state selezionate le traiettorie di complessi nello stato stabile per calcolare i termini relativi all'energia di legame (BE) mediante il metodo MM-PBSA (Molecular Mechanics-Poisson Boltzmann Surface Area). Per fornire misure di affidabilità per le classifiche di affinità riportate, tutte le energie libere di legame sono espresse come media ± errore standard della media (SEM), calcolate da istantanee estratte lungo le traiettorie di dinamica molecolare equilibrate (Tabella 2). Tra queste, AKT1 ha mostrato l'energia libera di legame più negativa, seguita da ESR1, HSP90AA1, SRC e PPARG, suggerendo che il PLB possa legarsi stabilmente a queste proteine bersaglio.
Inoltre, questo studio ha analizzato i residui interagenti tra PLB e le proteine bersaglio (dettagliati nella Tabella 3), scoprendo che PLB si lega in modo stabile alle proteine bersaglio principalmente attraverso legami a idrogeno (vedi File Supplementare 1—Figura Supplementare S1-S9, pannello I), interazioni idrofobiche e forze di van der Waals. Analizzando il contributo delle energie di legame degli amminoacidi (vedi File Supplementare 1—Figura Supplementare S1-S9, pannello H) e le interazioni tra la proteina e PLB, questo studio ha rivelato quanto segue: per AKT1, gli amminoacidi chiave per il legame con PLB sono TRP80 e LEU264, con le forze di van der Waals che svolgono il ruolo principale, mentre le interazioni elettrostatiche e idrofobiche hanno un ruolo secondario; per ESR1, gli amminoacidi chiave sono LEU346 e LEU525, con le forze di van der Waals predominanti, le interazioni idrofobiche di ruolo secondario e quelle elettrostatiche di supporto; per BCL2, gli amminoacidi chiave sono TYR108 e PHE104, con le forze di van der Waals principali e le interazioni elettrostatiche e idrofobiche secondarie; per EGFR, gli amminoacidi chiave sono MET1002 e TYR998, con le forze di van der Waals predominanti e le interazioni elettrostatiche e idrofobiche minori; per TNF-α, gli amminoacidi chiave sono TYR59 e HIE15, con le forze di van der Waals principali e le interazioni elettrostatiche e idrofobiche minori; per MAPK3, gli amminoacidi chiave sono TYR53 e LEU173, con le forze di van der Waals predominanti e le interazioni elettrostatiche e idrofobiche secondarie; per HSP90AA1, gli amminoacidi chiave sono PHE138 e LEU107, con le forze di van der Waals principali e le interazioni elettrostatiche e idrofobiche minori; per SRC, gli amminoacidi chiave sono LEU276 e LEU396, con le forze di van der Waals predominanti e le interazioni elettrostatiche e idrofobiche secondarie; per PPARG, gli amminoacidi chiave sono LEU330 e ILE326, con le forze di van der Waals principali e le interazioni elettrostatiche e idrofobiche minori.
Tutte le strutture cristalline delle proteine utilizzate in questo studio, ad eccezione di BCL2, sono state co-cristallizzate con inibitori noti. Per validare ulteriormente l'affidabilità del nostro approccio di docking e il potenziale di legame di PLB, abbiamo definito le tasche attive di legame in base ai siti di legame originari degli inibitori. Sia PLB che i rispettivi inibitori naturali sono stati sottoposti a docking nelle stesse tasche, e le loro energie libere di legame sono state calcolate e confrontate. Per ogni bersaglio, solo quelle pose di docking dell'inibitore naturale che riproducevano in modo fedele la conformazione di legame cristallografica sono state prese in considerazione per il confronto energetico. Come mostrato nella Tabella 4, le energie libere di legame di docking di PLB erano paragonabili a quelle dei rispettivi inibitori naturali in tutti e otto i bersagli, suggerendo che PLB possiede un'affinità di legame alla tasca simile a quella di questi composti attivi validati. Questo risultato indica che PLB, come molecola con un nuovo scaffold, potrebbe rappresentare un modello chimico promettente per lo sviluppo di nuovi agenti anti-cancro alla prostata mirati a questi hub oncogenici.
Valore prognostico dei geni bersaglio nel cancro della prostata
Come bersagli rappresentativi, abbiamo valutato il significato prognostico di SRC e MAPK3 nel cancro della prostata utilizzando i set di dati TCGA. Per SRC, l'analisi della distribuzione del gradiente ha mostrato che un'espressione più elevata di SRC era associata a una maggiore mortalità e a tempi di sopravvivenza nel follow-up significativamente più brevi (Figura 6A). L'analisi di sopravvivenza di Kaplan-Meier (Figura 6B) ha confermato che il gruppo ad alta espressione presentava una sopravvivenza complessiva notevolmente peggiore rispetto al gruppo a bassa espressione (Log-rank P = 0,0317, HR = 9,708, IC 95%: 1,22–77,234). Le curve cumulative del rischio hanno indicato una probabilità maggiore di morte in qualsiasi punto temporale nel gruppo ad alta espressione, identificando SRC come un fattore di rischio per una prognosi sfavorevole. Le curve ROC dipendenti dal tempo (Figura 6C) hanno mostrato valori di AUC pari a 0,99, 0,878 e 0,829 rispettivamente a 1, 3 e 5 anni, tutti superiori a 0,7, indicando un'eccellente capacità predittiva sia per la sopravvivenza a breve che a lungo termine. Nel complesso, questi risultati suggeriscono che un'elevata espressione di SRC potrebbe fungere da marcatore molecolare indipendente per una prognosi sfavorevole nel cancro della prostata.
Per MAPK3, la distribuzione del gradiente ha rivelato che un'espressione elevata era associata a una maggiore progressione tumorale e a una sopravvivenza libera da progressione più breve, suggerendo in via preliminare MAPK3 come un potenziale gene di rischio (Figura 7A). L'analisi di sopravvivenza libera da progressione secondo Kaplan-Meier (Figura 7B) ha mostrato che il gruppo ad alta espressione presentava una sopravvivenza libera da progressione significativamente più breve rispetto al gruppo a bassa espressione (Log-rank P = 0.0298, HR = 1.581, IC 95%: 1.046–2.391), con una sopravvivenza mediana libera da progressione di soli 5,8 anni nel gruppo ad alta espressione. Le curve di rischio cumulativo hanno ulteriormente confermato una probabilità maggiore di progressione in qualsiasi momento. Tuttavia, le curve ROC dipendenti dal tempo (Figura 7C) hanno mostrato valori di AUC di soli 0,568, 0,563 e 0,574 a 1, 3 e 5 anni, tutti ben al di sotto di 0,7, indicando che MAPK3 da solo ha un valore predittivo indipendente limitato per il rischio di progressione del cancro alla prostata. Nel complesso, sebbene un'elevata espressione di MAPK3 sia correlata a una peggiore sopravvivenza libera da progressione nel cancro alla prostata, la sua utilità come unico indicatore prognostico è limitata da una modesta accuratezza predittiva.
Dichiarazione sulla disponibilità dei dati
I contributi originali presentati in questo studio sono inclusi nell'articolo o nei Materiali Supplementari.

Figura 1: Intersezione tra le proteine bersaglio della plumbagina e quelle del cancro alla prostata. Il blu rappresenta il numero di proteine bersaglio della plumbagina, e il giallo rappresenta il numero di proteine bersaglio del cancro alla prostata.

Figura 2: Rete di interazioni proteina-proteina dei 151 bersagli intersecanti. Cliccare qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.

Figura 3: Visualizzazione dei 151 bersagli principali in base al grado dei nodi nella rete di interazione proteina-proteina. Dimensioni maggiori e colori più intensi dei cerchi indicano valori di grado più elevati nella rete. Cliccare qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.

Figura 4: Valori del grado dei primi 20 bersagli principali. Cliccare qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.

Figura 5: Analisi di arricchimento dei 151 bersagli principali. (A) I 10 termini principali nella categoria processo biologico dell'analisi GO, (B) i 10 termini principali nella categoria componente cellulare dell'analisi GO e (C) i 10 termini principali nella categoria funzione molecolare dell'analisi GO. (D) I 10 principali percorsi arricchiti KEGG dei 151 bersagli principali. Abbreviazioni: GO = Gene Ontology; KEGG = Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes. Cliccare qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.

Figura 6: Analisi prognostica di SRC nel cancro della prostata (TCGA). (A) Distribuzione graduale dell'espressione di SRC in base allo stato di sopravvivenza e al tempo di follow-up. (B) Curve di sopravvivenza globale di Kaplan-Meier per gruppi ad alta e bassa espressione di SRC (Log-rank P = 0,0317, HR = 9,708, IC 95%: 1,22–77,234). (C) Curve ROC dipendenti dal tempo a 1, 3 e 5 anni (AUC = 0,990, 0,878 e 0,829). Abbreviazioni: TCGA = The Cancer Genome Atlas; HR = rapporto di rischio; IC = intervallo di confidenza; ROC = caratteristica operativa del ricevitore; AUC = area sotto la curva. Cliccare qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.

Figura 7: Analisi prognostica di MAPK3 nel cancro della prostata (TCGA). (A) Distribuzione graduale dell'espressione di MAPK3 in base allo stato di progressione e al tempo libero da progressione. (B) Curve di sopravvivenza libera da progressione di Kaplan-Meier per i gruppi ad alta e bassa espressione di MAPK3 (Log-rank P = 0.0298, HR = 1.581, IC 95%: 1.046-2.391). (C) Curve ROC dipendenti dal tempo a 1, 3 e 5 anni (AUC = 0.568, 0.563 e 0.574). Abbreviazioni: TCGA = The Cancer Genome Atlas; HR = rapporto di rischio; IC = intervallo di confidenza; ROC = caratteristica operativa del ricevitore; AUC = area sotto la curva. Cliccare qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.
Tabella 1: Energia di legame e residui interagenti della plumbagina nel docking molecolare con molecole target chiave. Le referenze citate corrispondono a voci di struttura PDB (assegnazioni del sito di legame ligando-cristallografico) piuttosto che a studi di validazione biologica, con gli ID PDB corrispondenti indicati esplicitamente. Cliccare qui per scaricare questa tabella.
Tabella 2: Energie di legame e le loro componenti dei complessi plumbagina-target in condizioni stazionarie (kJ/mol). Per ciascun complesso è stata eseguita una singola traiettoria di 200 ns con un unico seme casuale di velocità, senza replicati paralleli. Tutti i campionamenti conformazionali sono stati estratti dalla regione equilibrata in plateau compresa tra 100 e 200 ns di ciascuna traiettoria. ΔEele rappresenta l'interazione elettrostatica tra la molecola piccola e la proteina, ΔEvdw rappresenta l'interazione di van der Waals, ΔEpol è l'energia di solvatazione polare, che può rappresentare l'energia potenziale elettrostatica, e ΔEnonpol è l'energia di solvatazione non polare, che può rappresentare l'interazione idrofobica. ΔEMMPBSA = ΔEele + ΔEvdw + ΔEpol + ΔEnonpol. L'energia libera di legame, ΔGbind = ΔEMMPBSA + -TΔS. Cliccare qui per scaricare questa tabella.
Tabella 3: Diagramma schematizzato dei residui interagenti ottenuto dalla simulazione di dinamica molecolare della piombagina con proteine bersaglio. Cliccare qui per scaricare questa tabella.
Tabella 4: DEnergia libera di legame di plumbagina e inibitori nativi co-cristallizzati per le nove proteine bersaglio. Fare clic qui per scaricare questa Tabella.
File Supplementare 1: Analisi della dinamica molecolare delle complessi della plumbagina con AKT1, ESR1, BCL2, EGFR, TNF-α, MAPK3, HSP90AA1, SRC e PPARG. Fare clic qui per scaricare questo file.
Tabella supplementare S1: Possibili bersagli di PLB predetti dai database SwissTarget, SEA, TargetNet, PharmMapper, CTD, TCMSP e HERB.Cliccare qui per scaricare il file.
Tabella supplementare S2: Target potenziali del cancro alla prostata predetti dai database GeneCards, DrugBank, TCMSP, CTD e HERB.Clicca qui per scaricare questo file.
Tabella supplementare S3: Processi biologici GO arricchiti per i 151 bersagli sovrapposti di PLB e cancro della prostata.Cliccare qui per scaricare il file.
Tabella supplementare S4: Componenti cellulari GO arricchiti nei 151 bersagli sovrapposti di PLB e cancro della prostata.Cliccare qui per scaricare il file.
Tabella supplementare S5: Funzioni molecolari GO arricchite nei 151 bersagli sovrapposti di PLB e cancro della prostata.Cliccare qui per scaricare il file.
Tabella supplementare S6: Percorsi KEGG significativamente arricchiti nei 151 bersagli sovrapposti di PLB e cancro della prostata.Cliccare qui per scaricare il file.